扶陽保元方通過NEDD9/TGF-β1信號介導肝癌QGY-7701細胞增殖、侵襲及遷移的實驗研究

黎軍宏，龍富立，黃晶晶，馬曉聰，張永琴

（1.廣西中醫藥大學第一附屬醫院，廣西 南寧 530023；2.廣西中醫藥大學，廣西 南寧 530200）

肝細胞癌（hepatocellular carcinoma，HCC）是全球第三大惡性腫瘤致死疾病，目前居于惡性腫瘤發病率的第五位［1］。適合行根治性手術切除的早期肝癌患者約占肝癌總人數的30%，多數患者確診時已出現不同程度的腫瘤細胞肝內播散或者肝外遷移［2］。腫瘤的侵襲和遷移是導致惡性腫瘤患者治療失敗、預后較差的主要原因［3］，臨床觀察發現，超過90%導致實體腫瘤患者死亡的原因是由腫瘤的遠處遷移引起，而不是由原發腫瘤所引起［4］。腫瘤細胞通過自身變化獲取一定的活動遷移能力，然后侵襲穿過所在位置的細胞外基質及間質，進一步侵襲進入脈管系統，在脈管系統中持續存活，然后達到遠處組織和生長［5-6］。對于腫瘤細胞來說，通過其自身內在的改變以及周圍環境的影響，使之適應周圍環境并逐漸脫離細胞間接觸以及細胞與外周基質、基底膜間的接觸，獲取一定的遷移能力，并最終侵襲入周圍間質，是腫瘤發生遷移的關鍵起始步驟［7-8］。神經前體細胞發育下調因子9（neural precursor cell expressed developmentally down-regulat?ed 9，NEDD9）是一種與細胞表面粗附斑相關的細胞支架蛋白，其與HCC的侵襲和遷移關系密切［9］。近年來研究發現，NEDD9在肝癌組織中呈高表達狀態，基因轉染上調NEDD9表達后肝癌細胞的增殖、遷移以及侵襲能力明顯增強，轉染下調NEDD9基因表達后這些能力相應減弱；體內實驗也證實NEDD9與肝癌細胞的體內增殖、遷移以及侵襲能力相關［10］。臨床觀察發現扶陽保元方對多種實體瘤包括肝癌、肺癌等具有治療作用，本實驗研究扶陽保元方通過調控NEDD9/轉化生長因子-β1（TGF-β1）信號抑制人肝癌細胞增殖、侵襲和遷移的作用機制，為扶陽保元方治療肝癌提供實驗依據。

1 實驗材料

1.1 細胞株 人肝癌QGY-7701細胞株購自通派生物科技有限公司，批號：907041。

1.2 動物 SPF級雄性SD大鼠8只，由廣西醫科大學實驗動物中心提供，動物合格證號：SCXK桂2014-0003。飼養條件：溫度25℃，濕度40%，12 h光照/12 h黑暗，隨意攝取水和食物。

1.3藥品與試劑 鹽酸吉西他濱（齊魯制藥有限公司，批準文號：國藥準字H20103386，批號：H20030104）；扶陽保元方由制附子20 g（先煎1 h）、白術15 g、干姜15 g、青皮15 g、茯苓15 g、丹參15 g、郁金15 g、延胡索15 g、炙甘草6 g組成，由廣西中醫藥大學第一附屬醫院制劑室提供，最終含生藥濃度為0.50 g/ml；1640培養基［賽默飛世爾科技（中國）有限公司，批號：CH19027813.1］；噻唑藍（MTT）溶液（上海士鋒生物科技有限公司，批號CH19027813.1）；Transwell小室（上海士鋒生物科技有限公司，批號：P007810-1）；胰蛋白酶（中國碧云天公司，批號041819190617）；SYBR Pre?mix Ex TaqTMⅡ（美國Takara公司，批號：AIF2352A）；BCA蛋白濃度測定試劑盒（中國碧云天公司產品，批號：P0009）；ANTI-TGF-βAntibody試劑盒（武漢博士德生物工程有限公司，批號BM5603）；ANTI-SMAD2 Antibody試劑盒（武漢博士德生物工程有限公司，批號：BM3992）；ANTI-β-Actin Antibody試劑盒（武漢博士德生物工程有限公司，批號：BM0627）；HRP-羊抗兔IgG試劑盒（武漢博士德生物工程有限公司，批號：BA1055）。

