青貯劑對再生稻頭季全株青貯品質和體外瘤胃發酵特性的影響

鄒詩雨 ，陳思葵 ，唐啟源 ，陳東 *，陳元偉 ，鄧攀 ，黃胥萊 ，李付強

（1. 湖南農業大學動物科學技術學院，湖南長沙410128；2. 湖南農業大學農學院，湖南長沙410128；3. 湖南天華實業有限公司，湖南婁底417000）

近年來，隨著我國草食畜牧產品產量的持續增長和養殖規模化的持續推進，牧場對于優質粗飼料和蛋白質飼料的依賴程度越來越高。但是，由于我國飼草種植成本較高，造成了優質粗飼料和蛋白質飼料的短缺以及飼養成本高等問題，制約了我國畜牧業的發展。水稻（Oryza sativa）是世界上主要的糧食作物之一，而再生稻作為水稻種植的一種模式，具有種植成本低、經濟效益高的特點。據各地熱量資源測算，中國南方稻區適宜發展再生稻的耕地面積約335 萬hm2，而實際種植面積只有40 萬hm2，由于再生稻必須在溫、光、水條件適宜的地區種植才能保證其穩產高產，且對品種要求嚴格，再生稻作為糧食作物的應用受到了限制，但是作為飼料原料的應用仍具有廣闊的發展前景［1］。本研究通過提前將再生稻頭季進行全株刈割，并在添加不同青貯劑后進行青貯，延長其再生季生育期，在大幅提升再生季稻谷產量的同時，為草食動物提供穩定且質量保障的青貯飼料。

添加青貯劑能有效提高青貯發酵品質，某些添加劑（乳酸菌、纖維素酶等）還能提高青貯飼料的營養價值［2］。植物乳桿菌可以在厭氧發酵的起始階段，通過高效利用飼料作物中的可溶性碳水化合物快速發酵產生乳酸和降低pH，從而有效地改善青貯飼料的品質［3］。糞腸球菌可以加快產生乳酸，使pH 值迅速降低至5.0 以下，有利于乳酸菌的發酵［4］。纖維素酶和木聚糖酶可以降解植物細胞壁，將纖維素和木聚糖分解為可溶性碳水化合物，為乳酸菌的繁殖提供更多的底物，同時也能提高青貯飼料的消化率［2］。目前青貯劑對青貯品質和體外瘤胃發酵特性的影響主要集中在全株玉米和苜蓿等［5?6］方面，且再生稻頭季全株青貯發展起步較晚，研究主要集中在稻秸的青貯劑選擇［7］、品種特性［8］和混合青貯技術［9］上，添加不同青貯劑對再生稻頭季全株青貯品質和體外瘤胃發酵特性的影響研究還鮮見報道。本研究以再生稻頭季全株為研究對象，評價不同青貯劑對再生稻頭季全株的青貯品質和青貯后體外瘤胃發酵的影響，為商品化再生稻頭季全株青貯飼料的開發和利用提供數據支持。

1 材料與方法

1.1 青貯試驗

1.1.1 青貯調制 2018 年8 月于益陽市大通湖區千山紅鎮大西港村進行青貯試驗。青貯原料為2018 年大通湖區宏碩生態農業農機合作社試驗地種植的水稻（湘兩優900），刈割時期為齊穗后25 d、留茬高度為20 cm，切碎至2～3 cm 待用。青貯原料營養水平見表1。

表1 青貯原料營養水平（風干基礎）Table 1 Nutrient levels of silage raw materials（air-dry basis，%）

試驗所用植物乳桿菌、糞腸球菌、纖維素酶、木聚糖酶和半纖維素酶為湖南普菲克生物科技有限公司贈送，采用單因素完全隨機設計，青貯劑處理組分別為1 組（N1）：植物乳桿菌（60%）+纖維素酶（30%）+木聚糖酶（10%）；2 組（N2）：植物乳桿菌（70%）+糞腸球菌（20%）+纖維素酶（5%）+半纖維素酶（5%）；3 組（N3）：植物乳桿菌（30%）+糞腸球菌（60%）+纖維素酶（5%）+半纖維素酶（5%）；對照組添加等量的水（CK）。將不同青貯劑（添加量為500 g·t?1FW）溶液分別均勻地噴灑在混合青貯料上并充分混勻，分別裝入聚乙烯袋（200 mm×300 mm）中，用真空包裝機（諾豐DZ400/2D）抽真空模擬裹包青貯，在室溫條件下（25 ℃左右）貯藏45 d 后進行開包取樣，每組6 個重復。

