花逸婷
【摘要】 胃癌是一種發(fā)病率及死亡率高的癌癥,早期篩查、早期治療可有效提高治愈率。miR-133a是一種微小非編碼RNA。已有研究證實,miR-133a在胃癌中表達下調(diào)且為抑癌基因,具有抑制胃癌細胞增殖、侵襲和擴散的能力。本文主要對miR-133a在胃癌中的表達調(diào)控機制和生物學(xué)作用進行綜述,為miR-133a作為臨床胃癌篩查標志物和治療靶點提供依據(jù)。
【關(guān)鍵詞】 miR-133a 胃癌 腫瘤標志物 治療靶點
doi:10.14033/j.cnki.cfmr.2020.19.075 文獻標識碼 A 文章編號 1674-6805(2020)19-0-05
Research Progress of miR-133a as a Marker of Gastric Cancer and a Therapeutic Target/HUA Yiting. //Chinese and Foreign Medical Research, 2020, 18(19): -188
[Abstract] Gastric cancer is a kind of cancer with high morbidity and mortality. Early screening and early treatment can effectively improve the cure rate. And miR-133a is a tiny non-coding RNA. Studies have confirmed that the expression of miR-133a in gastric cancer is down-regulated and it is a tumor suppressor gene, with the ability to inhibit the proliferation, invasion and spread of gastric cancer cells. In this paper, the regulatory mechanisms and biological effects of miR-133a expression in gastric cancer are reviewed, providing evidence for miR-133a as a clinical screening marker and therapeutic target for gastric cancer.
[Key words] miR-133a Gastric cancer Tumor marker Therapeutic targets
First-authors address: Yangzhou University Medical College, Yangzhou 225000, China
胃癌是消化系統(tǒng)最常見的腫瘤之一,發(fā)病機制尚未明確,由多種因素共同參與,包括環(huán)境和遺傳特征,而幽門螺桿菌感染是致癌的最重要因素。在胃癌發(fā)展過程中,多個基因和通路的失調(diào)也起著重要作用。隨著手術(shù)技術(shù)的改進和傳統(tǒng)放療、化療及新輔助治療的發(fā)展,早期胃癌的5年生存率可達95%。為提高早期診斷率,在過去幾十年里,對理想胃癌標記物的研究持續(xù)進行。研究發(fā)現(xiàn),部分抗原如癌胚抗原(CEA)、癌癥抗原19-9(CA19-9)和癌抗原72-4(CA72-4)均與胃癌有關(guān)[1]。雖然有些胃癌患者的抗原濃度可能會增加,但是CEA、CA19-9和CA72-4單獨或聯(lián)合檢測的總體敏感性仍然不足以作為胃癌篩選的必要判別標準[1]。基于此,科學(xué)家逐漸對miRNA進行深入關(guān)注。miRNA是微小內(nèi)源性進化保守的非編碼核糖核酸,長度通常為19~22個核苷酸。miRNAs在細胞核和細胞質(zhì)中由特定的機制進行處理,成熟的miRNAs是RNA誘導(dǎo)沉默復(fù)合物(RISC)的一部分,該復(fù)合物可在轉(zhuǎn)錄后控制基因表達,并與目標信使RNA的3UTR的互補序列相結(jié)合。