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下調環狀RNA circ-BTG2對腎癌細胞增殖和遷移的影響及其機制

2021-11-22 06:00:06趙云飛徐祖偉黃耿桂定文姜衛東付金倫彭偉萬京樺鄂東醫療集團黃石市中心醫院湖北理工學院附屬醫院泌尿外科45000腎臟疾病發生與干預湖北省重點實驗室黃石45000武漢科技大學職業危害識別與控制湖北省重點實驗室40065
國際醫藥衛生導報 2021年22期
關鍵詞:檢測

趙云飛 徐祖偉 黃耿 桂定文 姜衛東 付金倫 彭偉 萬京樺鄂東醫療集團黃石市中心醫院(湖北理工學院附屬醫院)泌尿外科 45000;腎臟疾病發生與干預湖北省重點實驗室,黃石 45000;武漢科技大學職業危害識別與控制湖北省重點實驗室 40065

腎癌是世界范圍內最常見的泌尿系統腫瘤之一,發病率及病死率呈逐年升高[1]?;蛑委熓悄I癌研究的新方向。環狀RNA(circRNA)是一類保守的小分子序列,呈閉環結構,能夠有效調控基因的表達,導致細胞生物學行為發生變化[2]。腎癌與circRNA的異常表達直接相關,circRNA在腎癌的發生和發展中產生重要影響[3]。目前僅有少部分circRNA在腎癌中的作用得到了證實,使得以circRNA為靶點的靶向治療成為了腎癌研究者共同關注的重點[4]。circ-BTG2是一種新發現的circRNA,circ-BTG2在腎癌中的作用及機制并不清楚。本研究通過實驗研究下調circ-BTG2對腎癌細胞生物學性狀的影響及具體機制。

1 材料與方法

1.1 細胞與主要試劑 腎癌786-O細胞株購于上海中科院細胞庫;實時熒光定量聚合酶鏈反應(qRT-PCR)相關試劑盒購于日本TaKaRa公司;circ-BTG2抑制劑(GATAACAGGGTAACGCTGTCT)和無義對照序列由廣州市銳博生物科技有限公司合成;轉染試劑Lipofectamine RNAiMAX購于美國Invitrogen公司;Transwell小室購自美國Corning公司;一抗購于美國BD公司;四甲基偶氮唑藍(MTT)試劑盒和二甲基亞砜購自武漢博士德生物技術有限公司。

1.2 細胞培養和分組 786-O細胞培養在含10%胎牛血清(FBS)的RPMI 1640培養基,培養條件為5%CO2、37℃。將對數生長期786-O細胞接種至24孔板,依據Lipofectamine RNAiMAX的說明將無義對照序列和circ-BTG2抑制劑轉染,命名為對照組和實驗組。

1.3 qRT-PCR檢測circ-BTG2和Grb2協同結合蛋白2(Grb2-associated binding protein-2,GAB2)信 使RNA(mRNA)的表達 選擇Trizol試劑提取786-O細胞總RNA,進一步合成cDNA,依據qRT-PCR相關試劑盒的說明進行擴增。使用2-ΔΔCt方法計算相對表達量,以甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)為內參,引物序列見表1。

表1 qRT-PCR引物序列

1.4 MTT法檢測細胞活性 取對數生長期的轉染后786-O細胞,分別以5×103個/孔接種96孔板,連續5 d MTT檢測。每孔分別加入MTT溶液,培養箱孵育3.5 h。采用移液器吸去溶液,每孔分別加入二甲基亞砜,在振蕩器上快速震蕩30 min。在490 nm波長處,利用酶標儀檢測細胞的吸光度(A)值。

1.5 Transwell遷移實驗檢測786-O細胞遷移能力 取對數生長期的轉染后786-O細胞,采用不含FBS的RPMI 1640培養基重懸786-O細胞,以1×104個/孔接種于Transwell上室,在下室加含血清的RPMI 1640培養基。培養24 h。利用甲醇固定、結晶紫染色,利用棉簽擦去未穿過微孔膜的786-O細胞,在光學顯微鏡(×100)下拍照、計數。

1.6 Western blotting檢測GAB2蛋白和AKT/mTOR信號通路蛋白表達 取對數生長期的轉染后786-O細胞,依據蛋白提取試劑盒說明書分別提取各組786-O細胞總蛋白,設定電泳參數,在十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)膠中電泳以分離蛋白,采用電轉法將分離后的蛋白轉至聚偏二氯乙烯膜。利用10%的脫脂牛奶進行封閉。采用適量封閉液制備一抗,在4℃孵育12 h。洗膜后,加入辣根過氧化物酶(HRP)標記的二抗羊抗兔,室溫下孵育1.5 h,滴加發光液,利用凝膠成像系統曝光、顯影。

