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白芷乙素對潰瘍性結腸炎小鼠的影響

2021-10-19 07:57:50宋少華李海艦李莉娟方曉琳
廣東藥科大學學報 2021年5期
關鍵詞:小鼠水平模型

宋少華,李海艦,李莉娟,方曉琳

(廣東省第二人民醫院檢驗醫學部,廣東廣州 510317)

潰瘍性結腸炎(ulcerative colitis,UC)是一種比較常見的炎癥性疾病,臨床上UC患者常表現為腹脹、腹痛、腹瀉、便血以及炎癥等,嚴重影響UC患者的身體健康[1]。目前,對UC病因的探究尚不完全清楚,其與機體生理、遺傳因素、環境和心理變化等均關系密切[2]。目前,臨床上常用于治療UC的藥物主要包括柳氮磺吡啶、氨基水楊酸、糖皮質類激素和免疫抑制劑等,雖然其短期對UC患者的癥狀改善有益,但如長期應用或大劑量應用則可引起多種不良反應的發生[3]。近些年來,越來越多的中藥有效成分對UC的治療展現出良好的效果[4],其對抗UC新藥的挖掘具有較好的啟發作用。針對目前開發抗UC新藥的需要仍迫在眉睫,從中藥尋找抗UC新藥是一種可行的新方法。

白芷是傘形科植物杭白芷或白芷的干燥根,具有祛風止痛、解表散寒、消腫排膿、燥濕止帶以及宣通鼻竅的功效[5]。白芷乙素是白芷植物中一種呋喃香豆素類活性成分,其抗炎、抗氧化、保護心血管和抗凋亡等新的藥理作用已逐漸被發現[6]。已有研究報道白芷可通過降低IL-1β水平,升高IL-10水平,以及下調NF-κB蛋白活性,從而改善UC大鼠的癥狀[7]。此外,臨床研究報道茵陳白芷湯治療慢性結腸炎濕熱內蘊型39例取得較好的效果[8]。但是白芷乙素對UC是否有防治作用目前未見研究報道?;谇捌诒菊n題組預實驗初步篩查發現白芷乙素對UC小鼠具有明顯的癥狀改善作用,本實驗通過構建急性UC小鼠模型,探討白芷乙素對小鼠UC的作用及其機制,以期為日后抗UC新藥開發提供實驗依據。

1 材料與方法

1.1 主要試劑

白芷乙素(質量分數≥98%,上海晨易生物科技有限公司,批號:20190205);TNF-α、IL-1β、IL-6和IL-10 ELISA檢測試劑盒(博士德生物技術有限公司,批號分別為23913119104、42574412547、32565248754、65487547821);SOD和MDA檢測試劑盒(南京建成生物有限公司,批號分別為20210412、20210324);TLR4和NF-κBp65單克隆抗體(abcam公司,批號分別為HM2298、CH4257)。

1.2 動物分組與給藥

2月齡雄性SPF級C57BL/6小鼠60只,體質量18~22 g,湖南斯萊克景達實驗動物有限公司提供,生產許可證號:SCXX(湘)2018-0003。動物適應性喂養7 d后開始本實驗。將小鼠按體質量隨機分為空白對照組、模型組、柳氮磺胺吡啶組(LD組:0.5 g/kg)、白芷乙素低劑量組(BZ-L:6 mg/kg)、白芷乙素中劑量組(BZ-M:12 mg/kg)和白芷乙素高劑量組(BZ-H:24 mg/kg),每組10只。建模當天灌胃給藥,連續7 d,空白對照組和模型組灌胃等量生理鹽水。

1.3 潰瘍性結腸炎模型構建

參照文獻[9]方法構建小鼠UC模型,具體方法如下:小鼠連續自由飲用3%DSS水溶液7 d,其中每隔1天更換新配的DSS溶液??瞻讓φ战M飲用正常水。

1.4 疾病活動指數(DAI)評分

實驗過程中每日觀察各組小鼠的行為學,觀察大便的性狀、便血等,主要參照文獻[10]方法對各組小鼠進行DAI評分,詳見表1。

表1 DAI評分標準Table 1 Scoring criteria of DAI

1.5 結腸組織形態損傷評分

本實驗第7天結束后,采用頸椎脫臼方式處死小鼠,剖開動物腹腔,小心取出小鼠結腸部,并縱向剪開結腸,觀察結腸組織大體的形態學變化,并按表2的評分標準對動物進行評分[11]。