若能夠完全互補,可誘導(dǎo)目標mRNA的降解。若只是部分互補,則可抑制其序列翻譯成蛋白。研究表明,miRNA不僅可以靶向目標信使RNA,還可靶向DNA和蛋白[2]。miRNAs參與多種分子途徑和關(guān)鍵的生物學(xué)過程,包括細胞生長、發(fā)育、分化、增殖和死亡。最新研究證明,miRNAs在實體腫瘤轉(zhuǎn)移過程中具有調(diào)節(jié)作用,而miR-133a在胃癌中表達量下調(diào),且具有抑制胃癌細胞增殖、侵襲和擴散的能力[3]。Gong等[4]研究顯示,miR-133a的下調(diào)與胃癌分化程度、局部浸潤和腫瘤分期有顯著相關(guān)性。以上結(jié)果均表明,miR-133a下調(diào)可能是一個潛在的診斷生物標志物,可以預(yù)測胃癌患者的癌癥進展情況。同時也表明,miR-133a在作為胃癌早期篩查標志物及治療靶向基因方面有著巨大的潛力。因此,了解miR-133a在胃癌中的生物學(xué)作用和調(diào)控機制極其重要。為了進一步推進研究,筆者在三個主要流行檢索引擎(PubMed、谷歌學(xué)術(shù)、中國知網(wǎng))中檢索相關(guān)文獻,總結(jié)當前miR-133a作為胃癌腫瘤標記物和治療靶點的研究進展。
1 miR-133a表達在胃癌中下調(diào),且與分化程度、局部浸潤和腫瘤分期顯著相關(guān),提示可作為胃癌腫瘤標志物
早期發(fā)現(xiàn)癌癥可以顯著降低患者死亡率。因此,科學(xué)家投入了大量精力以探索新技術(shù),期望可以實現(xiàn)這一目標。隨著研究的不斷深入,腫瘤標志物逐漸被應(yīng)用于臨床中。腫瘤標志物可用于評估風(fēng)險、診斷疾病、預(yù)測預(yù)后及治療效果、評估毒性和復(fù)發(fā)情況,存在于腫瘤組織或血清中,多種分子均可作為腫瘤分子,如DNA、miRNA、酶、轉(zhuǎn)錄因子、細胞表面受體等。其中,腫瘤相關(guān)的miRNA是評估腫瘤細胞在局部或血流中遷移的特異性標志物。miRNA是轉(zhuǎn)錄后調(diào)控基因表達的短鏈非編碼RNA,參與許多分子途徑和關(guān)鍵的生物學(xué)過程,包括細胞生長、發(fā)育、分化、增殖和細胞死亡。最新證據(jù)證明,miRNA在實體腫瘤轉(zhuǎn)移過程中具有調(diào)節(jié)作用,其中miR-133a已被證實在胃癌中表達量下調(diào),且具有抑制胃癌細胞增殖、侵襲和擴散的能力[3,5-6]。此外,miR-133a在各種類型的癌癥中均具有抑癌作用,包括卵巢癌、骨肉瘤[7-9]。本文將著重總結(jié)miR-133a作為腫瘤標記物在胃癌中的作用。
Qiu等[3]主要研究miR-145、miR-133a和miR-133b在胃癌中的表達,在26對正常組織與胃癌組織中進行了qRT-PCR檢測,結(jié)果顯示,以上miRNA在癌組織中的表達水平均明顯低于正常組織。然而,目前關(guān)于miR-133a下調(diào)的機制尚未完全清楚,仍需進一步的研究。Gong等[4]除了利用qRT-PCR對胃癌組織和正常組織的miR-133a進行測定外,還對胃癌的臨床病理特征進行分析,結(jié)果顯示,miR-133a表達與分化程度、局部侵襲和TNM分期顯著相關(guān),隨著分化程度、局部侵襲和TNM的加強,miR-133a的表達顯著降低。提示miR-133a可以作為胃癌早期檢測及預(yù)測胃癌發(fā)展的腫瘤標記物。
關(guān)于胃癌腫瘤標志物的研究一直在進行中,上述研究均是在腫瘤組織或細胞中進行的。若要將腫瘤標志物應(yīng)用于臨床中,那么關(guān)于檢驗項目的特異性、敏感性及盡量減少創(chuàng)傷性等因素不容忽視。Shao等[10]主要研究miR-133a在胃液中的表達,結(jié)果顯示,與miR-133a在胃癌組織中的表達一致,胃癌患者胃液中的miR-133a水平較健康患者顯著降低。研究還顯示,在4 ℃環(huán)境中儲存時間<24 h,胃液中miR-133a水平可以以非常穩(wěn)定的形式被檢測到,即在胃液中miR-133a的穩(wěn)定性相對較高。因此,胃液樣本中的miR-133a可作為胃癌診斷、評價和篩選的特異性標志物。
