東方百合‘索邦’的離體培養研究

賈明良, 方荷芳, 李同建, 文鋒, 韓興杰, 金洪光,徐玲玲, 廖亮

(九江學院藥學與生命科學學院, 江西 九江 332000)

百合為百合科百合屬的多年生觀賞植物，其品種豐富，花色多樣，具有非常高的觀賞價值。東方百合‘索邦’為百合切花市場的知名品種。我國市場的百合鮮切花種源主要有進口和國產兩個來源，但國產種球的切花品質要低于進口種球，究其原因，種球質量是其中的重要因素[1]。雖有研究表明，可以通過高山繁育技術來解決種球品質退化的問題[2]，但由于傳統的百合生產無論是自然繁殖還是鱗莖片扦插繁殖[3]，在繁殖過程中都會由于病毒的侵染和積累導致種球品質下降。如何大量得到種球的同時提高種球品質，是提高國產種球質量，滿足市場需求的必經之路。

針對病毒的侵染，已有學者進行了莖尖和超低溫脫毒研究[4]。利用組織培養技術對東方百合‘索邦’研究獲得優質種苗，也有一些報導[5-6]，所用到的外植體類型有鱗莖[7-8]、花器官[9-10]、葉片[11-12]等，也有學者進行了射線輻射[13]和轉基因[14]等研究。由于東方百合‘索邦’的市場需求量較大，其離體培養技術還有待進一步完善，以期為規模化種苗的生產提供理論和技術基礎。本研究利用市售的東方百合‘索邦’鮮切花為材料，取其花器官為外植體，培養得到無菌苗，而后比較組培苗不同部位的愈傷組織誘導率，進一步進行愈傷組織誘導、叢生芽增殖和生根培養等方面研究，為完善東方百合‘索邦’的離體培養體系，進行優質種球的規模化生產提供基礎。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

試驗材料東方百合‘索邦’鮮切花購自花店，以含苞待放的花朵為佳，購買后將材料置于采樣袋內，噴水保濕后帶回試驗室。

1.2 試驗方法

1.2.1初始誘導外植體的選取 以子房、花梗及花瓣作為外植體，流水沖洗后，75%酒精消毒30 s，無菌水沖洗3次，然后升汞滅菌5 min，無菌水沖洗6次。將子房、花梗和花瓣切成小塊，大小0.5 cm左右，接種到 MS+1.0 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA +30 g·L-1蔗糖+6.5 g·L-1瓊脂，pH 5.8的培養基中。培養條件為：光照強度1 500～2 000 lx、光照時間12 h·d-1、溫度(25±1)℃。25 d后統計污染率、存活率及愈傷誘導率。

1.2.2愈傷誘導外植體比較 將初始誘導的愈傷組織繼續培養成苗，培養60 d后，小苗株高為3～5 cm時，取葉片和鱗莖片，將材料分為葉片上部、葉片中部、葉片下部和鱗莖片 4個部分后，接種于 MS+1.0 mg·L-12,4-D +0.5 mg·L-16-BA +30 g·L-1蔗糖+6.5 g·L-1瓊脂，pH 5.8的培養基中培養，培養條件同1.2.1。培養45 d后觀察統計不同外植體類型的愈傷誘導率、死亡率、叢生芽誘導率等。

1.2.3愈傷誘導培養基篩選 以1.2.2試驗中得到的愈傷誘導較好的葉片下部和鱗莖片為外植體，設置5種愈傷誘導培養基，分別為MS+0.2 mg·L-12,4-D(YS1)、MS+ 2.0 mg·L-12,4-D(YS2)、MS+ 0.2 mg·L-16-BA(YS3)、MS+2.0 mg·L-16-BA (YS4)、MS+2.0 mg·L-12,4-D +0.2 mg·L-16-BA (YS5)。接種后培養，培養條件同1.2.1。培養45 d后觀察統計愈傷誘導率、叢生芽誘導率、生根率等。

1.2.4叢生芽誘導培養基篩選試驗 為方便統計叢生芽誘導的增殖倍數，將誘導得到的不定芽切去葉片，進一步再切成黃豆大小接種到添加不同濃度6-BA、NAA配比的MS培養基中進行叢生芽誘導，包括MS+l.0 mg·L-16-BA +0.l mg·L-1NAA(CSY1)、MS+l.0 mg·L-16-BA + 0.5 mg·L-1NAA(CSY2)、MS+2.0 mg·L-16-BA +0.l mg·L-1NAA(CSY3)、MS+2.0 mg·L-16-BA + 0.5 mg·L-1NAA(CSY4)、MS+5.0 mg·L-16-BA +0.2 mg·L-1NAA(CSY5)。培養條件同1.2.1。培養45 d后觀察統計分化率、增殖倍數、叢生芽生長情況等。

