徐祖敏,楊 俊,鄧于紅,賀紅桂,史華帝,左瑜芳 (廣東醫科大學附屬醫院腫瘤中心,廣東湛江 524001)
癌癥是全世界面臨的公共衛生問題之一[1],而肺癌患者的死亡率位居所有癌癥之首[2]。大多數肺癌在確診時已為晚期,晚期肺癌5年總生存率<5%[3]。目前,放療在非小細胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)的治療中具有重要的作用,能夠改善腫瘤患者的預后[4]。但是由于放射抵抗,制約了其療效,亦是造成治療失敗的主要原因之一。因此,尋找新型抗腫瘤藥物及低毒高效的腫瘤放射增敏劑,提高放射線對NSCLC的療效是目前的研究熱點。苦參堿(C15H24N2O)屬于四環喹嗪啶類生物堿,是傳統中藥豆科植物苦參分離提純后的活性成分,有著廣泛的生物學活性,如鎮痛、控制血脂、抗感染、抗氧化和抗腫瘤等[5]。前期研究表明苦參堿對多種腫瘤具有抗腫瘤作用,包括鼻咽癌、甲狀腺癌、乳腺癌、肝細胞癌等[6-11],但是苦參堿與放射治療聯合對NSCLC細胞的作用尚未見報道。本研究擬在體外實驗中探討苦參堿對NSCLC細胞的毒性作用,以及苦參堿聯合放療對NSCLC細胞放射敏感性的影響,并初步探討其作用機制。
人非小細胞肺癌H1299、A549細胞株在37℃、5%CO2飽和濕度條件下,用含10%胎牛血清(Biological Industries)、1%青霉素(哈藥集團)、1%鏈霉素(哈藥集團)的RMPI-1640培養基(Hyclone)進行培養、傳代以及開展后續細胞實驗。苦參堿購自上海笛柏化學品技術有限公司,CCK-8試劑盒購自日本同仁化學研究所,AnnexinV-FITC/PI凋亡檢測試劑盒購自美國BD公司,BCA蛋白濃度測定試劑盒(增強型)購自碧云天生物公司,Phospho-Histone H2AX抗體購自Cell Signaling Technology,GAPDH 抗體購自碧云天生物公司。
醫科達直線加速器 ,照射前由物理師制定放療計劃并交由技師進行操作。常溫下置于直線加速器(醫科達,瑞典)4MV X線按放療計劃單的不同劑量進行照射,源皮距(SSD)=100 cm,培養皿底部加1.5 cm厚等效組織補償膜。
取對數生長期的H1299和A549細胞接種于96孔培養板。培養箱培養24 h后,加入含不同藥物濃度的培養液(含1%FBS)100 μL/孔,使藥物最終質量濃度為0、0.25、0.5、1、2、4、8 g/L,每組藥物濃度至少3個復孔,繼續培養24、48、72 h后,分別加入含有10% CCK-8的無血清RMPI-1640培養基100 μL/孔,置于細胞培養箱內,孵育2 h后,用酶聯免疫檢測儀檢測450 nm處的OD值。細胞抑制率= 1-(OD加藥-OD空白對照) /(OD對照-OD空白對照)×100%。應用Graph Pad Prism 5.0軟件計算半數抑制濃度IC50。
取對數生長期的H1299和A549細胞制備成單細胞懸液,細胞懸液平均密度為10個/μL,按100、200、400、800和1 600個/孔的密度梯度將細胞接種于6孔板,培養箱孵育24 h,分別設為放療組和苦參堿聯合放療組。于放療前24 h加入含0.5 g/L苦參堿的完全培養基(含10% FBS),24 h后放療組和苦參堿聯合放療組給予不同劑量照射,劑量分別為0、2、4、6、8 Gy,繼續放入培養箱孵育12 h,隨后更換新鮮完全培養液。培養箱中繼續培養10 d,當培養皿中出現肉眼可見的克隆時,終止培養,然后固定、染色、計數。存活分數(SF)=受照射細胞的克隆形成率÷對照組細胞克隆形成率×100%,克隆形成率%=克隆數÷接種細胞數×100%。使用Graph Pad Prism 5.0軟件,以多靶單擊模型y=1-[1-exp(-k×x)]^N擬合細胞存活曲線,并計算放射增敏比(SER)。
取對數生長期的H1299和A549細胞制備單細胞懸液,按10×104個/皿細胞數接種至6 cm培養皿,分為對照組、苦參堿組、放療組、苦參堿聯合放療組,培養箱培養24 h后,更換含0.5 g/L苦參堿的完全培養液,培養24 h后以6 Gy劑量進行放療,細胞放療24 h后提取細胞總蛋白。定量上樣30 μg/泳道,采用10%,15% SDS-PAGE進行電泳,電壓為100 V,時間約120 min。將凝膠中蛋白轉至PVDF膜上,電流調節為300 mA,90 min。轉膜后置于含5% 脫脂奶粉封閉液中,常溫下搖床封閉1 h。封閉后,一抗濃度1:1 000,4 ℃冰箱孵育過夜。回收一抗,用新鮮配好的緩沖溶液洗膜3次,每次約10 min,然后用非同一種屬二抗濃度1:5 000~1:10 000,室溫搖床上孵育1 h,用新鮮配好的TBST洗膜3次,每次約10 min。用辣根過氧化物酶標記的HRP-ECL高靈敏度發光液于暗室中均勻地涂抹于膜的表面,X線膠片曝光,將膠片分別置于顯影液、定影液中約5 min,待膠片干燥后掃描膠片。
取對數生長期的H1299和A549細胞制備成單細胞懸液,按10×104個細胞/孔接種于6孔板,分別設為對照組、苦參堿組、放療組、苦參堿聯合放療組,每組分別設3個復孔。培養箱中培養24 h后,相應的更換含0.5 g/L苦參堿的完全培養液,培養24 h后以6 Gy劑量進行放療,繼續培養24 h后收集各組細胞,用PBS洗滌3次,1 000 r/ min離心5 min,用100 μL的Binding Buffer工作液懸浮細胞,加入5 μL Annexin V-FITC混勻后,加入5 μL PI混勻,隨后加入400 μL的Binding Buffer工作液,室溫,避光,孵育5~15 min,運用流式細胞儀檢測凋亡細胞比例,至少重復3次。
運用SPSS17.0 進行統計學分析。計量資料以均數±標準差表示,兩組間比較采用t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析及q檢驗或Dunnett’s T3檢驗。P<0.05表示差異有統計學意義。
在0.25~8 g/L范圍內,H1299、A549的細胞存活率隨著作用濃度的增加及作用時間的延長而顯著降低(P<0.01),見圖1。
與單純放療相比,苦參堿聯合放療能夠明顯降低H1299和A549細胞克隆數,差異有統計學意義(P<0.05或0.01),詳見圖2。H1299和A549細胞的放射增敏比(SER值)分別是1.22和2.02,二者SER值均>1,表明苦參堿可增強NSCLC放射敏感性。
苦參堿聯合放療組的γ-H2AX蛋白表達水平較苦參堿組和放療組顯著增加,差異有統計學意義(P<0.05),見圖3。
H1299細胞中對照組、苦參堿組、放療組、苦參堿聯合放療組的細胞凋亡率分別是(5.60±0.60)%、(8.86±1.38)%、 (8.78±3.10)%、 (19.80±1.28)%;A549細胞中對照組、苦參堿組、放療組、苦參堿聯合放療組的細胞凋亡率分別是(6.32±1.51)%、(14.90±4.29)%、(13.23±3.12)%、(24.55±5.26)%。苦參堿聯合放療組的H1299和A549細胞凋亡率明顯高于其他3組(P<0.01或0.05)。詳見圖4。