將胃液作為胃癌分子遺傳學(xué)診斷的潛在替代樣本以檢測其中miR-133a的表達水平有以下優(yōu)點:(1)在內(nèi)鏡檢查中很容易獲得胃液樣本,可操作性較強;(2)胃液中miR-133a水平與胃癌組織中miR-133a水平呈正相關(guān),即胃液中miR-133a水平能夠反映胃癌的發(fā)生發(fā)展。因此,將胃液作為胃癌miR-133a測定樣本來源的診斷可靠性較血清或血漿更高。Shao等[10]研究發(fā)現(xiàn),miR-133a在胃液中的曲線下面積(AUC)高達0.907,敏感性為85.9%,特異性為84.8%。因此,胃液中miR-133a可作為胃癌篩選的腫瘤標志物,敏感性和特異性均較高。此外,胃液只存在于胃中且胃液中miR-133a能夠穩(wěn)定存在,對診斷胃癌具有明顯優(yōu)勢。
目前,還沒有一種生物標志物被確定為能夠同時滿足診斷、預(yù)后和預(yù)測要求的理想的癌癥篩查工具,單個miRNA的高變異性和非特異性使得其應(yīng)用于診斷中的準確性和特異性較差。若將多個miRNA共同應(yīng)用于癌癥的診斷和預(yù)后判斷中,將顯著提高診斷的特異性與敏感性,如miR-126-3p、miR-34b-5p聯(lián)合診斷可識別癌和良性損傷。如何將miR-133a與其他miRNA聯(lián)合診斷胃癌以提高特異性和敏感性,相關(guān)研究尚在進行中[11]。Hung等[12]結(jié)果顯示,胃癌患者血漿中miR-376的敏感性為71.0%,特異性為78.0%,說明miR-376對胃癌具有一定的診斷價值。Wang等[13]發(fā)現(xiàn),miR-233在胃癌患者中過表達且血清表達水平與腫瘤分化分級、TNM分期、腫瘤大小及轉(zhuǎn)移情況呈正相關(guān)。由此可見,多個miRNA在胃癌診斷和預(yù)后方面有較好的應(yīng)用前景。因此,將miR-133a與多個miRNA聯(lián)合應(yīng)用于胃癌的診斷和預(yù)后判斷中以提高特異性和敏感性將是研究者進一步努力的方向。
2 miR-133a抑制胃癌細胞增殖、侵襲和擴散的相關(guān)機制研究
2.1 miR-133a通過抑制TAGLN2基因而抑制胃癌細胞生長和侵襲,誘導(dǎo)細胞凋亡和周期阻滯
肌動蛋白結(jié)合蛋白是能夠結(jié)合肌動蛋白或肌動蛋白纖維的蛋白,Transgelin-2(TAGLN2)是肌動蛋白結(jié)合蛋白的一員,在平滑肌細胞和非平滑肌細胞中均有表達,基本功能是通過結(jié)合肌動蛋白調(diào)節(jié)肌動蛋白骨架,最終參與細胞骨架重塑的過程。TAGLN2被認為與多種疾病的進展相關(guān),特別是惡性腫瘤的進展,如侵襲、轉(zhuǎn)移、耐藥等[14]。近年來,關(guān)于TAGLN2在不同類型的惡性腫瘤中的表達及調(diào)節(jié)的報道較多,指出TAGLN2下調(diào)可能抑制癌細胞增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移,提示TAGLN2可能與癌癥的發(fā)生發(fā)展有關(guān)。
Xu等[15]發(fā)現(xiàn),與癌旁組織(ANCT)相比,胃癌組織中miR-133a表達下調(diào)(P<0.001);而TAGLN2表達上調(diào)(P<0.05)。此外,在胃癌患者中,miR-133a表達降低及TAGLN2表達升高均與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān)(P<0.001、0.011)。miR-133a的異常表達能夠抑制細胞增殖和侵襲;miR-133a通過抑制TAGLN2基因以抑制癌細胞生長和侵襲,誘導(dǎo)細胞凋亡和阻滯細胞周期,提示miR-133a可能作為胃癌的生物標志物或治療靶點。
