張娜賢,劉柳,李剛,劉琳瑞,李元穎
(南陽市第二人民醫院乳腺腫瘤科,河南南陽 473000)
乳腺癌是女性惡性腫瘤病死率最高的惡性腫瘤。隨著現代生物分子診斷技術的飛速發展,乳腺癌的早期診斷與分子靶向治療已取得了一定成果,但患者術后復發率及晚期患者預后仍不理想[1]。因此,深入分析乳腺癌的發生發展機制,探索新的分子靶點,對于乳腺癌的臨床診治有重要作用。研究顯示,微小RNA(miRNAs)可結合靶基因3’非翻譯區,調控其表達,參與惡性腫瘤的多種病理生理過程,發揮促癌或抑癌作用[2-3]。目前研究證實,miR-10b與乳腺癌[4]、肝癌[5]、結直腸癌[6]等多種惡性腫瘤的增殖、侵襲、轉移密切相關。miR-10b-3p作為miR-10b 3’端臂加工產生的miRNA,Canu等[7]研究顯示,miR-10b-3p可靶向精子相關抗原5,影響乳腺癌細胞的增殖。抑制素β A(INHBA)是性腺分泌的水溶性蛋白,可形成抑制素和激活素,調控機體生殖和發育,與多種惡性腫瘤的發生發展有關[8]。前期經miRWalk在線軟件預測miR-10b-3p靶基因為INHBA,但miR-10b-3p是否可靶向INHBA在乳腺癌中發揮作用尚不清楚。基于此,本研究將結合GEO、TCGA數據庫,分析miR-10b-3p對乳腺癌增殖、遷移及侵襲的影響及其潛在機制,旨在為乳腺癌的臨床診斷和靶向治療提供新的靶點及依據。
MCF-7和MDA-MB-231細胞株購自上海生命科學院細胞和生物化學研究所。16只雌性Balb/c裸鼠,6周齡,體質量18~22 g,購自南陽建興實驗動物有限公司,生產許可證號SCXK(豫)2018-0005。miR-10b-3p質粒、INHBA質粒來自于優寶公司。
miR-10b-3p mimics及其陰性對照、pcDNA-INHBA(美國Ambion);脂質體2000試劑盒、野生型及突變型INHBA熒光素酶報告基因載體(美國Invitrogen);PrimeScript RT Reagent Kit逆轉錄試劑盒、SYBR Premix Ex TaqqRT-PCR試劑盒(日本TaKaRa);引物序列由北京閱微基因技術有限公司提供;CCK8試劑盒(日本同仁);Transwell小室、基質膠(美國BD);β-actin、INHBA蛋白一抗(美國Cell Signaling Technology);雙熒光素酶活性檢測試劑盒(北京艾然生物科技有限公司);CFX96Touch實時熒光定量PCR儀、iMARK酶標儀(美國Bio-Rad)。
下載GEO數據GSE45666乳腺癌相關數據矩陣,分析miR-10b-3p與乳腺癌發生發展關系;下載TCGA_BRCA乳腺癌數據矩陣和臨床信息,以乳腺癌中INHBAmRNA表達水平的四分位數分組,將乳腺癌患者分為INHBA高(1/4)、低(3/4)表達兩組,進行基因富集分析,觀察INHBAmRNA表達水平與乳腺癌惡性臨床表型的關系,利用R survival包分析INHBAmRNA在乳腺癌預后中的作用。
將MCF-7、MDA-MB-231細胞于37℃水浴中快速解凍,800 r/min離心5 min,懸浮于含有10%(φ)胎牛血清的DMEM高糖培養基中,置于37℃、5%(φ)CO2條件培養,待細胞密度達80%及以上時,按1∶3比例傳代培養。取生長狀態良好的細胞,參照脂質體2000試劑盒說明書操作,轉染miR-10b-3p、質粒,并用G418篩選并構建穩定過表達miR-10b-3p的乳腺癌細胞系。在穩定過表達miR-10b-3p的乳腺癌細胞中轉染INHBA質粒,記作miR-10b-3p+INHBA組。
收集轉染后細胞,添加Trizol試劑提取總RNA,選取A260/A280為1.8~2.0樣本,參照PrimeScript RT Reagent Kit逆轉錄試劑盒說明書操作,合成cDNA模板鏈,再經SYBR Premix Ex TaqqRT-PCR試劑盒,進行實時熒光定量PCR擴增。擴增條件為:95℃預變性2 min,95℃變性5 s,60℃退火30 s,共38個循環。以GAPDH為內參,采用2-△△Ct法計算miR-10b-3p、INHBAmRNA相對水平,引物序列見表1。