表2 結腸組織形態損傷評分標準Table 2 Scoring criteria of morphological injury of colon tissue

1.6 結腸組織病理學觀察

實驗結束后,小心切取各組小鼠統一部位的結腸組織,10%(φ)中性甲醛浸泡72 h后,按以下步驟進行石蠟包埋切片以及HE染色,石蠟包埋步驟:流水沖洗結腸組織過夜,70%(φ)酒精浸泡24 h,80%酒精浸泡24 h,95%酒精浸泡6 h,100%酒精浸泡3 h,二甲苯浸泡5 min,石蠟浸泡3 h后,進行石蠟包埋及切片(厚度為5 μm)。HE染色步驟:二甲苯浸泡2次,5 min/次,100%酒精浸泡5 min,95%酒精浸泡5 min,70%酒精浸泡5 min,蒸餾水浸泡5 min,蘇木素染液浸泡5 min,伊紅染液浸泡15 s,晾干后,封片,鏡檢。

1.7 結腸組織炎癥因子指標檢測

按質量(結腸組織)∶體積(生理鹽水)比=1∶9制備結腸組織勻漿,準確稱取結腸組織,加入9倍體積生理鹽水,使用玻璃勻漿器于4℃冰上研磨,4℃,4 000 r/min離心15 min,分離上清,置于?80℃冰箱保存備用。采用ELISA試劑盒檢測結腸組織TNF-α、IL-1β、IL-6和IL-10的水平。

1.8 結腸組織氧化應激指標檢測

結腸組織勻漿制備同“1.7”,按檢測試劑盒說明書步驟檢測結腸組織SOD活性以及MDA水平。

1.9 結腸組織TLR4和NF-κB p65蛋白表達水平檢測

結腸組織勻漿制備同“1.7”,隨后100℃水浴加熱變性蛋白,測定蛋白濃度。每孔上樣40 μg蛋白,常規電泳分離和轉PVDF膜,5%BSA封閉液封閉2 h,分別使用的TLR4(1∶2 000)、NF-κB p65(1∶2 000)、β-actin抗體(1∶2 000)4℃孵育過夜和山羊抗兔IgG抗體(1∶3 000)室溫孵育2 h,PBST清洗5次,5 min/次,滴加200 μL顯影劑后,使用凝膠成像系統成像。

1.10 統計學方法

使用SPSS 19.0軟件對數據進行統計學分析。多組間均數比較采用單因素方差分析和LSD檢驗,計量資料用表示,P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 各組小鼠一般情況觀察

實驗前各組小鼠均無異常表現。模型組小鼠造模后第2天糞便開始出現異常,并逐漸變軟和稀,第5天出現肉眼可見的血便現象和肛門出血。經給藥治療后,小鼠以上癥狀有比較明顯的改善,其中BZ-H組和LD組改善作用最優。

2.2 各組小鼠DAI評分

與空白對照組比較,模型組的DAI評分明顯升高(P<0.01)。與模型組比較,各給藥組的DAI評分明顯降低(P<0.05),其中BZ-H組和LD組DAI評分改善效果最優,見表3。

表3 各組小鼠DAI評分結果Table 3 DAI score of mice in each group(xˉ±s,n=10)

2.3 各組小鼠結腸組織形態損傷評分

與空白對照組比較,模型組的結腸組織形態損傷評分明顯升高(P<0.01)。與模型組比較,各給藥組的結腸組織形態損傷評分則明顯降低(P<0.05),其中BZ-H組和LD組結腸組織形態損傷評分改善效果最好,詳見表4。

表4 各組小鼠結腸組織形態損傷評分結果Table 4 Morphological injury score of colon tissue of mice in each group(±s,n=10)

表4 各組小鼠結腸組織形態損傷評分結果Table 4 Morphological injury score of colon tissue of mice in each group(±s,n=10)

與空白對照組比較:**P<0.01;與模型組比較:#P<0.05,##P<0.01。

組別空白對照組模型組LD組BZ-L組BZ-M組BZ-H組分數0.00±0.00 4.36±0.68**2.65±0.57##3.76±0.78#3.23±0.45#2.55±0.76##

2.4 各組小鼠結腸組織病理學觀察

空白對照組小鼠結腸黏膜上皮排列整齊,結腸絨毛完整,結腸腸腺多種細胞排列整齊,未炎癥細胞浸潤。模型組小鼠腸絨毛破損嚴重,有脫落壞死,大部分腸腺出現壞死和溶解,可見大量炎性細胞浸潤。給予藥物后,以上損傷出現不同程度的改善,結腸黏膜結構分層比較清晰,結腸腸腺細胞排列比較整齊,炎性細胞數量明顯減少,其中BZ-H組和LD組結腸組織病理變化改善最優,見圖1。

圖1 各組小鼠結腸組織病理學變化(HE染色,200×)Figure 1 Histopathological changes of colon tissue of mice in each group(HE staining,200×)