2.2 miR-133a通過或部分通過降低Sp1表達及其下游分子MMP-9、cyclin D1以抑制細胞增殖、遷移、侵襲和細胞周期進程Qiu等[3]研究結(jié)果表明,胃癌組織和胃癌細胞中miR-145、miR-133a和miR-133b表達異常降低,miR-145、miR-133a和miR-133b的缺失促進了細胞增殖、遷移、侵襲和細胞周期進程。Qiu等[3]研究還發(fā)現(xiàn),Sp1在3-UTR處含有miR-145、miR-133a和miR-133b的結(jié)合位點,是這些小RNA的直接靶標。miR-145、miR-133a和miR-133b通過負調(diào)控Sp1及其下游分子MMP-9、cyclinD1以抑制細胞惡性行為。
關(guān)于Sp1在胃癌中的作用已在較多研究中被報道,異常激活的Sp1表達是預(yù)后不良的潛在風(fēng)險,如高風(fēng)險的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移,并直接促進胃癌的發(fā)展和進展[16-17]。而Qiu等[3]數(shù)據(jù)顯示,下調(diào)的miR-145、miR-133a和miR-133b在體外阻斷了G1-S細胞周期的轉(zhuǎn)變,抑制了細胞增殖、遷移和侵襲。在分子水平上,細胞周期蛋白cyclin D1和MMP-9的表達降低可抑制上述細胞的惡性行為,提示miR-133a及其靶基因Sp1可能均是胃癌的治療靶點。
2.3 miR-133a對胃癌細胞中FSCN1蛋白的表達可能具有負性調(diào)節(jié)作用
Lai等[18]研究發(fā)現(xiàn),與正常胃組織和胃上皮細胞相比,胃癌組織和胃癌細胞系中FSCN1的表達上調(diào),而miR-133a的表達下調(diào),miR-133a對胃癌細胞中FSCN1蛋白的表達可能具有負性調(diào)節(jié)作用。表明miR-133a的抑癌活性與靶基因FSCN1的抑制有關(guān),miR-133a可能是胃癌潛在的治療靶點。
2.4 miR-133a通過翻譯抑制而非mRNA降解直接抑制IGF1R的表達
Gong等[4]使用熒光素酶報告基因分析證實,IGF1R基因是miR-133a的直接靶點。miR-133a通過翻譯抑制而非mRNA降解直接抑制IGF1R的表達。IGF1R是胰島素受體酪氨酸激酶家族中的一員,在許多癌癥中均呈過表達,并作為癌基因而發(fā)揮作用。目前,已有部分證據(jù)能夠支持IGF1R在促進癌變中的作用。上調(diào)IGF1R/胰島素受體底物1(IRS)通路蛋白,如IGF1R和mTOR,與胃癌期間化療不良反應(yīng)和不良預(yù)后密切相關(guān),和IGF1R的異常信號通路與耐藥性也密切相關(guān)。提示miR-133a可能作為一種新的治療靶點用于胃癌的治療中。
2.5 miR-133a通過下調(diào)ERBB2及其下游信號分子p-ERK1/2和p-AKT的表達以抑制胃癌細胞增殖,誘導(dǎo)胃癌細胞凋亡
Li等[19]結(jié)果表明,miR-133a的表達可以抑制SNU-1胃癌細胞的增殖。更重要的是,ERBB2是SNU-1胃癌細胞中miR133a的靶標,miR-133a的過表達能夠下調(diào)胃癌細胞中ERBB2及其下游信號分子p-ERK1/2和p-AKT的表達水平。另有研究表明,ERBB2的二聚化可導(dǎo)致部分下游效應(yīng)蛋白的磷酸化,包括ERK1/2和AKT通路[20]。而抑制ERBB2可以抑制下游蛋白p-ERK1/2和p-AKT356的表達,值得注意的是ERK1/2是絲裂原活化蛋白激酶超家族成員,被磷酸化(p-ERK1/2)后激活,一般可促進細胞增殖,抑制凋亡。p-ERK1/2在許多癌癥中均可被激活,而蛋白激酶B(AKT)是參與多種細胞過程的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白,包括細胞增殖、侵襲和凋亡。
總之,該研究表明,miR-133a通過下調(diào)ERBB2及其下游信號分子p-ERK1/2和p-AKT的表達以抑制胃癌細胞增殖,誘導(dǎo)胃癌細胞凋亡。因此,miR-133a可能被認為是治療胃癌的一個潛在靶點。
2.6 啟動子甲基化引起的miR-133a下調(diào)可能與幽門螺桿菌相關(guān)的胃癌有關(guān)