1.1.2 青貯后營養物質評定 各組逐一開啟青貯袋并混勻后，按“四分法”［10］得到分析樣品，每個重復600 g 左右，然后進行粉碎，一部分過0.425 mm 孔篩，進行營養物質成分干物質（dry matter，DM）、粗蛋白質（crude protein，CP）、粗脂肪（ether extract，EE）、中性洗滌纖維（neutral detergent fiber，NDF）、酸性洗滌纖維（acid detergent fiber，ADF）、可溶性碳水化合物（water soluble carbohydrate，WSC）含量的檢測；另一部分過0.250 mm孔篩，于清潔干燥處保存，之后進行體外瘤胃發酵批次培養。

1.1.3 青貯發酵特性評定 青貯袋開啟后，各組按“四分法”［10］稱取20 g 青貯飼料，加入180 mL 去離子水，用榨汁機（九陽JYL-C012 型多功能攪拌機）榨汁1 min，勻質液用4 層紗布過濾，測定pH。濾液用于測定氨態氮（ammoniacal nitrogen，NH3-N）和揮發性脂肪酸（volatile fatty acid，VFA）含量。

1.2 體外發酵試驗

1.2.1 供體動物飼養管理 2018 年12 月于湖南農業大學動物科學技術學院以再生稻頭季全株青貯樣品進行體外發酵試驗。選擇3 只安裝永久性瘤胃瘺管、體況良好、體重［（25.0±2.0）kg］接近的成年湘東黑山羊羯羊作為體外瘤胃液供體動物，每日營養需要參考《肉羊飼養標準》（NY/T 816-2004）［12］1.3 倍維持需要設計，配制精粗比為40∶60 的飼糧。精料組成（風干基礎）為：玉米47.00%，豆粕24.00%，麩皮22.00%，食鹽0.77%，石粉2.23%，預混料4.00%。粗料為玉米秸稈，鍘短，長度2～3 cm；精料經2.5 mm 篩粉碎。山羊自由飲水，單籠飼養，實行限飼，采食量設計為風干樣500 g·d?1，每天08：00 和16：00 各等量飼喂1 次。預試期調整山羊采食量，確保試驗期能完全采食。

1.2.2 人工瘤胃緩沖液與培養液配制 人工瘤胃緩沖液參照Menke 等［13］的方法進行配制。取520.2 mL 蒸餾水、0.1 mL 微量元素溶液、208.1 mL 緩沖溶液、208.1 mL 常量元素溶液和1.0 mL 刃天青溶液，于具塞玻璃瓶中，持續充入CO2氣體，置于恒溫水浴中預熱至39.5 ℃待用。使用前加入62.4 mL 還原劑溶液，并繼續充入CO2氣體，直至緩沖液從藍色轉變紅色，再變為近無色即可。試驗當天晨飼前采集供體羊的瘤胃液1000 mL，置于預先通有CO2的保溫瓶中，立即蓋嚴瓶口，迅速帶回實驗室。將供體羊的瘤胃液混合均勻后經4 層紗布擠壓過濾于接收瓶中，置于39.5 ℃水浴中保存，并持續充入CO2以確保瘤胃液處于厭氧環境。以體積比1∶4 將瘤胃液和已預熱至39 ℃的人工瘤胃緩沖液混合均勻制成培養液。

1.2.3 體外發酵操作 采用 Menke 等［13］體外產氣法，分別稱取 N1、N2、N3和 CK 組的樣品各 0.6 g 放入 200 mL發酵瓶中，并將其置入39.5 ℃恒溫培養箱內預熱30～60 min。取50 mL 培養液厭氧分裝至200 mL 發酵瓶中（邊操作邊通入CO2），發酵瓶用橡膠塞和鋁蓋封口后，在（39.5±0.5）℃的水浴搖床中體外發酵24 h，每個樣品設6個重復，同時做空白試驗。發酵過程中，用具有1 mL 分度的100 mL 具塞注射器裝體外產氣管（Fortuna?，德國產）記錄培養3、6、9、12 和24 h 的產氣體積。在24 h 體外發酵結束后，迅速將發酵瓶放置在碎冰中終止發酵，用已編號并65 ℃烘干稱重的尼龍布（50 μm）過濾，再經蒸餾水沖洗發酵瓶數次直至干凈，確保發酵瓶內無殘留物。待濾液置于接收瓶后，將尼龍布及濾渣小心無損地轉移到烘箱中65 ℃烘干48 h 至恒重。