1.7 統計學方法 利用SPSS 17.0統計學軟件對所有數據進行統計分析,計量資料符合正態分布,以(±s)表示,兩組間比較均采用獨立樣本t檢驗,P<0.05認為差異有統計學意義。

2 結 果

2.1 qRT-PCR檢測轉染后786-O細胞中circ-BTG2的表達 在786-O細胞株中,對照組與實驗組中circ-BTG2表達 量 分 別 為(1.70±0.20)和(0.44±0.09),實 驗 組circ-BTG2表達被明顯抑制(t=5.69,P<0.01),見圖1。

圖1 轉染陰性對照無義序列(對照組)及circ-BTG2抑制劑(實驗組)后786-O細胞中circ-BTG2的表達

2.2 MTT法檢測轉染后786-O細胞增殖情況 MTT分析結果顯示,與對照組786-O細胞相比,實驗組786-O細胞轉染circ-BTG2后第2天開始,786-O細胞的增殖水平下降(t=3.86,P<0.05),見圖2。

圖2 circ-BTG2對786-O細胞增殖情況的影響

2.3 Transwell遷移實驗檢測轉染后786-O細胞的遷移情況 Transwell遷移實驗分析顯示,對照組和實驗組遷移786-O細胞數分別為(94.91±15.34)個和(25.48±6.60)個,實驗組遷移細胞數明顯減少(t=4.16,P<0.01),這表明circ-BTG2可導致786-O細胞遷移能力明顯降低,見圖3。

圖3 circ-BTG2對786-O細胞遷移情況的影響(×100)

2.4 qRT-PCR檢測轉染后786-O細胞中GAB2 mRNA的表達 在786-O細胞株中,對照組與實驗組中GAB2 mRNA表達量分別為(2.86±0.24)和(1.27±0.18),實驗組GAB2 mRNA表達被明顯抑制(t=5.25,P<0.01)。

2.5 Western blotting檢測GAB2蛋白和AKT/mTOR信號通路蛋白的表達 與對照組786-O細胞相比,實驗組786-O細胞中GAB2蛋白表達明顯降低,AKT/mTOR信號通路蛋白如p-AKT蛋白、p-mTOR蛋白表達明顯降低,見圖4。

圖4 Western blotting檢測GAB2蛋白及AKT/mTOR信號通路蛋白相對表達

3 討 論

circRNA廣泛存在于動植物細胞內,直接影響細胞的分化、增殖、發育等生物學功能[5]。越來越多的circRNA被證實在腎癌中異常表達,在腎癌的發生、發展中起到了非常重要的調控作用[6]。Sun等[7]報道,circ-SCARB1在腎癌組織和細胞系中升高,敲除circ-SCARB1抑制細胞增殖、遷移和侵襲,同時誘導細胞凋亡,miR-510-5p是circ-SCARB1的靶標。Liu等[8]報道,腎癌細胞系和組織中circPTCH1表達上調,其高水平表達的患者生存率降低,circPTCH1可在體外和體內誘導腎癌細胞遷移和侵襲能力增加。circ-BTG2是一種新發現的長鏈非編碼RNA(lncRNA),circ-BTG2在腎癌細胞中作用及機制尚未見報道。

本研究顯示,下調circ-BTG2能夠抑制腎癌細胞的增殖和遷移,表明circ-BTG2高表達可能參與腎癌的發生和發展。GAB2蛋白由1 870個氨基酸構成,其在多種惡性腫瘤如卵巢癌、前列腺癌、乳腺癌中存在過量表達,與腫瘤的分期、分級相關,沉默GAB2蛋白可顯著抑制腫瘤細胞的增殖和轉移[9-10]。Mu等[11]報道,miR-218通過抑制GAB2蛋白表達抑制腎癌細胞的惡性生物學行為,GAB2在腎癌中表現為癌基因作用。本研究結果表明,下調circ-BTG2可明顯抑制GAB2基因的表達。AKT/mTOR信號通路在腎癌細胞的惡性轉化中發揮關鍵作用[12]。GAB2蛋白表達被抑制后,AKT/mTOR信號通路蛋白表達明顯降低,表明AKT/mTOR信號通路被抑制。

綜上所述,本研究證實過表達circ-BTG2有助于抑制腎癌細胞的增殖和侵襲,其具體機制可能與抑制GAB2基因表達相關。circ-BTG2的深入研究可能為腎癌的基因治療提供新的突破口。

利益沖突:作者已申明文章無相關利益沖突。

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