Lim等[21]研究表明,啟動子甲基化引起的miR-133a下調(diào)與幽門螺桿菌相關(guān)的胃炎和胃癌有關(guān),而根除幽門螺桿菌可以逆轉(zhuǎn)這種抑制作用。但此研究只針對幽門螺桿菌感染的胃癌患者,miR-133a的甲基化沉默可能不會參與每種胃癌的發(fā)生過程。幽門螺桿菌不相關(guān)胃癌的發(fā)生可能不受上述機制的影響。此研究另一個局限性是沒有評估幽門螺桿菌如何調(diào)節(jié)甲基化或miR-133a如何調(diào)節(jié)腫瘤發(fā)生的機制。
2.7 miR-133a-3p通過阻斷自噬介導(dǎo)的谷氨酰胺分解以抑制胃癌生長和轉(zhuǎn)移
Zhang等[22]發(fā)現(xiàn),低水平的miR-133a-3p可能是導(dǎo)致自噬的原因。自噬已被證明是惡性腫瘤的關(guān)鍵調(diào)控機制[23]。miR-133a-3p通過靶向自噬而影響谷氨酰胺分解和上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)換(EMT),使自身成為腫瘤抑制因子,阻斷胃癌細胞的增殖、遷移和侵襲。此外,化學(xué)抑制劑如硫酸羥氯喹(HCQ)與選擇性的谷氨酰胺酶抑制劑(BPTES)聯(lián)合使用可進一步增強LV-miR-133a-3p的治療作用,提示過表達miR-133a-3p可能是一種很有前途的針對胃癌發(fā)展的治療策略。
2.8 miR-133a對胃癌細胞增殖的影響可能是通過直接抑制USP39
Dong等[24]發(fā)現(xiàn),USP-39是miR-133a在胃癌細胞中的一個靶點,且miR-133a下調(diào)和/或USP39上調(diào)可提示預(yù)后不良。USP39是一種無泛素蛋白酶活性的去泛素化酶(DUBs),在RNA中起著重要的剪接作用,并對檢查有絲分裂紡錘體完整性有至關(guān)重要的作用。USP39的減少可以抑制細胞分裂。相關(guān)報道顯示,在多種腫瘤中USP39呈過表達[25-26]。提示針對miR-133a靶向USP39的研究可能會提供一個有前途的胃癌治療的靶點。但Dong等并未探究清楚miR-133a靶向USP39的相關(guān)機制,具有一定缺陷。
2.9 miR-133a通過靶向PSEN1以抑制胃癌細胞生長、遷移和EMT
Chen等[27]證實,miR-133a可負調(diào)控PSEN1,而PSEN1是miR-133a在胃癌中的直接靶標。PSEN1是一種廣泛表達的多跨膜結(jié)構(gòu)域蛋白,是分泌酶復(fù)合物的重要組成部分,能夠催化膜內(nèi)整合蛋白的斷裂,激活Notch信號通路。越來越多的研究表明,PSEN1可能在各種腫瘤中作為致癌基因以發(fā)揮重要作用[28]。PSEN1的過表達可顯著抑制胃癌細胞的活力、遷移和促進細胞凋亡,并且能顯著增加胃癌細胞的E鈣粘蛋白,降低TGF1誘導(dǎo)的N鈣粘蛋白、波形蛋白和SLUG蛋白的表達。提示miR-133a可能抑制胃癌的EMT過程。
Chen等[27]還發(fā)現(xiàn),抑制PSEN1可下調(diào)Notch1和Notch2的蛋白表達,而PSEN1過表達可上調(diào)Notch1。表明miR-133a可能通過靶向PSEN1抑制Notch通路。Notch信號通路是一種進化保守的信號傳導(dǎo)機制,通過調(diào)節(jié)細胞增殖、分化、血管重構(gòu)和胚胎及成體組織中的血管生成而在癌細胞的發(fā)生發(fā)展過程中發(fā)揮重要作用[29]。
總之,Chen等[27]研究表明,miR-133a的過度表達通過靶向PSEN1以抑制胃癌細胞的生長、遷移和EMT。可能預(yù)示miR-133a在胃癌發(fā)展和臨床治療中將起關(guān)鍵作用。
3 miR-133a作為胃癌腫瘤標志物及治療靶點的前景與展望