1.2.4 體外產氣量與產氣參數的計算

式中：GPt為樣品在t時刻的產氣量（mL）；Vt為樣品發酵t小時后，玻璃管刻度讀數（mL）；V0為樣品在開始培養時的玻璃管刻度讀數（mL）；W為樣品干物質重量（mg）；GP空白為空白對照的產氣量。

采用Φrskov 等［14］提出的數學模型對0～24 h 的產氣規律進行擬合：

式中：GP為t時刻產氣量；a為快速降解部分的產氣量（mL）；b為慢速降解部分的產氣量（mL）；c為慢速降解部分的產氣速率（%·h?1）；a+b為潛在產氣量（理論總產氣量）（mL）；t為發酵時間（h）。

1.2.5 體外瘤胃發酵特性 發酵24 h 后迅速采用pH 計（UB-7 型；Denver Instrument 公司，美國）對每個發酵瓶中的發酵液進行pH 測定，并將發酵液分裝到5 mL 離心管中，?20 ℃保存，測定其VFA 和NH3-N 的含量。

1.2.6 體外降解特性評定 將裝有濾渣的尼龍布反復用水洗滌后，晾干，105 ℃烘4 h 后稱重，測定其DM、CP、NDF 和ADF 含量，按以下公式計算體外瘤胃發酵底物的DM 降解率和營養物質瘤胃降解率：

DM降解率=[(放入發酵瓶前底物重?終止發酵后殘留底物重)/放入發酵瓶前底物重]×100%

某營養物質的降解率=［（發酵前該營養物質的含量?發酵后該營養物質的含量）/發酵前該營養物質的含量］×100%

飼料樣品在體外發酵24 h 的產氣量與綿羊體內有機質（organic matter，OM）降解率之間呈顯著的正相關［13］，體外OM 降解率公式為：

式中：GP（gas production）為 24 h 產氣量；CP 為粗蛋白質含量。

1.3 指標測定方法

DM、CP 或總氮（TN）、NDF、ADF 及 EE 的測定分別按 GB/T 6435-2006［15］、GB/T 24318-2009［16］、GB/T 20806-2006［17］、NY/T 1459-2007［18］及 GB/T 6433-2006［19］的 方法進行，參 考 Zahiroddini 等［20］的方法 測 定 WSC 含量，總能（gross energy，GE）的測定采用氧彈燃燒法進行。用 Spectrum 公司 SI400 型 pH 計測定 pH［21］。通過裝有檢測器和HP-INNOwax（30.0 m×320 μm×0.5 μm，Catalog No：19091N-213）毛細管色譜柱的氣相色譜儀（GC-2010；Shimadzu Corporation，日本）測定 VFA 含量［22］，主要測定乙酸、丙酸、丁酸、異戊酸和正戊酸 5 種 VFA 含量。采用T/CAAA 003-2018［23］中的苯酚?次氯酸鈉比色法測定濾液NH3-N 含量。

1.4 數據分析

數據經Excel 2010 整理后，利用SPSS 23.0 統計軟件進行單因素方差分析（one-way ANOVA），采用Duncan氏法進行多重比較，結果以平均值±標準誤表示，P＜0.05 為差異顯著。

2 結果與分析

2.1 青貯劑對再生稻頭季全株營養物質的影響

如表 2 所示，再生稻頭季全株青貯在添加 N1、N2和 N3組青貯劑后，CP、EE 和 WSC 含量無顯著差異（P＞0.05）。N1、N2和 N3組的 GE 均顯著高于 CK 組（P＜0.05），且 N1、N2和 N3組之間無顯著差異（P＞0.05）。N1、N2和N3組的 NDF 含量極顯著低于 CK 組（P＜0.01），且 N2組極顯著低于 N1和 N3組（P＜0.01），N1和 N3組之間無顯著差異（P＞0.05）。N1、N2和 N3組的 ADF 含量均極顯著低于 CK 組（P＜0.01），且 N1、N2和 N3組之間無顯著差異（P＞0.05）。N1、N2和 N3組的 TDN 含量 極顯著高于 CK 組（P＜0.01），且 N1、N2和 N3組 之間無 顯著差異（P＞0.05）。