1.2.5生根誘導培養基篩選試驗 將生長一致且健壯的無菌苗單株切下，如有長根切去根，接種到含有不同濃度NAA的MS培養基中，NAA設定濃度為0.1 mg·L-1(SG1)、0.2 mg·L-1(SG2)、0.5 mg·L-1(SG3)、2.0 mg·L-1(SG4)及5.0 mg·L-1(SG5)。每天觀察直至出根，記錄出根天數。培養條件同1.2.1。培養45 d后觀察統計生根率、出根天數、根數、根長、生根苗狀態等。

1.3 數據統計與分析

采用Microsoft Excel 2007和SPSS 18.0軟件對試驗數據進行統計、分析和繪圖。

2 結果與分析

2.1 初始誘導外植體選擇

不同花器官部位的愈傷組織誘導結果見表1，可見，相同滅菌條件下，子房外植體的污染率為5.33%，顯著低于花梗和花瓣。存活率方面，子房外植體最高，花梗次之，花瓣最低，不同部位之間差異顯著。究其原因可能是花梗，尤其是花瓣暴露在外，污染率較高，加上褐化的產生，導致存活率較低。從愈傷誘導率方面看，子房外植體最高，為84.33%，顯著高于花梗和花瓣，花瓣的愈傷誘導率最低，僅為5%，可能跟花器官的發育程度以及幼嫩程度有關。因此綜合考慮，初始誘導建立無菌體系應選擇子房作為外植體。

表1 不同花部位初始誘導效果比較Table 1 Comparison of initial induction effect of different parts of flower (%)

2.2 愈傷誘導外植體比較

對無菌苗的不同部位進行愈傷誘導，結果(表2)可見，各部分的愈傷誘導率最高的是葉片下部，為100%；其次是鱗莖片，為93.1%；葉片上部最低，愈傷誘導率僅為6.57%。葉片上部雖有分化能力，但愈傷誘導率極低，死亡率最高，達54.43%；葉片中部愈傷誘導的死亡率也較高，為13.43%；而葉片下部和鱗莖片的死亡率均為0。由于百合愈傷生長和叢生芽生長并無明顯界限，因此也統計了叢生芽誘導的情況。不同部位均可誘導產生叢生芽，以葉片下部為外植體的叢生芽誘導率最高，為93.10%，顯著高于其他3種外植體；其次為鱗莖片，叢生芽誘導率為79.67%。

表2 不同外植體的愈傷誘導能力Table 2 Callus induction ability of different explants (%)

無菌苗不同部位誘導的生長情況(圖1)顯示，葉片下部和鱗莖片得到的愈傷組織及叢生芽呈現黃綠色，生長健壯，而葉片上部和葉片中部誘導的愈傷組織部分發生褐化、死亡，且愈傷組織及叢生芽長勢較弱。綜合愈傷誘導統計情況及誘導材料生長狀況，進行愈傷誘導時適宜選用葉片下部或鱗莖片作為外植體。

2.3 愈傷誘導培養基篩選

不同愈傷培養基的外植體生長情況(表3)可知，培養基YS2和YS5的葉片下部愈傷誘導率顯著高于其他3個培養基處理；培養基YS2鱗莖片的愈傷誘導率最高，顯著高于其他4個培養基處理，其次為YS5。培養基YS2葉片下部的叢生芽誘導率最高，為99.33%，顯著高于其他4個培養基處理，其次為YS5；而培養基YS4和YS5的鱗莖片的叢生芽誘導率顯著高于其他3個培養基處理，叢生芽誘導率分別為80.00%和79.00%。綜合愈傷誘導率和叢生芽誘導率，葉片下部和鱗莖片的合適愈傷誘導培養基為YS2和YS5。此外，在誘導過程中發現，YS1和YS2培養基中，產生叢生芽的同時還會生根，葉片下部的生根率分別為86.23%和93.43%，鱗莖片的生根率分別為93.43%和100%，而根的存在會影響后續的切割接種。因此，YS5為最合適的愈傷誘導培養基，即MS+2.0 mg·L-12,4-D+0.2 mg·L-16-BA+30 g·L-1蔗糖+6.5 g·L-1瓊脂，pH 5.8。

表3 外植體在不同激素組合培養基的生長情況Table 3 Growth of explants in medium with different hormone combinations (%)

2.4 叢生芽增殖培養基篩選結果

不同培養基的叢生芽增殖情況見表4，可見，不同培養基的分化率均為100%，但增殖倍數有所差異，CSY5的增值倍數最高，為3.96倍，其次為CSY3(3.44)和CSY1(3.26)，三者間差異顯著，增殖倍數最低的為CSY4和CSY2，分別為 3.18和3.14倍，兩者無顯著差異。從叢生芽生長情況看，CSY5處理雖然能誘導得到較多的叢生芽，但芽的葉片卷曲且有部分玻璃化現象產生。而CSY3處理的叢生芽較為瘦弱，并有一半生根。CSY4除增值倍數較低外，芽較小，葉片出現卷曲玻璃化現象。CSY2的芽弱小、有一半已生根，且增殖倍數較低。綜合考慮，選擇CSY1(MS+l.0 mg·L-16-BA +0.l mg·L-1NAA +30 g·L-1蔗糖 +6.5 g·L-1瓊脂)作為最佳叢生芽誘導培養基，得到的增殖倍數雖不是最高，但其得到的叢生芽比較整齊，葉片寬大，且無根，利于后續增殖切割或進一步進行生根培養操作。