傳統(tǒng)的腫瘤標志物主要由腫瘤組織或正常胚胎組織產(chǎn)生,而健康成人的組織和血液中很少有腫瘤標志物。近些年,科學(xué)家將關(guān)注點轉(zhuǎn)向miRNA。大量潛在有效的miRNA生物標志物在健康人體內(nèi)是穩(wěn)定的。在評估致病潛力時,miRNA表達水平可能不受年齡、性別、體重指數(shù)(BMI)、吸煙狀況或其他基本特征的明顯影響。因此,miRNA表達模式的改變可能會被引入常規(guī)檢查中以監(jiān)測和早期診斷癌癥。循環(huán)miRNAs的動態(tài)表達模式可能與腫瘤的進展有關(guān)。miRNAs的生成是動態(tài)的,能夠?qū)崟r、動態(tài)地觀察腫瘤發(fā)生的全過程。
正如Gong等[4]研究提示,miR-133a表達與腫瘤分化程度、局部侵襲和TNM分期顯著相關(guān)。提示miR-133a可以作為胃癌腫瘤標記物及預(yù)測胃癌患者發(fā)展的可能性。
在過去幾十年里,科學(xué)家一直在尋找合適的樣本來源,盡管許多研究人員仍繼續(xù)研究血液,但部分研究人員開始分析另一來源,即胃液。他們認為,胃液可能是一個很好的胃癌生物標志物來源,因為這些標志物是由腫瘤直接釋放的,而不會被肝臟清除[30]。研究顯示,對胃癌患者胃液進行分析能夠為胃癌的分類、分期和預(yù)后提供相關(guān)依據(jù)[31-33]。1993-2011年,研究人員只在患者組織和血清標本中檢測到了miRNA,但研究結(jié)果相互矛盾,從而使miRNA的臨床應(yīng)用受到限制[34-36]。目前,已有研究證實,胃液中miRNA的下調(diào)是一種可靠的胃癌篩選的生物標志物[10]。
高敏感性和特異性是循環(huán)miRNA作為臨床診斷或預(yù)后生物標志物的基本要求和最重要的評價標準。單個miRNA分子很難滿足許多候選miRNA生物標志物的標準,因為其在患者和健康對照組中的水平是重疊的。提示一個適用的miRNA標志物,其表達水平應(yīng)該具有較高的個體差異,能夠增加假陰性或陽性診斷的可能性。Butz等[11]提示,幾種miRNA的聯(lián)合應(yīng)用將顯著提高診斷的特異性與敏感性。如外體miR-126-3p、miR-449a-5p、miR-34b-5p聯(lián)合診斷人腎透明細胞癌細胞(ccRCC),miR-126-3p、miR-34b-5p聯(lián)合診斷可識別癌和良性損傷。提示不同的miRNAs或miRNAs與其他臨床指標的結(jié)合,將是未來癌癥精準檢測的趨勢。如何將miR-133a與其他指標結(jié)合應(yīng)用于臨床中將是科學(xué)家繼續(xù)研究的方向。
但不容忽視的是,科研標準與臨床應(yīng)用標準的差異是相當明顯的,使得仔細檢查任何潛在的miRNA生物標志物變得非常重要。一個適用于特定癌癥的合適的生物標志物不僅應(yīng)該有顯著的差異表達,而且應(yīng)該能夠確定與患者預(yù)后的相關(guān)性。有限的樣本量是另一個不可避免的障礙。在實際的臨床應(yīng)用中,生物標志物的水平會受到多種因素的影響,包括年齡、性別、民族、生活方式、疾病史等。雖然有許多研究人員證實部分miRNA不受個體特征的影響,但比例可能有限。因此,研究團隊應(yīng)評估更多的樣本量以確保診斷準確性。此外,檢測結(jié)果也會受到測量原理、方法、儀器和技術(shù)人員操作的影響。因此,擴大樣本量可能是確保癌癥診斷準確性的一個關(guān)鍵過程。
此外,循環(huán)miRNA除了可作為生物標志物外,其差異表達還可能在不同癌癥的患者中發(fā)揮其他作用。部分miRNA可能只是疾病的結(jié)果或副產(chǎn)品,而部分miRNA直接或間接參與了癌癥的發(fā)生和發(fā)展過程。本篇綜述主要總結(jié)當前對于miR-133a作為胃癌抑制因子相關(guān)機制的研究進展,預(yù)示可以將miR-133a進一步作為有價值的胃癌標志物和治療靶點。
參考文獻
[1] Shimada H,Noie T,Ohashi M,et al.Clinical significance of serum tumor markers for gastric cancer:a systematic review of literature by the Task Force of the Japanese Gastric Cancer Association[J].Gastric Cancer,2014,17(1):26-33.