圖1 苦參堿對NSCLC細胞的影響


圖2 苦參堿聯合放療對NSCLC細胞放射敏感性的影響

圖3 苦參堿聯合放療對NSCLC細胞DNA雙鏈斷裂相關蛋白γ-H2AX的影響
苦參堿有著廣泛的生物學活性,其抗腫瘤的作用越來越受到重視。我們的研究表明,苦參堿可抑制NSCLC細胞的增殖,與前期研究結果一致[12-16]。此外,苦參堿聯合放療組能夠顯著降低細胞的克隆數,效果優于放療組和苦參堿組,其在H1299、A549細胞中的放射增敏比分別為1.22和2.02,表明苦參堿可以增加NSCLC細胞的放射敏感性。
在肺癌的治療過程中超過一半的患者會用到放療作為治療的手段。放療可直接或間接導致腫瘤細胞DNA損傷,從而觸發DNA損傷修復信號,招募相關DNA損傷修復因子進行修復[17]。核心組蛋白(H2A)家族,其成員包括H2A1、H2A2、H2AZ、H2AX、H2ABbD、 macroH2AX1和 macroH2AX2。 H2AX作為其中一員,與放療關系最為密切。當放療引起DNA雙鏈斷裂時,組蛋白H2AX被迅速招募到斷裂部位,并磷酸化為γ-H2AX,啟動DNA修復。所以γ-H2AX是DNA雙鏈斷裂損傷的標志。DNA雙鏈斷裂損傷越多形成的γ-H2AX灶點數目也越多[18]。為了進一步闡明苦參堿聯合放療對NSCLC細胞DNA雙鏈斷裂以及對γ-H2AX蛋白表達的影響,本研究通過收集不同分組和不同時間點的細胞,檢測γ-H2AX蛋白表達的情況,結果發現苦參堿聯合放療組γ-H2AX表達水平較放療組和苦參堿組顯著增加,且放療后4 h γ-H2AX蛋白的表達較放療后1 h表達水平高,提示苦參堿聯合放療可增加DNA雙鏈的斷裂。
放療可以直接誘導照射細胞的凋亡或程序性細胞死亡,而且凋亡也是放射治療誘導細胞死亡的主要機制[19]。無論是苦參堿還是放射治療,都可以誘導NSCLC細胞的凋亡。為了進一步證實苦參堿聯合放療對肺癌細胞凋亡的影響,我們運用流式細胞術檢測腫瘤細胞的凋亡,結果發現當苦參堿單獨作用于NSCLC細胞時能夠誘導細胞的凋亡,且當其與放療聯合作用后,NSCLC細胞凋亡更明顯,提示苦參堿聯合放療可增強誘導NSCLC細胞的凋亡。

圖4 苦參堿聯合放療對NSCLC細胞凋亡的影響
綜上所述,苦參堿可通過增加DNA雙鏈的斷裂誘導NSCLC細胞的凋亡,進而增加放射線對NSCLC細胞的殺傷作用。苦參堿或可作為有效的放射增敏劑,可望為NSCLC的放射增敏治療提供新的選擇。