表4 不同激素配比對叢生芽增殖的影響Table 4 Effects of different hormone combinations on proliferation of cluster buds

2.5 生根誘導培養基篩選結果

對不定芽進行生根誘導培養，結果見表5，可見，不同NAA激素水平下，生根率均為100%，出根天數也無差別，均為7 d。根長度方面雖有差別，但無顯著差異。從根數量來看，最多的為SG5培養基，根數量達13.77；其次為SG3，根數量為12.53；SG4、SG2和SG1的根數量分別為11.57、10.37和8.5，不同培養基之間均存在顯著差異。從根和植株生長狀態(表5，圖2)來看，生根數量最多的SG5培養基，苗的根粗長，有大量根毛，會粘附培養基，不利于清洗移栽，且植株葉片稀疏(圖2F)。而SG3的根數量雖不是最多，但較粗壯，且植株葉片較多，利于后續移栽(圖2D)。SG4不僅根數較SG5和SG3少，且根短粗，葉細長稀疏。而SG2和SG1不僅根數少，且根細長，根毛少。因此，選擇SG3(MS+0.5 mg·L-1NAA +30 g·L-1蔗糖 +6.5 g·L-1瓊脂，pH 5.8)作為生根培養基。

表5 不同激素配比對生根的影響Table 5 Effects of different hormone combinations on rooting

3 討論

目前，對于東方百合‘索邦’的組織培養，多數采用鱗莖片作為外植體[7-8]，鱗莖片作為外植體具有誘導效率高的特點，但由于其生長于地下，因此滅菌有一定難度。也有利用株芽、莖段和葉片等為外植體的報導[15-16]。花器官作為外植體具有品種特征突出，取材方便，滅菌容易等特點，主要取材部位為花瓣、花絲、花托和花梗[9-10]。本研究預試驗發現花絲作為外植體發生全部褐化。因此，主要選用花梗、子房和花瓣為外植體。研究發現，應選擇子房作為初始誘導的外植體，與潘娟[17]的研究結果一致。

將初始誘導得到的叢生芽進行愈傷誘導增殖時需要進行材料的選擇，本研究本著充分利用材料的出發點，將叢生芽分為葉片上部、葉片中部、葉片下部和鱗莖片4個部分進行誘導，發現葉片下部的誘導率最高，其次是鱗莖片，葉片中部和葉片上部較低。這是因為百合的誘導效果具有位置效應，總體來說，誘導效果從下到上依次降低[18]，但本研究發現葉片下部誘導效果優于鱗莖片，可能是跟品種不同有關。最佳的愈傷誘導培養基為MS+2.0 mg·L-12,4-D +0.2 mg·L-16-BA +30 g·L-1蔗糖+6.5 g·L-1瓊脂，pH 5.8，其中2,4-D的濃度達2.0 mg·L-1，可見高濃度的生長素有利于愈傷組織的產生。在誘導愈傷時發現，愈傷產生后基本都會產生不定芽，表明百合不定芽的發育與愈傷組織生成之間并無顯著的階段分隔，有學者完成了百合外植體直接誘導成苗的研究[19]，可見百合的不定芽誘導是較為容易的。本研究在誘導不定芽時依然發現葉片下部顯著優于鱗莖片，但在進行百合種苗工廠化擴繁時，還是建議將各類外植體充分綜合利用。

在進行叢生芽誘導培養基優化時，本研究發現較高的“分裂素/生長素”比值處理CSY5(MS+5.0 mg·L-16-BA +0.2 mg·L-1NAA )得到的增殖倍數要顯著高于較低“分裂素/生長素”比值處理CSY1(MS+1.0 mg·L-16-BA +0.1 mg·L-1NAA)。但CSY1得到的叢生芽比較整齊，葉片寬大，且無根，利于后續增殖切割操作或進一步進行生根培養操作，這與夏九成等[20]和錢瓊秋等[21]研究一致。

東方百合‘索邦’的生根誘導相對比較容易，在愈傷誘導以及叢生芽誘導過程中由于添加生長素，加之其內源激素的影響均發現有根長出，這與現有[21-23]研究一致，即IAA、IBA、NAA以及與BA、活性炭等的配合等均能夠誘導生根。本研究利用單一NAA作為生根誘導激素，不同濃度下生根均達到100%，但植株生長受到一定影響。綜合考慮生根及植株的生長狀態，選用SG3(MS+0.5 mg·L-1NAA +30 g·L-1蔗糖+6.5 g·L-1瓊脂，pH 5.8)作為生根培養基。煉苗移栽也是百合種苗生產的重要步驟，后續可進一步深入研究，為百合種苗生產提供基礎。