[2] Calin G A,Croce C M.MicroRNA signatures in human cancers[J].Nature Reviews Cancer,2006,6(11):857-866.
[3] Qiu T,Xin Z,Jian W,et al.MiR-145,miR-133a and miR-133b inhibit proliferation,migration,invasion and cell cycle progression via targeting transcription factor Sp1 in gastric cancer[J].FEBS Lett,2014,588(7):1168-1177.
[4] Gong Y,Ren J,Liu K,et al.Tumor suppressor role of miR-133a in gastric cancer by repressing IGF1R[J].World Journal of Gastroenterology,2015,21:2949-2958.
[5] White N M,F(xiàn)atoohi E,Metias M,et al.Metastamirs:a stepping stone towards improved cancer management[J].Nature Reviews Clinical Oncology,2011,8(2):75-84.
[6] Zhang J,Ma L.MicroRNA control of epithelial-mesenchymal transition and metastasis[J].Cancer & Metastasis Reviews,2012,31(3-4):653-662.
[7] Guo J,Xia B,Meng F,et al.miR-133a suppresses ovarian cancer cell proliferation by directly targeting insulin-like growth factor 1 receptor[J].Tumor Biology,2014,36(35):1557-1564.
[8] Fujiwara T,Katsuda T,Hagiwara K,et al.Clinical relevance and therapeutic significance of microRNA-133a expression profiles and functions in malignant osteosarcoma-initiating cells[J].Stem Cells,2014,32(4):959-973.
[9] Chen W S,Leung C M,Pan H W,et al.Silencing of miR-1-1 and miR-133a-2 cluster expression by DNA hypermethylation in colorectal cancer[J].Oncology Reports,2012,28(3):1069-1076.
[10] Shao J,F(xiàn)ang P H,He B,et al.Downregulated MicroRNA-133a in gastric juice as a clinicopathological biomarker for gastric cancer screening[J].Asian Pacific Journal of Cancer Prevention Apjcp,2016,17(5):2719-2722.
[11] Butz H,Nofech-Mozes R,Ding Q,et al.Exosomal microRNAs are diagnostic biomarkers and can mediate cell-cell communication in renal cell carcinoma[J].European Urology Focus,2016,2(2):210-218.
[12] Hung P S,Chen C Y,Chen W T,et al.miR-376c promotes carcinogenesis and serves as a plasma marker for gastric carcinoma[J].PLos One,2017,12(5):e0177346.
[13] Wang H,Wang L,Wu Z,et al.Three dysregulated microRNAs in serum as novel biomarkers for gastric cancer screening[J].Medical Oncology,2014,31(12):298.
[14] Meng T,Liu L C,Hao R F,et al.Transgelin-2:a potential oncogenic factor[J].Tumor Biology,2017,39(6):101042831770265.
[15] Xu X C,Zhang Y H,Zhang W B,et al.MicroRNA 133a functions as a tumor suppressor in gastric cancer[J].Journal of Biological Regulators & Homeostatic Agents,2014,28(4):615.
[16] Yao J C,Wang L,Wei D.Association between expression of transcription factor Sp1 and increased vascular endothelial growth factor expression,advanced stage,and poor survival in patients with resected gastric cancer[J].Clinical Cancer Research,2004,10(12):4109-4117.
[17] Zhang J,Ji J,Yuan F.Transcription factor Sp1 expression in gastric cancer and its prognostic value[J].Zhonghua Zhong Liu Za Zhi,2005(9):531-533.
[18] Lai C,Chen Z H,Li R X.MicroRNA-133a inhibits proliferation and invasion, and induces apoptosis in gastric carcinoma cells via targeting fascin actin-bundling protein 1[J].Molecular Medicine Reports,2015,12(1):1473-1478.
