吳 迪,王 林,吳惠明,高曉龍,張啟龍,張 躍,劉曉冬,周德剛
(北京市動物疫病預防控制中心,北京 102629)
禽流感(avian influenza,AI)是由禽流感病毒(avian influenza virus,AIV)引起的一種人與動物共患病[1],引起禽類產生以呼吸系統疾病、產蛋下降乃至急性致死和高死亡率等為特征的烈性傳染病,給養禽業帶來重大經濟損失,家禽感染AIV后,有的不表現臨床癥狀,有的表現為呼吸道疾病和產蛋下降,嚴重的可導致全身性疾病,死亡率可達100%,而且可導致人的感染和死亡,嚴重威脅人類健康。
由于禽流感病毒高度的變異型以及新亞型病毒的出現,禽流感的防控面臨著嚴峻的考驗。高致病性禽流感暴發突然,發病率和死亡率極高,對家禽飼養業具有毀滅性打擊,世界動物衛生組織將其列為法定報告的動物疫病,中華人民共和國農業部公告第1125號對《一、二、三類動物疫病病種名錄》進行了修訂,將其列為一類動物疫病。農業農村部發布的《國家動物疫病監測與流行病學調查計劃》中規定:“對禽流感病原監測陽性個體利用反轉錄聚合酶鏈式反應(RT-PCR)或熒光定量PCR檢測技術進行判定[2]。”地市級動物疫病防控部門已將熒光RT-PCR(reverse transcription-polymerase chain reaction)方法作為初步監測禽流感病毒的首選方法。
實時熒光定量PCR(quantitative real-time PCR)是一種在DNA擴增反應中,以熒光化學物質測每次PCR循環后產物總量的方法。實時熒光PCR檢測技術具有特異性強、靈敏度高、重復性好等優點,被廣泛應用于分子生物學、動物疫病研究等領域。目前,市售的國產禽流感病毒熒光定量PCR檢測試劑盒具有種類繁多,擴增片段不同,性價比高等特點,但各廠家試劑盒的敏感性、特異性和對可疑區域判定的標準不一[3-5],導致檢測結果或Ct值(cycle threshold,指每個反應管內的熒光信號到達設定的閾值時所經歷的循環數)有所偏差,甚至會出現漏檢。因此,需要對不同廠家試劑盒進行科學評估,以便為實驗室采購禽流感病毒熒光定量PCR檢測試劑盒提供理論依據。為此,利用禽流感病毒標準品與臨床樣品對市售的6種品牌(分別記為A、B、C、D、E、F)禽流感病毒通用型熒光定量PCR檢測試劑盒靈敏性與特異性進行了比對,并進行了已經背景臨床樣品的檢測,篩選出禽流感病毒通用型最佳檢測試劑盒。
采購北京市場上6家禽流感病毒通用型熒光定量PCR檢測試劑盒,分別用A、B、C、D、E、F表示;核酸提取試劑盒(含96孔板)購自杭州博日科技有限公司;禽流感病毒標準品H5、H7、H9亞型雞胚尿囊液由中國農業科學院哈爾濱獸醫研究所提供;新城疫活疫苗(clone30株)購自遼寧益康生物股份有限公司;雞傳染性支氣管炎活疫苗(H120株)購自青島蔚藍生物制品有限公司。
熒光定量PCR儀(美國ABI公司)、TGuide S32全自動核酸提取純化儀(天根生化科技有限公司)、移液器(德國Eppendorf公司)。
1.3.1 核酸提取
對H5、H7、H9亞型雞胚尿囊液標準品及新城疫、禽傳染性支氣管炎疫苗進行核酸提取:將室溫放置96孔板顛倒3次,去除塑封膜后在96孔板離心機中短暫離心,1 000 r/min離心5 min。避免掛液。撕去96孔上的鋁箔膜,確認板子方向(磁珠在第6與第12列中)。在96孔板的第1、第7列孔中加入200 μL樣品,避免交叉污染。將96孔板放入TGuide S32全自動核酸提取純化儀中,進行自動化反應,自動化程序結束后,將第5、第11列的洗脫液轉移至干凈的無核酸酶離心管中,得到50 μL核酸。
1.3.2 敏感性試驗
將提取的H7亞型禽流感毒核酸進行10倍倍比稀釋,從原液連續稀釋至1:108濃度,依據禽流感通用型熒光定量PCR檢測試劑盒說明書,按照說明書中提供的反應體系,擴增條件,對各個梯度的H7亞型進行實時熒光RT-PCR檢測。
1.3.3 特異性試驗
將核酸提取后的H5、H7、H9亞型RNA原液、新城疫活疫苗、雞新城疫傳染性支氣管炎活疫苗分別用6個廠家的試劑盒進行熒光定量PCR檢測,觀察是否出現擴增曲線。
1.3.4 臨床樣品檢測
利用北京市動物疫病預防控制中心保存的97份已知樣品,包括7份已知背景的滅活病毒(H7N9、H7N2、H5N1、H5N2、H5N6、H5N8、H9N2)與臨床采集保存的90份家禽泄殖腔棉拭子(已知陰性),對A~F檢測試劑盒進行臨床檢測效果的評價。
通過對A~F試劑盒外觀進行觀察發現,A~F試劑盒的外包裝完整,標簽粘貼完整并不易脫落,溶液清晰透明、無沉淀產生。
比對A~F試劑盒說明書,記錄反應體系與計算反應總時間。如表1所示,D試劑盒所用反應時間最短,為42 min 40 s;C試劑盒反應時間最長,為75 min。

