質量控制對免疫檢驗的應用效果

遲 玥 寇筱囡

（大慶油田總醫院，黑龍江大慶 163001）

免疫系統的組成部分包括免疫器官、細胞與分子等，免疫細胞經由血液循環傳遞至各個組織與器官，維持正常的免疫功能。免疫檢驗是多種疾病類型的常規檢驗技術，通過對T 細胞抗原受體的定性與定量分析，評價免疫應答能力，進而幫助疾病的診斷[1]。其檢驗環節復雜，檢驗結果受多種因素影響，需要嚴格執行質量控制。通過對檢驗過程的質量控制能夠全面評估結果的準確性。常規檢驗僅根據相關標準執行檢驗操作，需加用系統性質量控制。本研究選取207 例免疫檢驗患者，分析質量控制應用于免疫檢驗的價值。

1 資料與方法

1.1 一般資料

選取大慶油田總醫院 2017 年 1 月至 2019 年2 月接受免疫檢驗的207 例患者為研究對象，按照隨機數字表法分為A 組（102 例）和B 組（105 例）；A 組行常規檢驗，B 行質量控制。A 組患者男性55 例，女性47 例；年齡26 ～67 歲，平均年齡（39.54±0.42）歲；體質量42 ～89 kg，平均體質量（56.24±1.57）kg。B 組患者男性57 例，女性48 例；年齡24 ～68 歲，平均年齡（39.41±0.34）歲；體質量44 ～87 kg，平均體質量（56.18±1.34）kg。2 組患者一般資料比較差異無統計學意義（P ＞0.05），具有可比性。本研究經大慶油田總醫院倫理委員會批準。

1.2 方法

2 組的檢驗方法均為酶聯免疫吸附法（ELISA），A 組采用常規檢驗：將標本置于無菌玻璃試管內，選用真空分離膠采血管和一次性抗凝管，將標本置于室溫環境下，用全自動生化分析儀對其進行免疫檢測。所有操作根據儀器和配套試劑說明進行。B 組行質量控制。

（1）標本采集等質量控制

標本采集時，應控制標本質量。詢問患者有無激素用藥史，因為激素水平與時間具有相關性，如甲狀腺激素的血液峰值時間是夜間10～11點，而谷值時間為日間10點。若醫生過早采集血清，則會出現誤差。為此，應將時間因素納入到標本采集和保存規范中。若標本無法立即檢測，則應預處理，合理保存，具體保存方式與時間根據檢驗目的、標本類型而定。檢驗分析前，規范標本采集時間，正確使用止血帶，保持正確的采血姿勢。

（2）儀器設備核定

核對與校正免疫檢驗儀器，如水浴箱、溫度計和酶標儀等，定期檢查吸管或是稀釋棒等設備的功能性，減少檢驗誤差。

（3）檢測環境控制

檢驗室內的溫度和濕度需合理調整，根據標本情況而定。待測標本需與標本基質一致，藥物檢測濃度需與實驗水平一致。期間應保證檢驗過程嚴格按照說明書進行，避免污染等危險因素。

（4）試劑選擇質量控制

檢查試劑的保存條件與日期，不可頻繁使用多個廠家試劑盒。配置好試劑后，對其進行鑒定，保證試劑合格。選購試劑時嚴格執行驗收制度，禁止采購多家試劑盒。若必須更換廠家，則要進行比對試驗，檢查試劑的有效期，并根據要求保存試劑。定期組織檢驗人員接受業務培訓，優化其專業能力，最大化規避認為因素對檢驗結果的影響。

（5）操作流程質量控制

檢驗期間出現失控現象，需中止檢驗，查明失控原因是偶然誤差還是操作因素，再對標本進行重新檢驗。重測后，檢驗結果誤差大，則再次檢驗，需校正儀器，或直接聯系專業人員予以處理。將失控原因明確填寫至報告單上，反饋給上級。檢驗后審查檢驗數據，并進行評價，若有異議則立即核對。