[19] Li C,Li X,Gao S,et al.MicroRNA-133a inhibits proliferation of gastric cancer cells by downregulating ERBB2 expression[J].Oncology Research,2017,25(7):1169-1176.
[20] Akhtar S,Yousif M H M,Chandrasekhar B,et al.Activation of EGFR/ERBB2 via pathways involving ERK1/2,P38 MAPK,AKT and FOXO enhances recovery of diabetic hearts from ischemia-reperfusion injury[J].PLoS One,2012,7(6):e39066.
[21] Lim J H,Kim S G,Choi J M,et al.Helicobacter pylori is associated with miR-133a expression through promoter methylation in gastric carcinogenesis[J].Gut and liver,2018,12(1):58-66.
[22] Zhang X,Li Z,Xuan Z,et al.Novel role of miR-133a-3p in repressing gastric cancer growth and metastasis via blocking autophagy-mediated glutaminolysis[J].Journal of Experimental & Clinical Cancer Research,2018,37(1):320.
[23] Filomeni G,De Zio D,Cecconi F.Oxidative stress and autophagy:the clash between damage and metabolic needs[J].Cell Death Differ,2015,22(3):377-388.
[24] Dong X,Su H,Jiang F,et al.miR-133a,directly targeted USP39,suppresses cell proliferation and predicts prognosis of gastric cancer[J].Oncology Letters,2018,15(6):8311-8318.
[25] Cai J,Liu T,Huang P,et al.USP39,a direct target of microRNA-133a,promotes progression of pancreatic cancer via the AKT pathway[J].Biochemical & Biophysical Research Communications,2017,486(1):184-190.
[26] Yuan X,Sun X,Shi X,et al.USP39 promotes colorectal cancer growth and metastasis through the Wnt/β-catenin pathway[J].Oncology Reports,2017,37(4):2398-2404.
[27] Chen X B,Li W,Chu A X.MicroRNA-133a inhibits gastric cancer cells growth, migration, and epithelial-mesenchymal transition process by targeting presenilin 1[J].Journal of Cellular Biochemistry,2019,120(1):470-480.
[28] Li P,Lin X,Zhang J R,et al.The expression of presenilin 1 enhances carcinogenesis and metastasis in gastric cancer[J].Oncotarget,2016,7(9):10650-10662.
[29] Zhou J,Jain S,Azad A K,et al.Notch and TGFβ form a positive regulatory loop and regulate EMT in epithelial ovarian cancer cells[J].Cellular Signalling,2016,28(8):838-849.
[30] Huang L,Xu A.Detection of digestive malignancies and post-gastrectomy complications via gastrointestinal fluid examination[J].Frontiers of Medicine,2017,11(1):20-31.
[31] Virgilio E,Giarnieri E,Montagnini M,et al.Analyzing gastric lavage of gastric cancer patients:a prospective observational study on cytopathology and determination of intragastric CEA,CA19.9,CA72.4 and CA50[J].Acta Cytologica,2016,60:161-166.
[32] Virgilio E,Giarnieri E,Montagnini M,et al.Detection of cancer cells and tumor markers in gastric lavage of patients with gastric cancer:do these findings have a clinicopathological significance and oncological implication?[J].Medical Hypotheses,2016,94:1-3.
[33] Virgilio E,Balducci G,Mercantini P,et al.Reconstruction after distal gastrectomy for gastric cancer:Billroth 2 or RouxEn-Y procedure?[J].Anticancer Research,2017,37(10):5595-5602.
[34] Oze I,Shimada S,Nagasaki H,et al.Plasma microRNA-103,microRNA107,and microRNA-194 levels are not biomarkers for human diffuse gastric cancer[J].Journal of Cancer Research & Clinical Oncology,2017,143(3):551-554.
[35] Wu X,Tan X,F(xiàn)u S W.May circulating microRNAs be gastric cancer diagnostic biomarkers?[J].Journal of Cancer,2015,6(12):1206-1213.
[36] Mirzaei H,Khataminfar S,Mohammadparast S,et al.Circulating microRNAs as potential diagnostic biomarkers and therapeutic targets in gastric cancer: current status and future perspectives[J].Current Medicinal Chemistry,2016,23(36):4135-4150.
(收稿日期:2020-04-14) (本文編輯:李盈)