表2 青貯劑對再生稻頭季全株青貯營養物質含量的影響（風干基礎）Table 2 Effects of silage additives on nutrients of first season ratoon rice whole silage（air-dry basis）

2.2 青貯劑對再生稻頭季全株青貯品質的影響

如表 3 所示，N1、N2和 N3組的乙酸含量顯著高于 CK 組（P＜0.05），且 N1、N2和 N3組之間無顯著差異（P＞0.05）。N1、N2和 N3組的 NH3-N/TN 顯著低于 CK 組（P＜0.05），且N1、N2和 N3組之間無顯著差異（P＞0.05）。

表3 青貯劑對再生稻頭季全株青貯品質的影響Table 3 Effects of silage additives on quality of first season ratoon rice whole silage

2.3 青貯劑對再生稻頭季全株體外發酵24 h 累積產氣量和體外產氣參數的影響

如表 4 所示，N2組的 24 h 累積產氣量極顯著高于 N1、N3和 CK 組（P＜0.01），且 N1、N3和 CK 組之間無顯著差異（P＞0.05）。N2組的快速降解部分的產氣量極顯著高于 N1、N3和 CK 組（P＜0.01），且 N1、N3和 CK 組之間無顯著差異（P＞0.05）。N2組的潛在產氣量極顯著高于 N1、N3和 CK 組（P＜0.01），且 N1組極顯著高于 CK 組（P＜0.01）。

表4 青貯劑對再生稻頭季全株青貯24 h 累積產氣量和體外產氣參數的影響Table 4 Effects of silage additives on 24 h cumulative GP and gas production parameters in vitro of first season ratoon rice whole silage

2.4 青貯劑對再生稻頭季全株青貯體外瘤胃發酵特性的影響

如表 5 所示，體外瘤胃發酵 24 h 后，N1和 N2組的 pH 極顯著低于 N3和 C K 組（P＜0.01）。N2組的乙酸和 NH3-N 含量顯著高于 N1、N3和 CK 組（P＜0.05）。N1和 N2組的丙酸含量顯著高于 N3和 CK 組（P＜0.05）。N2組的乙酸/丙酸顯著低于N3和 CK 組（P＜0.05）。

表5 青貯劑對再生稻頭季全株青貯體外瘤胃發酵特性的影響Table 5 Effects of silage additives on in vitro rumen fermentation characteristics of first season ratoon rice whole silage

2.5 青貯劑對再生稻頭季全株體外發酵24 h 的營養物質降解率的影響

如表 6 所示，N2和 N3組的 DM 降解率和 CP 降解率顯著（P＜0.05）和極顯著（P＜0.01）高于 N1和 CK 組。N2組的 OM 降解率、NDF 降解率和 ADF 降解率均極顯著高于 N1、N3和 CK 組（P＜0.01），且 N1、N3和 CK 組之間無顯著差異（P＞0.05）。

表6 青貯劑對再生稻頭季全株青貯體外發酵24 h 的營養物質降解率的影響Table 6 Effects of silage additives on degradation rates of nutrients after 24 h in vitro fermentation of first season ratoon rice whole silage（%）