1.3 觀察指標

計算血清胰島素（INS）、胰島素抗體（IAb）、C 肽（CP）、甲胎蛋白（AFP）、鈣125（CA125）、癌胚抗原（CEA）、CA199、人絨毛膜促性腺激素（β-HCG）等變異系數，算法為標準偏差/平均值×100%。變異系數低，則結果穩定性好。記錄2 組患者的標本合格率。質控管理效果優：免疫檢驗指標正常；良：免疫檢驗指標基本正常；中：免疫檢驗指標輕度異常；差：免疫檢驗指標嚴重異常。

1.4 統計學分析

數據經由SPSS 21.0 軟件統計學進行處理分析，計量資料以（）表示，采用t 檢驗，計數資料以[例（%）]表示，行χ2檢驗。P ＜0.05 為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 檢驗指標變異系數比較

A 組 患 者 中 的INS、IAb、C-P、AFP、Ca125、CEA、Ca199、β-HCG 等變異系數均高于B 組，組間比較差異有統計學意義（P ＜0.05），見表1。

2.2 標本合格情況比較

B 組的標本合格率為95.24%（100/105），顯著高于A 組的87.25%（89/102），組間比較差異有統計學意義（χ2=7.071，P=0.008）。

2.3 對比管理效果優良率

A 組的管理效果優良率為88.24%，B 組為94.29%，B組顯著高于A 組，組間比較差異有統計學意義（P ＜0.05），見表2。

3 討論

免疫檢驗是輔助性、應用率較高的診斷手段，其內容復雜，程序繁瑣，人為或是標本因素均會導致結果誤差[2]。有學者發現[3]，控制檢驗環節質量可以保證診療效率。檢驗過程中，免疫細胞分泌的免疫物質是標志物，通過對其定量、細胞因子定性等分析，可檢出多種白細胞或是血液抗體的異常改變。結果誤差會導致診斷錯誤，嚴重者會引發醫療事故[4]。有研究報道[5]，檢驗結果的影響因素為：（1）外源性，儀器校準、合理存儲、標本采集、試劑盒保質期等。嚴格監管標本采集或保存工作，注意采集時間與手法等操作要點，評估激素的分泌峰值，并在轉送標本時防震、防污染與密閉，可規避外源性因素[6]。此外，應嚴格檢查儀器設備，確保其功能正常和參數正確，檢驗后需審核結果，禁止錯漏和誤漏，做好記錄工作，便于查詢[7]。（2）內源性，高水平免疫球蛋白、類風濕因子等因素均會影響檢驗結果，其控制難度較大，需要在檢驗前全面評估患者的疾病史、用藥史等資料[8]。為規避內源性因素，需定期培訓檢驗人員，使其具備高超的應變能力，可發現檢驗影響因素，并正確應對。更為主要的是，檢驗科應引進先進設備，指導檢驗人員學習新設備用法，保證檢驗質量[9]。

表1 檢驗指標變異系數比較（）

表1 檢驗指標變異系數比較（）

組別 n 變異系數INS IAb C-P AFP Ca125 CEA Ca199 β-HCG A組 102 58.65±2.15 57.15±4.74 54.68±2.51 65.49±4.15 60.12±4.14 63.48±5.84 60.13±4.85 61.22±3.17 B組 105 39.41±2.26 26.57±4.65 37.95±2.49 30.59±4.42 28.46±3.41 40.68±5.77 30.68±4.61 31.85±3.24 t 62.721 46.855 48.138 58.529 56.085 28.254 44.787 65.901 P 0.000 0.000 0.000 0.000 0.000 0.000 0.000 0.000

表2 組間管理效果優良率比較[例（%）]

研究結果顯示，A 組的各項檢驗指標變異系數均高于B 組；A 組標本合格率87.25%，低于B 組95.24%；A 組的管理效果優良率88.24%低于B 組94.29%（P ＜0.05）。說明質量控制可降低檢驗指標的變異系數，最大化保證檢驗結果的準確率，可獲得理想的管理效果，應作為免疫檢驗的常規管理模式。

總之，免疫檢驗在臨床工作中的作用顯著，隨著設備或儀器的更新換代，應持續性改進質量控制方法，符合臨床檢驗現狀，提高質量控制的可行性。討[J].中國醫藥指南，2018，16（36）：173-174.