陳白燁 陳敏健 王學明 宋湧 汪怡 袁曉野
福建省婦幼保健院整形外科,福州 350000
細胞焦亡是一種程序性細胞炎性死亡方式,各種刺激因子導致細胞半胱天冬酶-1(caspase-1)激活,一方面引起細胞膜破裂并釋放細胞內容物,進而激活炎性反應;另一方面促進白細胞介素(IL)-1β和IL-18的成熟及分泌,進而介導炎性反應[1]。而大量研究表明,炎癥是影響創面愈合的重要因素[2-3],但細胞焦亡在創面愈合中的作用極少見報道,因此,在本研究中我們將探討皮膚成纖維細胞焦亡在創面愈合中的作用。
我們以往研究證實虎杖苷可以促進大鼠創面愈合[4],但機制不清。有研究證實,虎杖苷可以抑制膿毒癥急性腎損傷中腎小管上皮細胞NLRP3(NACHT,LRR,and PYD domain-containing protein 3)炎性小體激活[5],而NLRP3激活是誘導細胞焦亡的重要因子[6]。本研究推測虎杖苷可能通過抑制皮膚成纖維細胞焦亡促進創面愈合。
1.1 主要材料及試劑 人皮膚成纖維細胞購于上海賽佰慷生物科技有限公司;四甲基偶氮唑藍(MTT)細胞增殖檢測試劑盒購于上海碧云天生物科技有限公司。Ⅲ型膠原蛋白試劑盒購于美國ADL公司;caspase-1活性檢測試劑盒購于英國Abcam公司;IL-1β及IL-18酶聯免疫吸附試驗(ELISA)試劑盒購于Abclonal生物科技有限公司;虎杖苷及Belnacasan(VX-765)購于美國Sigma公司。
1.2 細胞培養及分組 人皮膚成纖維細胞接種于含10%胎牛血清的DMEM培養基中,在37℃及5%CO2下培養,待細胞生長至融合度達80%以上后傳代。參照參考文獻[7],以5μg/ml脂多糖(LPS)刺激人皮膚成纖維細胞建立實驗模型,培養72 h后檢測相關指標。細胞隨機分為4組:對照組細胞接受正常培養處理;實驗組細胞接受5μg/ml LPS處理;治療組細胞接受5μg/ml LPS及50μmol/L虎杖苷處理[8];抑制劑組細胞接受5μg/ml LPS及100 nmol/L VX-765(caspase-1抑制劑)處理[9]。
1.3 caspase-1活性檢測 收集細胞并裂解,離心后取上清,以50μl樣本+50μl反應液+5μl底物建立反應體系,37℃避光孵育120 min后酶標儀檢測(激發波長400 nm,發射波長505 nm)。
1.4 炎癥因子檢測 采用IL-1β、IL-18 ELISA試劑盒檢測,收集細胞培養液,離心后取上清,參照說明書方法步驟進行實驗,用酶標儀檢測讀數,并計算樣本濃度。
1.5 Ⅲ型膠原蛋白檢測 收集細胞并裂解,離心后取上清。根據試劑盒說明書步驟操作,充分顯色后酶標儀檢測490 nm吸光度值,并計算樣品濃度。
1.6 細胞增殖檢測 MTT法檢測細胞增殖,細胞接種于96孔板中,按實驗設計處理細胞后,每孔加入10μl MTT(5 mg/ml),37℃繼續培養4 h,棄液洗3次后,每孔加入100μl二甲基亞砜,10 min后酶標儀檢測490 nm吸光度值。
1.7 統計學處理 應用SPSS20.0軟件進行統計分析,計量資料符合正態分布,以均數±標準差(±s)表示,組間比較使用單因素方差分析(one-way ANOVA)和LSD多重比較法,P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 虎杖苷及VX-765對成纖維細胞焦亡的影響 由表1可見,與對照組比較,實驗組細胞caspase-1活性,培養液IL-1β及IL-18含量顯著增加(均P<0.05),提示細胞焦亡激活;與實驗組比較,治療組及抑制劑組細胞caspase-1活性,培養液IL-1β及IL-18含量顯著下降(均P<0.05),提示虎杖苷及VX-765均可以抑制LPS誘導的成纖維細胞焦亡。
表1 各組成纖維細胞焦亡檢測(±s)

表1 各組成纖維細胞焦亡檢測(±s)
注:對照組細胞不接受任何處理,實驗組細胞接受5μg/ml脂多糖(LPS)處理,治療組細胞接受5μg/ml LPS及50μmol/L虎杖苷處理,抑制劑組細胞接受5μg/ml LPS及100 nmol/L VX-765處理;與對照組比較,a P<0.05,與實驗組比較,b P<0.05
