馬篤軍,華樹良,彭力平,蔣順琬,曹亞飛,高 坤,王立新,莫益斌
(1.廣州中醫藥大學第四臨床醫學院,廣東 深圳 518033;2.百色市人民醫院/右江民族醫學院附屬西南醫院,廣西 百色 533000;3.百色市人民醫院隆林分院,廣西 隆林 533499)
骨關節炎(osteoarthritis,OA)以關節軟骨退行性變為核心病理改變,好發于中老年人[1]。近年來,膝關節OA在年輕人群中發病越來越多。OA致殘率高,對健康危害極大,給患者、家庭和社會帶來了巨大的經濟負擔,目前尚無理想治療藥物[2]。前期研究表明牛膝對實驗兔OA模型關節軟骨損傷具有促進修復作用[3-4],具體信號通路不清楚。信號通路可在分子水平上對疾病的發生、發展及治療機制進行解釋,而OA的發病機制涉及多種信號通路互作,不是局部或者單一發生作用,因此治療也應該從整體出發進行多通路互作研究[5]。故課題組擬深入研究探討牛膝有效成分醇提物對實驗兔膝OA模型腺苷酸活化蛋白激酶(AMP-activated protein kinase,AMPK)/Wnt/絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activatedproteinkinase,MAPK)信號通路的影響,現報告如下。
1.1 實驗動物2~3個月齡普通級健康新西蘭大白兔64只,雌、雄各半,體質量(1.36±0.73)kg,購自廣東省實驗動物中心,動物生產許可證號:SCXK(粵)2019-0035。飼養環境:溫度20℃,濕度40%。于2019年1月至2019年12月在廣州中醫藥大學第四臨床醫學院中心實驗室、深圳市中醫藥研究所完成,獲得實驗動物倫理委員會批準,實驗操作符合2006年中華人民共和國科學技術部頒布的《關于善待實驗動物的指導性意見》。
1.2 藥物與試劑 牛膝醇提物(懷牛膝,廣州中醫藥大學第四臨床醫學院藥劑科制備,院內制劑);10%甲醛標本固定液、環氧合酶-2(cyclooxygenase-2,Cox2)抗體(貨號:4842S)、c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)抗體(貨號:9252S)、細胞外調節蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases,ERK)抗體(貨號:9102S)、P38抗體(貨號:9212s)(CST公司);AMPK抗體(Lifespan公司,貨號:LS-B14414-50);β-連環蛋白(β-catenin)抗體(Merck公司,貨號:MAB2081);Tubulin抗體(Genetex公司,貨號:GTX11214);蘇木素染料抗體(Servicebio公司,貨號:G1004)。
1.3 主要儀器EG11504型包埋機、ASP300S脫水機、EG1150C型冷卻臺、RM2235型切片機(Leica公司);Mshot MF53型顯微鏡(廣州明美光電);EPS-200型電泳儀、VE180C電泳槽、VE-586型轉膜槽(譽維生物)。
1.4 造模與分組 將64只實驗兔按照隨機數字表法分為造模組50只、空白對照組(未造模)14只,將實驗兔右膝關節用棉墊包裹好后于伸直位管型石膏固定制動6周,石膏外層纏繃帶[6]。每天監測生命體征、查看石膏固定松緊情況。造模6周后,從造模組和空白對照組各隨機抽取2只實驗兔進行膝關節比較,空氣栓塞法處死,從兔右膝髕骨內側縱行切開,行膝關節標本大體觀察,取脛骨平臺同一部位3mm×5 mm軟骨組織,留作病理HE染色,觀察組織結構。造模成功標準參照改良Mankin's評分標準[3]:關節表面出現不規則裂隙、軟骨基質染色減退、軟骨潮線結構不完整。造模成功后,將48只實驗兔隨機分為模型對照組、牛膝醇提物低劑量組、牛膝醇提物中劑量組、牛膝醇提物高劑量組,每組12只。