2.5 各組小鼠結腸組織炎癥因子水平比較

與空白對照組比較,模型組小鼠結腸組織中促炎因子TNF-α、IL-1β和IL-6水平明顯升高(P<0.01),而抑炎因子IL-10的水平明顯降低(P<0.01)。與模型組比較,各給藥組的促炎因子TNF-α、IL-1β和IL-6水平明顯降低(P<0.05),而抑炎因子IL-10水平則明顯升高(P<0.05),其中BZ-H組和LD組改善效果最優,見圖2。

圖2 各組小鼠結腸組織炎癥因子水平Figure 2 Levels of inflammatory factors in colonic tissue of mice in each group(xˉ±s,n=10)

2.6 各組小鼠結腸組織SOD活性和MDA水平

與空白對照組比較,模型組結腸組織SOD活性明顯降低(P<0.01),而MDA水平明顯升高(P<0.01)。與模型組比較,各給藥組的SOD活性明顯升高(P<0.01),而MDA水平明顯降低(P<0.05),其中BZ-H組和LD組改善效果最好,見圖3。

圖3 各組小鼠結腸組織SOD活性和MDA水平Figure 3 SOD activity and MDA level in colon tissue of mice in each group(xˉ±s,n=10)

2.7 結腸組織TLR4和NF-κBp65蛋白表達水平

與空白對照組比較,模型組結腸組織的TLR4和NF-κB p65的蛋白表達量明顯升高(P<0.01)。與模型組比較,各給藥組結腸組織的TLR4和NF-κB p65的蛋白表達量明顯降低(P<0.05),其中BZ-H組和LD組改善效果最好,見圖4。

圖4 各組結腸組織TLR4和NF-κB p65蛋白表達水平Figure 4 Expression TLR4 and NF-κB p65 in colon tissues of mice in each group(xˉ±s,n=10)

3 討論

UC是一種慢性非特異性炎癥性的腸道疾病,UC患者經常出現腹痛、黏液便和排膿血便等癥狀,目前,其發病機制尚不得知,可能是由于外部環境引起宿主的免疫反應和基因改變等[12]。柳氮磺吡啶在臨床上常用于治療UC的常用藥物,但長期使用多種嚴重副作用,如中性粒細胞缺乏、藥疹和剝脫性皮炎等[13],故抗UC新藥的開發仍是目前極為重要的任務之一。

本實驗通過自由飲用3%DSS溶液構建小鼠UC模型,觀察白芷乙素抗UC的作用效果。本研究發現,白芷乙素各劑量組均能明顯改善UC小鼠癥狀,如降低DAI評分,減輕結腸組織損傷以及減少結腸組織炎癥細胞的浸潤,其中BZ-H組的改善效果最優。在炎癥發展過程中,TNF-α、IL-1β、IL-6和IL-10作為重要的細胞因子參與到多種的炎癥信號通路中。其中TNF-α和IL-1β常用于評價機體炎癥嚴重程度的重要指標[14]。IL-1β參與了UC患者的免疫應答反應,而TNF-α參與了UC患者結腸黏膜損傷[15],兩者與UC的發生發展密切相關。IL-10是一種重要的炎癥抑制因子,其可通過抑制機體多種炎癥因子的合成,如TNF-α、IL-1β、IL-6等[16],調節機體的炎癥反應。此外,IL-10還可調節機體腸道細胞的免疫平衡,維持正常腸道黏膜微生態平衡[17]。SOD活性和MDA水平是反映機體氧化損傷嚴重程度的重要指標[18]。本研究發現白芷乙素能夠顯著降低UC小鼠結腸組織TNF-α、IL-1β、IL-6和MDA水平,升高結腸組織IL-10水平和SOD活性,改善UC小鼠的炎癥和氧化損傷。

NF-κB是UC炎癥過程得以持續發展的重要指標,其通過促進多種致病因子表達和釋放[19],如TNF-α、IL-1β、IL-6引起機體產生級聯效應的炎癥反應,使炎癥過程持續放大,進一步導致腸黏膜損傷,引導UC的發生發展[20]。本研究發現,白芷乙素各劑量組可明顯降低UC小鼠結腸組織中TLR4和NF-κB p65蛋白表達水平,提示白芷乙素可抑制UC小鼠TLR4/NF-κB p65信號通路,這可能是其抗UC的重要作用機制。

綜上所述,白芷乙素對DSS誘導的UC小鼠具有一定的保護作用,其機制可能與抑制炎癥、抗氧化損傷以及調節TLR/NF-κB信號通路有關。本研究為抗UC新藥研發提供了實驗依據。

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