2 方 法

2.1 細胞株的培養 QGY-7701細胞株接種于含10%胎牛血清的RPMI-1640培養基中，置于37℃、5% CO2的恒溫細胞培養箱中傳代培養。每隔2天更換1次培養基，當細胞長滿80%以上密度進行傳代及后續實驗。

2.2 扶陽保元方含藥血清的制備 取SD大鼠8只，灌胃給予扶陽保元方溶液（劑量為10 g/kg），灌胃容積為20 ml/kg，2次/天，第7 d（給藥1周達到血藥濃度峰值）灌胃1 h后處死大鼠取血，3 000 r/min離心10 min取血清、滅活，過濾除菌后，予4 ml離心管分裝并保存于-80℃冰箱，使用時分別稀釋成5%、10%、20%扶陽保元方含藥血清。

2.3 QGY-7701細胞增殖的檢測 實驗分為空白組、吉西他濱組和扶陽保元方含藥血清高、中、低濃度組，采用噻唑藍（MTT）比色法檢測QGY-7701細胞增殖。取對數生長期的QGY-7701細胞，胰酶消化后制作單細胞懸液（5×104個/ml），接種到96孔培養板，每孔加入100μl細胞懸液。待細胞貼壁后，空白組每孔加入200μl培養液，扶陽保元方含藥血清低、中、高濃度組每孔分別加入5%、10%、20%含藥血清培養液200μl，吉西他濱組每孔加入20μmol/L的吉西他濱溶液200μl，每組設定5個復孔。孵育培養72 h后，每孔加MTT溶液20μl，孵育4 h，采用酶聯免疫檢測儀在波長490 nm處測定各個孔吸光值（OD），然后取平均值，細胞增殖率計算公式：細胞增殖率=藥物組OD值/空白組OD值×100%。

2.4 QGY-7701細胞侵襲和遷移能力的檢測 實驗分組同“2.3”項，采用Transwell實驗檢測細胞侵襲與遷移能力。取Matrigel基質膠原液置于4℃冰箱內過夜融化，基質膠和無血清DMEM培養基按1∶5比例配置稀釋，37℃培養箱中孵育3 h使其成膠待用。上層小室中分別接種各組對數期生長的QGY-7701細胞至無血清RPMI 1640培養基中，下室加入10% FBS的RPMI 1640培養基。培養24 h后取出Transwell小室，并用提前預冷的PBS沖洗，用棉簽擦凈小室膜上表面的基質膠和細胞。加入多聚甲醛固定15 min，用0.1%結晶紫染液室溫下染色30 min，PBS中漂洗2遍，光學顯微鏡下隨機觀察6個視野并計算結晶紫染色細胞數的平均值。

2.5 蛋白質印跡（Western Blot）法檢測NEDD9、TGFβ1、Smad2蛋白的表達水平 空白組、吉西他濱組（20μmol/L）和扶陽保元方含藥血清中濃度組加入相應的藥物后繼續培養24 h，加入RIPA裂解液冰上裂解，12 000 r/min，4℃離心20 min提取總蛋白；采用BCA試劑盒行蛋白濃度測定，制備樣品；行SDSPAGE電泳，轉膜2 h，用5%脫脂奶粉封閉1 h，按推薦稀釋比稀釋一抗抗體，一抗4℃孵育過夜，復溫1 h，二抗室溫孵育1.5 h；最后按1∶1配制ECL顯影液，采用Bio-rad凝膠成像系統檢測蛋白條帶，灰度分析軟件定量分析。

2.6 實時熒光定量PCR（qRT-PCR）檢測NEDD9、TGF-β1、Smad2 mRNA的表達水平 空白組、吉西他濱組（20μmol/L）和扶陽保元方含藥血清中濃度組加入相應的藥物后繼續培養24 h，TRIZOL一步法提取每組細胞總RNA，紫外分光光度計測定所提取RNA濃度。擴增反應在ABI 7000熒光定量PCR儀上進行，各組熒光信號值由ABI Prism 7000 SDS軟件實時產生并自動計算定量。

2.7 統計學方法 采用SPSS 20.0軟件進行數據分析，數據以均數±標準差（x±s）表示，兩組間比較采用t檢驗或非參數檢驗，多組間比較采用方差分析。P＜0.05表示差異有統計學意義。