表1 基因引物序列Table 1 Primer sequences of genes
將轉染后細胞接種于96孔板,分別培養24、48、72、96、120 h后,向各孔加入10 μL CCK-8溶液,繼續培養2 h,用酶標儀檢測450 nm下各組細胞吸光度(A值),以A值表示細胞增殖能力。
將轉染后細胞接種于6孔板,待細胞貼壁后,用200 μL移液槍頭垂直于細胞孔板劃痕,觀察0 h和24 h時細胞的遷移情況,計算細胞遷移能力[(0 h劃痕寬度?24 h劃痕寬度)/0 h劃痕寬度]。
預先將基質膠包被Transwell小室上室,取轉染后細胞接種于Transwell小室上室,加入無血清培養基,下室添加含有10%(φ)胎牛血清培養基,正常培養24 h后取出Transwell小室,棄去小室內培養液,輕輕拭去上室內細胞,結晶紫染色10 min,顯微鏡下進行細胞計數,實驗孔侵襲細胞數/對照孔侵襲細胞數表示相對侵襲能力。
將過表達miR-10b-3p的MCF-7細胞調整密度為1×107/mL,于裸鼠第二乳墊下注射0.2 mL,若接種部位出現腫瘤結節,即可認為裸鼠荷瘤模型構建成功。肉眼可見瘤體后,每隔2天測量瘤體體積,14 d時處死裸鼠,剝離瘤體稱質量并測量體積,采用實時熒光定量PCR檢測miR-10b-3p水平。
經miRWalk在線軟件預測miR-10b-3p靶基因為INHBA,將野生型及突變型INHBA熒光素酶報告基因載體與miR-10b-3p mimics和陰性對照分別轉染MCF-7、MDA-MB-231細胞,參照雙熒光素酶活性檢測試劑盒說明書操作,檢測各組熒光素酶讀數。
收集轉染后細胞,添加RIPA裂解液提取總蛋白,測定蛋白濃度后,混入上樣緩沖液,沸水浴蛋白變性10 min,取70 μg變性蛋白經SDS-PAGE凝膠電泳分離后,再電轉至PVDF膜,置于5%脫脂奶粉中,室溫搖床封閉2 h,再加入1∶1 000稀釋的蛋白一抗,4℃搖床孵育過夜,接著加入1∶8 000稀釋的蛋白二抗工作液,37℃搖床孵育1 h,最后進行ECL化學發光。
采取統計學軟件SPSS17.0分析處理數據,計量資料以均數±標準差()表示,兩兩均數比較采用t檢驗;計數資料以率(%)表示,采用χ2檢驗;采用受試者工作曲線描述miR-10b-3p、INHBAmRNA對乳腺癌的診斷價值,以曲線下面積(AUC)評價其診斷效能;生存分析采用Kaplan-Meier和Log-rank檢驗法,P<0.05為差異有統計學意義。
如圖1,GEO數據集中,與癌旁對照組織比較,乳腺癌組織中miR-10b-3p水平降低(P<0.05);miR-10b-3p對乳腺癌具有較高的診斷價值,AUC為0.998,95%CI為0.965~1.000;與臨床分期Ⅰ期比較,Ⅱ~Ⅳ期患者miR-10b-3p水平降低(P<0.05);與T1~T3期 比 較,T4期 患 者miR-10b-3p水 平 降 低(P<0.05);與臨床組織病理學分級G1~G2級比較,G3級患者miR-10b-3p水平降低(P<0.05)。

圖1 miR-10b-3p在乳腺癌臨床組織中的表達及其意義Figure 1 Expression and significance of miR-10b-3p in breast cancer tissues
如圖2,TCGA數據集中,與癌旁正常組織比較,乳腺癌組織中INHBAmRNA水平升高(P<0.05);INHBAmRNA水平對乳腺癌具有較高的診斷價 值,AUC為0.935,95%CI為0.920~0.948;不 同TNM分期乳腺癌患者中mRNA水平的比較,差異有統計學意義(P<0.05);與N0期乳腺癌患者比較,N1期患者INHBAmRNA水平升高(P<0.05);與預后良好乳腺癌患者比較,預后不良患者INHBAmRNA水平升高(P<0.05);基因富集分析結果顯示,細胞增殖、細胞遷移、腫瘤浸潤及淋巴結轉移基因集富集在INHBA高表達組;生存期分析顯示,INHBA高表達乳腺癌患者總生存期明顯低于INHBA低表達者(P<0.05)。

圖2 INHBA mRNA在乳腺癌臨床組織中的表達水平及其意義Figure 2 Expression and significance of INHBA mRNA in breast cancer tissues
如圖3,與miR-NC組比較,miR-10b-3p組MCF-7、MDA-MB-231細胞中miR-10b-3p水平上調,細胞增殖能力、遷移率及侵襲能力均降低(P<0.05)。

圖3 過表達miR-10b-3p對乳腺癌細胞增殖、遷移和侵襲的影響Figure 3 Effect of miR-10b-3p overexpression on the proliferation,migration and invasion of breast cancer cells
結果見圖4,與miR-NC組比較,miR-10b-3p組裸鼠瘤體體積、質量均降低,miR-10b-3p水平升高(P<0.05)。