3 討論

3.1 青貯劑對再生稻頭季全株青貯品質的影響

乳酸菌制劑和酶制劑是目前青貯過程中最常見的發酵促進型添加劑。本試驗采用的植物乳桿菌和糞腸球菌分別屬于乳桿菌屬和腸球菌屬，都是目前用于生產乳酸的主要菌屬，可以有目的地調節青貯原料內微生物區系，增加青貯初期乳酸菌的數量，迅速降低青貯原料的pH，抑制蛋白質分解，更有效地保存營養物質。但是乳酸菌在實際生產條件下的添加效果受植物本身附著的乳酸菌數量、碳水化合物的可利用性和環境因素的影響較大［24］，且有眾多研究表明［6?7，25?26］，單獨添加乳酸菌制劑無法有效降解NDF 和ADF，對提高青貯品質的效果有限，與酶制劑組合使用才能達到更佳的青貯效果。通過添加纖維素酶和半纖維素酶等，可以將植物細胞壁的纖維素分解為單糖和雙糖，為乳酸菌繁殖提供所需營養。木聚糖酶屬于半纖維素酶，與纖維素酶共同作用有降低青貯原料NDF 和ADF 的作用。本試驗設計3 個菌酶組合，結果發現N1、N2和N3組與CK 相比，DM 含量有增加的趨勢，說明3 組青貯劑均可以降低再生稻頭季全株青貯DM 的損耗，提高青貯品質。N1、N2和N3組與CK 相比，CP 和WSC含量無顯著差異，這與興麗［27］研究添加乳酸菌對全株水稻青貯飼料營養成分的影響結果一致，但與徐然等［25］研究結果不同。主要原因可能是再生稻頭季全株青貯原料的WSC 含量較低，且由于額外添加乳酸菌需要消耗更多的發酵底物，影響了乳酸菌的生長繁殖，建議在條件容許時，可以通過添加糖蜜等碳源來改善青貯品質。同時也有研究證明［28］，有些乳酸菌和酶制劑之間存在一定的拮抗作用，本試驗的結果可能與此有關。N1、N2和N3組的總能顯著高于CK，這可能是青貯過程中，青貯劑添加組青貯發酵時間短，熱能散失較少。N1、N2和N3組與CK 相比，NDF 和ADF 含量顯著降低，且N2組的NDF 含量顯著低于N1和N3組，說明添加纖維素酶和半纖維素酶能在青貯過程中對植物細胞壁進行降解，使得NDF 和ADF 含量降低，改善了再生稻頭季全株青貯的品質，改善效果以N2組青貯劑的菌酶組合更佳。TDN 含量是衡量飼料采食量和能量價值的重要指標［29?30］，本試驗結果顯示，N1、N2和N3組的TDN 含量顯著高于CK 組，說明3 組青貯劑均可以提高飼料可利用率，改善青貯營養品質，效果以N2組青貯劑的菌酶組合更佳。

pH 決定了青貯飼料最終發酵品質的好壞及其營養損失的情況，其理想pH 在3.9～4.2［31］。本試驗中各組pH均在4.5～4.6，雖然沒能降到理想區間，但是纖維素酶在pH 為4.5 時活性最強［32］，能發揮其最佳作用。N1、N2和N3組的pH 與CK 組無顯著差異，這與徐然等［25］的研究結果一致。pH 不在4.2 以下，可能是青貯原料的WSC 含量偏低，或是發酵過程中乙酸較乳酸的酸性弱，乳酸菌在發酵后期變得活躍，可以將乳酸轉化為醋酸和1，2?丙二醇［33］，建議在條件容許時，可以適當添加WSC 含量較豐富的原料進行混合青貯來提高再生稻頭季全株青貯品質。VFA 濃度是反映青貯品質好壞的重要指標。Kung 等［34］研究發現，高含量的乙酸可以顯著提高青貯飼料的有氧穩定性。所以，乙酸含量可以作為判斷青貯有氧穩定性的重要依據。本試驗中，N1、N2和N3組乙酸含量與CK 組相比顯著增加，對提高再生稻頭季全株青貯品質具有促進作用。NH3-N/TN 被廣泛用于衡量青貯品質的好壞。NH3-N 主要是由丁酸菌和大腸桿菌分解青貯原料中的有機含氮物質生成，從而使青貯飼料的營養價值降低［35］。本試驗3 組添加青貯劑的NH3-N/TN 與CK 組相比顯著降低，有效地抑制了植物酶和微生物對蛋白質的水解，這與鐘書等［26］的研究結果一致。各組的NH3-N/TN 比例較高，主要原因可能是青貯飼料的pH 高于4.2，丁酸菌等有害微生物的活動未能得到有效地抑制［36］，同時青貯原料的TN 含量低（CP 為10.07%），少量NH3-N 產生也可造成NH3-N/TN 比例較高。總體來看，3 組青貯劑均可以在一定程度上改善青貯品質，但N2組青貯劑的菌酶組合效果更佳。