3 結 果

3.1 各組QGY-7701細胞增殖情況比較 與空白組比較，扶陽保元方含藥血清低、中、高濃度組和吉西他濱組處理48 h、72 h后人肝癌QGY-7701細胞增殖均受到明顯的抑制（P＜0.01）。見表1。

表1 各組QGY-7701細胞增殖情況比較 （%，x±s）

3.2 各組QGY-7701細胞侵襲和遷移能力比較 與空白組比較，扶陽保元方低、中、高濃度組和吉西他濱組處理24 h后人肝癌QGY-7701細胞侵襲和遷移能力均明顯減弱（P＜0.01），見表2。

表2 各組侵襲和遷移細胞數目比較 （x±s）

3.3 各組QGY-7701細胞NEDD9、TGF-β1、Smad2蛋白表達結果比較 與空白組比較，QGY-7701細胞經10%扶陽保元方含藥血清或吉西他濱（20μmol/L）處理24 h后，NEDD9、TGF-β1、Smad2蛋白表達均顯著下降（P＜0.05或P＜0.01）。見表3。

表3 各組NEDD9、TGF-β1、Smad2蛋白表達結果比較 （x±s）

3.4 各組QGY-7701細胞NEDD9、TGF-β1、Smad2 mRNA表達結果比較 QGY-7701細胞經10%扶陽保元方含藥血清或吉西他濱（20μmol/L）處理24 h后，與空白組比較，NEDD9、TGF-β1、Smad2 mRNA表達均顯著下降（P＜0.01）。見表4。

表4 各組NEDD9、TGF-β1、Smad2 mRNA表達結果比較 （x±s）

4 討 論

TGF-β1在腫瘤的發生發展中具有雙重作用，其在抑制腫瘤細胞生長的同時，也能通過誘導上皮間質轉化（EMT）和促進血管生成來增強腫瘤細胞的侵襲和遷移能力［11-12］。在對NEDD9的轉錄調控研究中，一些學者發現在TGF-β1的刺激下，可誘導腫瘤細胞中NEDD9的表達［13-14］以及NEDD9廣泛的酪氨酸磷酸化，NEDD9蛋白的表達主要是通過誘導NEDD9 mRNA的轉錄而引起的，而NEDD9的磷酸化并不需要細胞的黏附或者不完整的細胞骨架的刺激。另一方面，一些研究人員卻發現，在TGF-β1的刺激下，NEDD9能與Smad、泛素連接酶等蛋白相互作用，以促進NEDD9自身的蛋白水解，但這種作用只限制于發生凋亡的細胞中［11］。同時，作為反作用，NEDD9通過調控Smad的活性，以負反饋調節的形式抑制TGF-β1信號的持續刺激［15］，在腫瘤發展的早期，NEDD9通過這種形式來減輕TGF-β1對生長的抑制作用［16］，且可以在Ras信號通路的協同作用下來誘導腫瘤的侵襲遷移；在腫瘤發展的晚期，NEDD9則可在TGF-β1的刺激下主要發揮促進遷移的作用［12］。由此可見，NEDD9和TGF-β1信號通路之間的相互協調作用，使NEDD9得以充分發揮其在侵襲、遷移方面的作用。

本實驗通過MTT法檢測了扶陽保元方對QGY-7701細胞增殖抑制能力，結果表明扶陽保元方能夠有效抑制QGY-7701細胞增殖。Transwell實驗結果顯示扶陽保元方對QGY-7701細胞的侵襲與遷移具有明顯的抑制作用。通過檢測NEDD9、TGF-β1、Smad2的蛋白表達與mRNA表達情況，Western Blot結果表明，經扶陽保元方處理后QGY-7701細胞的NEDD9的蛋白表達水平下調，其下游的TGF-β1、Smad2蛋白表達水平也下調，NEDD9、TGF-β1、Smad2的mRNA表達變化與Western Blot結果一致，說明扶陽保元方能夠在轉錄水平抑制NEDD9、TGF-β1、Smad2表達。提示扶陽保元方很可能是通過調節NEDD9蛋白水平從而抑制肝癌細胞的侵襲與遷移；而TGF-β1通過Smad信號介導易位到細胞核，活化的TGF-β1能使Smad2磷酸化進入細胞核進而調節靶基因轉錄，參與對細胞的增殖、凋亡及遷移等過程，其作用機制可能是通過下調NEDD9/TGF-β1信號，進而抑制Smad2的蛋白表達而發揮抑制人肝癌細胞增殖侵襲與遷移的作用。