圖4 過表達miR-10b-3p對裸鼠腫瘤生長的影響Figure 4 Effect of miR-10b-3p overexpression on tumor growth in nude mice
結果見圖5,miR-10b-3p與INHBA3’非編翻譯區存在結合位點,與對照組比較,共轉染miR-10b-3p mimics、野生型INHBA熒光素酶報告基因載體組熒光素酶活性明顯降低(P<0.05);與miR-NC組比較,miR-10b-3p組INHBAmRNA及蛋白表達明顯降低(P<0.05)。

圖5 miR-10b-3p與INHBA的靶向關系Figure 5 Targeted relationship between miR-10b-3p and INHBA
如圖6,與miR-10b-3p組比較,miR-10b-3p+INHBA組INHBA蛋白表達上調,細胞增殖能力、遷移率及侵襲能力均增加(P<0.05)

圖6 miR-10b-3p靶向INHBA對乳腺癌細胞增殖、遷移和侵襲的影響Figure 6 Effect of miR-10b-3p on the proliferation,migration and invasion of breast cancer cells by targeting INHBA
近年來,乳腺癌的發病年齡呈年輕化趨勢,嚴重影響患者生命安全,早期篩查乳腺癌對于改善患者預后尤為關鍵[9]。目前,乳腺癌的臨床篩查仍缺乏血清學特異標記物,miRNAs有望成為乳腺癌的早期診斷分子[10]。miR-10b-3p是miRNAs家族成員之一,Guan等[11]研究結果顯示,CMTM5是TCGA數據庫中肝細胞癌的差異表達基因,miR-10b-3p與CMTM5存在靶向關系,miR-10b-3p過表達可靶向CMTM5促進肝細胞癌的增殖、侵襲和遷移能力。張超等[12]研究發現,miR-10b-3p可促進食管鱗癌細胞的增殖、侵襲和遷移,可能作為食管鱗癌基因治療的潛在靶點。上述結果表明,miR-10b-3p在惡性腫瘤的調控中具有雙重作用,可能介導不同靶基因的表達,在惡性腫瘤中發揮促癌或抑癌的作用。本研究通過分析GSE45666乳腺癌數據集,確定乳腺癌患者腫瘤組織中miR-10b-3p水平顯著低于相應癌旁組織,提示miR-10b-3p可能在乳腺癌發揮抑癌作用。同時,miR-10b-3p對乳腺癌具有較高診斷價值,并在不同臨床分級患者中存在差異表達,進一步表明miR-10b-3p是乳腺癌診斷的潛在生物標志物。
INHBA基因可編碼βA亞基,通過形成抑制素和激活素,參與機體生殖、發育過程的調節[13]。越來越多的研究表明,INHBA在結腸癌[14]、胃癌[15]等惡性腫瘤中過表達,與患者臨床預后相關。Liu等[16]對不同乳腺癌細胞系進行基因表達分析,發現INHBA是良性導管原位癌想侵襲型乳腺癌轉變的關鍵調控因子,可能是潛在的預后指標。茅育蕾等[17]檢測85例乳腺浸潤性導管癌及35例癌旁乳腺組織中INHBA表達,結果顯示,INHBA表達與乳腺浸潤性導管癌患者腫瘤分化程度、淋巴結轉移及KI-67增殖指數密切相關,可能參與乳腺癌的發生發展,可用于患者的預后評估。本研究選取TCGA數據集,發現促癌基因INHBA在乳腺癌芯片癌組織中表達上調,可用于乳腺癌的早期診斷、病情及預后的評估。基因富集分析結果顯示,與細胞增殖、細胞遷移、腫瘤浸潤及淋巴結轉移相關的基因集均明顯富集在INHBA高表達組,進一步證實INHBA作為促癌基因,參與乳腺癌的發生發展。
另外,本研究通過miRWalk在線軟件預測miR-10b-3p靶基因為INHBA,且雙熒光素酶報告基因檢測顯示,miR-10b-3p可特異性與INHBA3’非翻譯區結合,靶向抑制INHBA的表達。構建miR-10b-3p過表達MCF-7和MDA-MB-231細胞系后,細胞增殖、遷移與侵襲能力明顯減弱;同時,過表達miR-10b-3p的成瘤陽性裸鼠,瘤體生長也受到明顯抑制。而INHBA過表達可逆轉miR-10b-3p對乳腺癌細胞的抑制作用,提示乳腺癌細胞增殖、遷移及侵襲能力受到抑制的原因可能是miR-10b-3p直接靶向抑制INHBA,進而影響其下游基因的表達,誘導乳腺癌細胞產生上述細胞學行為。但乳腺癌的發生發展涉及多基因、多途徑的共同調控,是否還有其他因素仍需要進一步探索研究。
綜上所述,miR-10b-3p可能靶向調控INHBA,抑制乳腺癌細胞增殖、遷移和侵襲,這為轉移性乳腺癌的靶向治療提供了新思路,后續將深入分析miR-10b-3p在乳腺癌中的調控機制。