表1 試劑盒反應體系及反應總時間Table 1 Reagent box reaction system and total reaction time
查看A~F試劑盒說明書,對各廠家試劑盒陰陽性、可疑區域判定范圍及試劑盒有效性判定結果進行比對,結果如表2所示。

表2 不同廠家試劑盒有效性判定與樣本結果判定區域Table 2 Validity judgment and sample result judgment area of kits from different manufacturers
對樣品3次重復測定取平均Ct。由表3、圖1可知,A試劑盒最低檢出限為10-2,平均Ct為26.758,檢出限為10-3時樣品結果為可疑區域;B試劑盒最低檢出限為H7的RNA原液,在10-1濃度與10-2濃度下為可疑區域;C試劑盒最低檢出限在10-1,檢出限為在10-2內有一個樣品未檢出Ct。D試劑盒最低檢出限為10-1,在10-2濃度與10-3濃度下為可疑樣品;E試劑盒最低檢出限為10-3;F試劑盒最低檢出限為10-1,檢出限為10-2為可疑樣品。

表3 敏感性試驗Table 3 Sensitivity Test

圖1 各試劑盒靈敏度試驗結果Fig.1 Sensitivity test results of each kit
由表3、圖2可知,在6種試劑盒檢測H5、H7、H9亞型RNA與試劑盒陽性對照時,均可檢出為陽性,在檢測新城疫疫苗、雞新城疫傳染性支氣管炎活疫苗時,均為陰性,無擴增曲線。在檢測H5亞型RNA時,試劑盒A的平均Ct值為15.477,試劑盒C的平均Ct值為24.885,相差9個循環數。在檢測H7亞型RNA時,試劑盒A的平均Ct值為19.353,試劑盒C的平均Ct值為27.982,相差8個循環數。在檢測H9亞型RNA時,試劑盒A的平均Ct值為18.646,試劑盒C的平均Ct值為30.41,相差12個循環數。

圖2 各試劑盒特異性試驗結果Fig.2 Specificity Test Results of each F
用6種檢測試劑盒對實驗室保存的97份臨床樣品進行檢測。由表4可知,檢出7份陽性與90份陰性,6種禽流感病毒熒光定量PCR檢測試劑盒檢測結果一致。
禽流感病毒亞型眾多加上基因突變、重組和重排,使其變異極快,導致毒株的致病性也千差萬別,早期快速診斷無疑是預防、控制禽流感的前提條件[6-7]。實時熒光定量PCR技術是指在PCR反應體系中加入熒光基團[8],利用熒光信號累計實時監測整個PCR進程,通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。對于熒光定量RT-PCR結果判定,多數情況下需要根據儀器噪聲情況調整閾值,閾值設定原則以閾值線剛好超過陰性對照品擴增曲線的最高點為準。一般規定陰性質控對照檢測通道讀取數據均無Ct值并且無擴增曲線,陽性質控對照檢測通道讀取數值出現特征性擴增曲線,且Ct值在某范圍內,試驗成立,否則視為試驗無效[9-10]。用的A~F試劑盒,陰陽性質控對照均滿足要求,試驗成立。

表4 97份樣品禽流感病毒熒光定量PCR檢測結果Table 4 Fluorescent quantitative PCR results of 97 samples of avian influenza virus
通過檢測不同稀釋倍數的禽流感H7亞型標準品,對試劑盒的靈敏性、特異性等指標做出了較準確的判定[11],最終選定的E試劑盒可以作為今后試驗參考。
A~F試劑盒的比對檢測結果表明,供試的試劑盒均能準確檢測出H5、H7、H9亞型核酸,且試劑盒的特異性與敏感性良好,試劑盒的陰陽性對照均成立,結果有效。但在試劑盒敏感性方面A~F試劑盒表現各異,A、D試劑盒的可疑區間范圍較大,均為30 A~F試劑盒對陰陽性對照判定及可疑區域判定均不相同,并沒有統一的標準,分析原因可能是由于A~F試劑盒采用的擴增目的片段以及技術平臺等不盡相同[12]。當樣品Ct值落在可疑區域時,給試驗室工作人員對結果的判讀造成了較大的困擾。初步從特異性、敏感性及物理角度對6個廠家試劑盒進行分析,為今后更加科學地應用測量不確定度對熒光定量PCR試劑盒進行比對奠定了基礎[13]。 從試劑盒外觀、反應時長、樣本結果判定及有效性判定區域進行比較,并由敏感性與特異性試驗、臨床樣品檢測試驗結果綜合考慮,得出以下結論。E試劑盒外包裝完整,試劑管內液體清晰,反應時長為60 min,最低檢出限為10-3,特異性良好。因此,E試劑盒要優于其他廠家試劑盒,更適用于臨床檢測篩選。5 結論