組別對照組實驗組治療組抑制劑組caspase-1活性(%)100.0±6.4 475.4±39.9a 292.1±28.5ab 185.5±16.1ab IL-1β(pg/ml)29.3±2.5 254.9±19.4a 167.5±11.8ab 127.4±16.5ab IL-18(pg/ml)19.3±2.5 212.6±22.4a 165.5±19.9ab 129.5±17.2ab
2.2 虎杖苷及VX-765對成纖維細胞增殖及Ⅲ型膠原蛋白分泌的影響 由表2可見,與對照組比較,實驗組細胞增殖及培養液Ⅲ型膠原蛋白含量顯著下降(均P<0.05);與實驗組比較,治療組及抑制劑組細胞增殖及培養液Ⅲ型膠原蛋白含量顯著增加(均P<0.05),提示虎杖苷通過抑制細胞焦亡,促進成纖維細胞增殖及分泌Ⅲ型膠原蛋白。
表2 各組成纖維細胞增殖及Ⅲ型膠原蛋白檢測(±s)

表2 各組成纖維細胞增殖及Ⅲ型膠原蛋白檢測(±s)
注:對照組細胞不接受任何處理,實驗組細胞接受5μg/ml脂多糖(LPS)處理,治療組細胞接受5μg/ml LPS及50μmol/L虎杖苷處理,抑制劑組細胞接受5μg/ml LPS及100 nmol/L VX-765處理;與對照組比較,a P<0.05,與實驗組比較,b P<0.05
組別對照組實驗組治療組抑制劑組細胞增殖(%)100.0±2.3 72.5±3.4a 86.8±5.5ab 83.1±7.7abⅢ型膠原蛋白(μg/L)0.12±0.02 0.06±0.01a 0.10±0.02ab 0.09±0.01ab
細胞焦亡是一種程序性細胞死亡,也叫細胞炎性壞死,主要依賴于炎性小體的激活,包括NLRP1、NLRP3、AIM2等;活化的炎性小體通過激活caspase家族蛋白,進而切割并活化gasdermin蛋白;活化的gasdermin蛋白在細胞膜形成孔道,導致細胞內外通透性失衡,細胞不斷腫脹并破裂,進而釋放其細胞內容物,介導過度的炎性反應[10-11]。研究表明,細胞焦亡主要分為經典途徑(依賴caspase-1)和非經 典 途 徑(依 賴caspase-4/5/11)[12]。在 經 典 途 徑 中,caspase-1被炎性小體激活后通過切割gasdermin-D(GSDMD)介導細胞焦亡,并促進IL-1β和IL-18的成熟和分泌,擴大炎性反應。在非經典途徑中,caspase-4/5/11直接被細胞損傷相關分子模式(DAMPs)活化,切割并活化GSDMD,進而介導細胞焦亡。
越來越多的研究表明,細胞焦亡通過調節炎性反應參與創傷、感染、退行性病變等多種疾病[10,13-14],但其在創面愈合中的作用尚未見研究報道。鑒于細胞焦亡在炎癥調節中的重要作用,而過度的炎性反應是導致創面延遲愈合及不愈合的重要因素,因此,我們推測細胞焦亡參與了創面愈合的過程。本研究中通過LPS刺激成纖維細胞模擬創面愈合的炎癥過程,這是參照了許多其他的類似研究[15]。我們發現LPS刺激介導成纖維細胞caspase-1激活,IL-1β和IL-18分泌增加,提示在創面愈合中存在細胞焦亡的激活。進一步為了探討細胞焦亡在其中的作用,我們通過caspase-1抑制劑VX-765抑制細胞焦亡,發現抑制細胞焦亡可以促進成纖維細胞的增殖。而研究證實,成纖維細胞在創面愈合中發揮關鍵作用,其細胞死亡或凋亡可以導致創面延遲愈合或不愈合[16],而提高成纖維細胞數量可以促進創面愈合[17]。成纖維細胞通過分泌膠原蛋白促進創面愈合,本研究進一步證實抑制細胞焦亡可以促進成纖維細胞分泌Ⅲ型膠原蛋白。因此,本研究結果提示,抑制成纖維細胞焦亡可能促進創面愈合。
我們既往已證實虎杖苷可以促進大鼠創面愈合[4],但機制不清。研究證實,虎杖苷可以抑制膿毒癥急性腎損傷中NLRP3炎性小體激活,而NLRP3炎性小體激活是介導細胞焦亡的重要途徑[5]。因此,本研究推測虎杖苷可能通過抑制細胞焦亡發揮作用。本研究結果證實虎杖苷可以抑制LPS誘導的成纖維細胞焦亡,并促進其增殖并分泌膠原蛋白,提示虎杖苷可能通過抑制成纖維細胞焦亡促進創面愈合。
綜上,抑制LPS誘導的成纖維細胞焦亡可以促進其增殖并分泌膠原蛋白,虎杖苷可能通過抑制成纖維細胞焦亡促進創面愈合。
利益沖突:作者已申明文章無相關利益沖突。