1.5 實驗給藥 懷牛膝在2015年版《中華人民共和國藥典》[7]人體常規最高用量為每日12 g,根據藥物試驗等效劑量換算,實驗兔每日用量約1 g/kg,牛膝醇提物每毫升醇提液相當于含原材料1 g。按照常規用藥量的1、3、6倍,分別予牛膝醇提物低、中、高劑量組實驗兔低、中、高劑量[1、3、6 mg/(kg·d)]牛膝醇提物灌胃,2次/d,每次灌胃時用蒸餾水配成15 mL,連續用藥6周??瞻讓φ战M、模型對照組按照上述灌胃方法,予等量蒸餾水灌胃,15 mL/次,2次/d,連續6周。
1.6 觀察指標
1.6.1 軟骨組織病理學HE染色觀察 實驗兔連續灌胃6周后用過度麻醉處死實驗兔,然后用手鋸小心切取右膝脛骨平臺外側髁負重區同部位3 mm×5 mm軟骨組織,新鮮標本以10%中性甲醛溶液固定48 h,3%硝酸溶液脫鈣24~36 h,然后常規脫水、包埋,連續切片,厚4~5 μm,進行HE染色。
1.6.2 軟骨組織改良Mankin’s評分 軟骨組織HE染色后光鏡下觀察形態變化,采用改良Mankin’s法對關節軟骨結構、細胞、染色及潮線的完整性進行評分。評分標準見表1。

表1 切片關節軟骨組織學改良Mankin’s評分表
1.6.3 免疫組化檢測關節軟骨AMPK、ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin蛋白表達 留取軟骨組織,新鮮標本以10%中性甲醛溶液固定48 h,然后常規脫水,石蠟包埋,連續切片,厚3~4 μm,留做免疫組化染色,測定AMPK、ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin蛋白表達情況。具體操作步驟如下,石蠟切片脫蠟至水:依次將切片放入二甲苯Ⅰ15min-二甲苯Ⅱ15 min-二甲苯Ⅲ15 min-無水乙醇Ⅰ5 min-無水乙醇Ⅱ5 min-85%酒精5 min-75%酒精5 min蒸餾水洗??乖迯停航M織切片置于盛滿EDTA抗原修復緩沖液的修復盒中于微波爐內進行抗原修復,中火8 min至沸,?;? min保溫再轉中低火7 min,此過程中應防止緩沖液過度蒸發,切勿干片。自然冷卻后將玻片置于PBS中在脫色搖床上晃動洗滌3次,5 min/次。阻斷內源性過氧化物酶:切片放入3%雙氧水溶液,室溫避光孵育10 min,將玻片置于PBS中在脫色搖床上晃動洗滌3次,5 min/次。血清封閉:在組化圈內滴加5%山羊血清均勻覆蓋組織,室溫封閉30 min。加一抗:輕輕甩掉封閉液,在切片上滴加按一定比例配好的一抗,切片平放于濕盒內4℃孵育過夜。加二抗:一抗室溫復溫30 min,玻片置于PBS中在脫色搖床上晃動洗滌3次,5 min/次。切片稍甩干后在圈內滴加與一抗相應種屬的二抗(HRP標記)覆蓋組織,室溫孵育50 min。DAB顯色:玻片置于PBS(pH=7.4)中在脫色搖床上晃動洗滌3次,5 min/次。切片稍甩干后在圈內滴加新鮮配制的DAB顯色液,顯微鏡下控制顯色時間,陽性為棕黃色,自來水沖洗切片終止顯色。復染細胞核:蘇木素復染5 min左右,自來水洗,蘇木素分化液分化數秒,自來水沖洗,蘇木素返藍液返藍,流水沖洗。脫水封片:將切片依次放入75%酒精5 min-85%酒精5 min-無水乙醇Ⅰ5 min-無水乙醇Ⅱ5 min-二甲苯Ⅰ5 min-二甲苯Ⅱ5 min中脫水透明,將切片從二甲苯拿出來稍晾干,中性樹膠封片。顯微鏡下采集圖像。藍色的為細胞核,棕色的為陽性點。