3.2 青貯劑對再生稻頭季全株體外瘤胃發酵特性的影響

飼料的體外瘤胃發酵產氣量可以反映飼料在瘤胃中的可發酵程度和瘤胃微生物的動態趨勢，是評定反芻動物瘤胃發酵特性的重要指標。本試驗結果顯示，N2組的24 h 累計產氣量和快速降解部分的產氣量顯著高于N1、N3和CK 組，同時，N1和N2組的潛在產氣量顯著高于CK 組，N2組的潛在產氣量顯著高于N1和N3組，說明再生稻頭季全株青貯在添加了N2組青貯劑后，瘤胃微生物對底物的降解效率得到了提高，有利于瘤胃微生物的生長。

pH 是瘤胃內環境的重要指標，瘤胃微生物生長繁殖適宜的pH 范圍為6.0～7.0［37］。體外發酵試驗結果表明，各組 pH 均略高于 7.0，為 7.03～7.11，與雒瑞瑞等［38］的研究結果（pH 7.02～7.28）相似，對瘤胃纖維素分解菌的活性不會產生不良影響。N1和N2組的pH 顯著低于N3和CK 組，說明添加N1和N2組青貯劑后，發酵液的環境較穩定，適合瘤胃微生物的生長。瘤胃中VFA 是微生物發酵日糧中碳水化合物產生的，其濃度的多少及組成成分不僅反映了碳水化合物在瘤胃中消化率的高低，同時也是衡量瘤胃微生物活力的重要指標，瘤胃發酵產生的VFA 以乙酸、丙酸和丁酸為主，占TVFA 的95%左右。乙酸是乳脂合成的主要前體物質，丙酸則是乳糖合成的主要前體物質。本試驗中，N2組體外發酵產生的乙酸含量顯著增加，N1和N2組的丙酸含量顯著增加，說明添加N1和N2組青貯劑對再生稻頭季全株青貯在瘤胃中的降解和能量轉化有促進作用，且N2組更佳。乙酸/丙酸可以反映結構性碳水化合物和非結構性碳水化合物的供給情況。Lemosquet 等［39］提出，若是將乙酸/丙酸降低至一定范圍內，可以綜合提高動物的生產性能。本試驗結果表明，N2組乙酸/丙酸顯著低于N3和CK 組，原因可能在于N2組青貯劑的菌酶組合改變了瘤胃微生物的數量和區系，有利于瘤胃微生物的能量轉化。瘤胃中NH3-N 既是微生物對底物含氮物質代謝的終產物，也是合成微生物蛋白（microbial protein，MCP）的主要氮源［40］，Owens 等［41］研究指出，瘤胃微生物合成MCP 所需的NH3-N 含量為0.35～29 mg·dL?1。本試驗各組體外瘤胃發酵液NH3-N 含量（2.35～4.10 mg·dL?1）均位于正常范圍，但略低，可能是在體外發酵試驗中，發酵瓶內除了溶解在發酵液中的NH3-N，發酵濾渣中還有NH3-N 殘留。在體外發酵試驗中，N2組的NH3-N 含量與N1、N3和CK 組相比顯著提高，說明添加N2組青貯劑對體外瘤胃發酵氮代謝具有促進作用。孟慶翔等［42］研究表明，體外發酵NH3-N 含量與體外產氣量存在高度正相關，本試驗結果與其相符。總體來看，N2組青貯劑的菌酶組合可以使瘤胃微生物作用增強。

青貯飼料所引起的瘤胃環境改變還表現在對營養物質的降解上。在體外瘤胃發酵試驗中，N2和N3組的DM降解率和CP 降解率顯著提高，同時，N2組的OM 降解率、NDF 降解率和ADF 降解率也顯著提高，與陶蓮等［5］的研究結果類似，說明添加N2組青貯劑后，瘤胃微生物對再生稻頭季全株青貯的發酵利用效果更佳，原因可能是其發酵底物的TDN 含量升高。總體來看，添加N2組青貯劑可以在一定程度上提高再生稻頭季全株青貯的瘤胃微生物利用效率。

4 結論

再生稻頭季全株青貯原料在添加青貯劑比例為70%植物乳桿菌，20%糞腸球菌，5%纖維素酶和5%半纖維素酶發酵后，青貯品質更優，體外發酵后可顯著提高累計產氣量、快速降解部分的產氣量和潛在產氣量，增加乙酸和NH3-N 的含量，降低乙酸/丙酸，提高瘤胃OM 降解率、NDF 降解率和ADF 降解率。因此，在實際生產中，建議青貯劑在以植物乳桿菌為主要添加劑的前提下，輔助添加糞腸球菌、纖維素酶和半纖維素酶，有利于獲得營養價值較佳的再生稻頭季全株青貯。