1.6.4 Western blotting檢測關節軟骨AMPK、ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin蛋白表達 取軟骨組織剪碎后,加蛋白裂解液,用組織勻漿器研磨(加蛋白酶抑制劑1∶100+PMSF 1∶100+磷酸酶抑制劑1∶100)冰上裂解,4℃12 000 r/min離心15 min,離心半徑60 mm,BCA蛋白濃度測定試劑盒檢測總蛋白量,水浴變性5 min,冷卻后上樣,跑膠,電轉,封閉,加入一抗:按照抗體說明書稀釋抗體,用5%BSA的TBST稀釋,4℃孵育過夜,TBST洗滌5次,加入二抗:按照兔1∶10 000,鼠1∶5 000稀釋抗體,TBST稀釋、洗滌,顯色:按1∶1配制發光液,覆蓋在膜表面,最后圖像采集分析。
1.6.5 AMPK/Wnt/MAPK信號通路關鍵蛋白相互作用網絡機制預測 根據https://string-db.org/網址預測繪制AMPK/Wnt/MAPK信號通路關鍵蛋白AMPK、Wnt、MAPK、ERK2、JNK(SAPK)、p38、COX-2、beta-catenin相互作用網絡機制圖。
1.7 統計學方法 采用SPSS25.0統計軟件分析,計量資料用“均數±標準差”(±s)表示。采用單因素方差分析,不滿足方差分析時用非參數檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 一般情況 造模6周后,未見實驗兔固定肢體出現壞死、褥瘡等表現,空白對照組兔膝關節表面光滑,造模組兔膝關節有骨質增生、不規則裂隙、關節面硬化等表現。(見圖1)造模過程未出現實驗動物死亡,灌胃過程中出現3只實驗兔死亡,其中模型對照組1只、牛膝醇提物中劑量組1只、牛膝醇提物高劑量組1只,造成實驗兔死亡原因主要考慮是灌胃操作不當,導致藥液灌入肺中造成窒息急性死亡。

圖1 兩組兔膝關節表面比較
2.2 各組兔軟骨組織病理學改變情況 空白對照組兔軟骨組織潮線結構、軟骨細胞形態、軟骨細胞排列紋理、基質染色等未見明顯改變。模型對照組兔軟骨組織血管入侵潮線結構,軟骨細胞數量明顯減少,軟骨細胞排列紋理、基質染色變淺。牛膝醇提物低、中、高劑量組兔局部軟骨表面可見不規則裂隙,達鈣化層,軟骨細胞數量增多,基質染色呈淺紅色,潮線結構稍正常,與劑量呈遞增趨勢。(見圖2)

圖2 各組兔軟骨組織病理改變(HE,×100)
2.3 各組兔膝關節病理學改良Mankin’s評分比較 模型對照組兔膝關節病理學改良Mankin’s評分明顯高于空白對照組(P<0.01);牛膝醇提物中、高劑量組兔膝關節病理學改良Mankin’s評分明顯低于模型對照組(P<0.05或P<0.01),牛膝醇提物低劑量組兔膝關節病理學改良Mankin’s評分與模型對照組比較,差異無統計學意義(P>0.05)。(見表2)
表2 各組兔膝關節病理學改良Mankin’s評分比較

表2 各組兔膝關節病理學改良Mankin’s評分比較
注:與空白對照組比較,aP<0.01;與模型對照組比較,bP<0.05,cP<0.01
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2.4 各組兔膝關節軟骨AMPK、ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin蛋白表達比較 免疫組化結果顯示,模型對照組兔膝關節軟骨ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin蛋白表達明顯高于空白對照組(P<0.05),AMPK蛋白表達與空白對照組比較,差異無統計學意義(P>0.05);牛膝醇提物低、中、高劑量組兔膝關節軟骨ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin蛋白表達明顯低于模型對照組(P<0.05);牛膝醇提物高劑量組兔膝關節軟骨AMPK蛋白表達明顯高于模型對照組(P<0.05),牛膝醇提物低、中劑量組兔膝關節軟骨AMPK蛋白表達與模型對照組比較,差異無統計學意義(P>0.05)。(見圖3~4)

圖3 各組兔膝關節軟骨AMPK、ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin表達比較)
Western blotting結果顯示,模型對照組兔膝關節軟骨ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin蛋白表達明顯高于空白對照組(P<0.05),AMPK蛋白表達與空白對照組比較,差異無統計學意義(P>0.05);牛膝醇提物低、中、高劑量組兔膝關節軟骨ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin蛋白表達明顯低于模型對照組(P<0.05);牛膝醇提物高劑量組兔膝關節軟骨AMPK蛋白表達明顯高于模型對照組(P<0.05),牛膝醇提物低、中劑量組兔膝關節軟骨AMPK蛋白表達與模型對照組比較,差異無統計學意義(P>0.05)。(見圖5)

圖5 各組兔膝關節軟骨組織AMPK、ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin蛋白表達Western blotting檢測結果
2.5 AMPK/Wnt/MAPK信號通路關鍵蛋白相互作用網絡機制預測圖 在https://string-db.org/網址輸入AMPK/Wnt/MAPK信號通路AMPK、Wnt、MAPK、ERK2、JNK(SAPK)、p38、COX-2、β-Catenin關鍵蛋白,可以輸出關鍵蛋白之間相互作用網絡機制三級預測圖(來源:https://string-db.org/cgi/network.pl?taskId=qjKGQTZkskFu)。蛋白預測圖結果顯示,Akt家族蛋白節點最多,其次為Mapk家族蛋白節點,因此,Akt家族蛋白、Mapk家族蛋白在牛膝醇提物對AMPK/Wnt/MAPK信號通路網絡互作之間的聯系起了到關鍵橋接蛋白作用。(見圖6)

圖6 牛膝醇提物對AMPK/Wnt/MAPK信號通路關鍵蛋白相互作用網絡機制預測圖

圖4 各組兔膝關節軟骨組織AMPK、ERK、JNK、p38、COX-2、β-Catenin免疫組化圖(×100)
OA是臨床常見病,雖然手術治療OA發展迅速,如自身軟骨或軟骨細胞移植、關節置換等,但只適于極少數患者,藥物治療仍最常用[8]。但目前的藥物仍存在一定的副作用,有些制劑還處于探索研究階段,不能在臨床常規應用。因此如何恢復關節軟骨的完整性和正常功能,是目前OA研究的重點和難點[9]。
中醫藥治療骨關節炎有一定的優勢,中藥含有多種有效成分,可多途徑、多靶點發揮作用而提高療效。牛膝是在此類中藥中較為突出的一味,其主要有效成分包含黃酮類、甾酮類、多糖類、皂苷類等[10-12]?,F代藥理研究表明,黃酮類成分能抑制IL-6等炎癥因子的分泌,通過AMPK通路抑制NF-κB向細胞核轉移,導致細胞核內NF-κB的表達水平降低來抑制炎癥因子;甾酮類成分可借助激活ERK/MAPK信號通路途徑促進細胞增殖和細胞抗氧化作用;多糖類成分可通過上調Wnt-4、Frizzled-2、β-Catenin和cyclin D1的表達,下調GSK-3β的表達,激活Wnt/β-Catenin信號通路,促進Ⅱ型膠原的合成,達到軟骨保護作用;皂苷類成分能通過降低Wnt通路β-Catenin蛋白磷酸化來下調β-CateninmRNA的表達和抑制Wnt信號通路,下調TGF-β1表達發揮抑制系膜細胞增殖的作用。因此,AMPK/Wnt/MAPK信號通路串話可能是牛膝醇提物對OA軟骨修復作用的信號交互通路之一。
軟骨細胞生長、成熟受多因素的影響,多種細胞因子和信號轉導通路參與其中,組成了一個復雜多變的分子生物網絡系統[13]。AMPK、Wnt和MAPK信號傳導通路參與調節正常細胞生長、增殖、遷移、分化,調控正常組織重建,其發生異常改變與人類關節病變密切相關[14-15]。腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)是細胞的能量感受器,在關節軟骨細胞中,AMPK能被異常激活,AMPK磷酸化的激活可促進mTOR、P13K減少細胞凋亡[16]。本研究免疫組化和Western blotting結果顯示牛膝醇提物能有效上調AMPK表達,說明牛膝醇提物具有減少軟骨細胞凋亡的能力。Wnt/β-Catenin通路是一種獨特的信號通路,可影響關節炎的發生、發展,主要是通過調節軟骨細胞的分化、增殖、凋亡,以及調節關節軟骨細胞外基質的合成與分解等而發揮調節作用,還可通過COX-2、IL、BMP2、MMPs、aggrecanases、RANKL/OPG比值變化來影響軟骨代謝[17]。前期實驗證實[4],懷牛膝有效醇提物含藥血清在體外能有效地促進軟骨細胞增殖、Ⅱ型膠原蛋白表達及糖胺聚糖的分泌。陳達等[18]對兔OA模型用牛膝醇提物灌胃后發現,實驗組血液和關節液中IL-1β、TNF-α和MMP-3等炎癥介質的含量明顯低于空白對照組。目前的研究認為Wnt/β-Catenin信號通路是OA軟骨破壞病程中最重要的信號通路之一,與本實驗中軟骨組織免疫組化病理、Western blotting結果提示牛膝醇提物能降低COX-2、β-Catenin蛋白表達相符合,表明Wnt/β-Catenin通路可能是牛膝醇提物促進軟骨細胞增殖和抗凋亡的作用機制之一。MAPK是哺乳動物體內廣泛存在的一類絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,在OA病理過程中MAPK信號通路也參與并調節軟骨細胞的凋亡、肥大化、鈣化及增殖等生物學反應,例如當關節內炎癥因子增多時,可激活細胞內的MAPK信號轉導途徑,引起MMPs表達增加、軟骨細胞凋亡、軟骨破壞等一系列反應,其中MAPK家族參與了OA發病的有JNK、p38和ERK,在MAPK家族中ERK主要受生長因子的激活,而JNK/p38通路則主要受細胞外的應激,以及細胞因子和低氧因素刺激而活化,并且在對軟骨細胞的調節中3種亞型可以獨自或同時被激活。本實驗中ERK、JNK、p38蛋白在模型對照組高表達,在牛膝醇提物低、中、高劑量組表達依次呈降低趨勢,說明牛膝醇提物對MAPK信號通路具有一定抑制作用。String蛋白預測圖結果顯示Akt家族蛋白、Mapk家族蛋白在牛膝醇提物對AMPK/Wnt/MAPK信號通路網絡互作之間橋接蛋白節點最多,說明MAPK/AKT信號通路在牛膝醇提物治療OA中發揮了不可替代的作用,與報道相符[19-20]。
本研究觀察了牛膝醇提物對實驗兔膝關節OA模型AMPK/Wnt/MAPK信號網絡通路的影響,結果顯示牛膝醇提物能改善兔膝關節OA模型病理評分,有效上調AMPK通路AMPK蛋白表達,下調Wnt通路β-Catenin、COX-2蛋白,以及MAPK通路JNK、P38、ERK蛋白表達;蛋白互作網絡預測結果表明Akt家族蛋白、Mapk家族蛋白在牛膝醇提物對AMPK/Wnt/MAPK信號通路網絡互作之間的聯系起到了關鍵橋接蛋白作用,對證實牛膝治療膝骨關節炎具有重要的基礎理論意義,但具體的作用位點還需要深入研究。