趙云飛 徐祖偉 黃耿 桂定文 姜衛東 付金倫 彭偉 萬京樺鄂東醫療集團黃石市中心醫院(湖北理工學院附屬醫院)泌尿外科 45000;腎臟疾病發生與干預湖北省重點實驗室,黃石 45000;武漢科技大學職業危害識別與控制湖北省重點實驗室 40065
腎癌是世界范圍內最常見的泌尿系統腫瘤之一,發病率及病死率呈逐年升高[1]?;蛑委熓悄I癌研究的新方向。環狀RNA(circRNA)是一類保守的小分子序列,呈閉環結構,能夠有效調控基因的表達,導致細胞生物學行為發生變化[2]。腎癌與circRNA的異常表達直接相關,circRNA在腎癌的發生和發展中產生重要影響[3]。目前僅有少部分circRNA在腎癌中的作用得到了證實,使得以circRNA為靶點的靶向治療成為了腎癌研究者共同關注的重點[4]。circ-BTG2是一種新發現的circRNA,circ-BTG2在腎癌中的作用及機制并不清楚。本研究通過實驗研究下調circ-BTG2對腎癌細胞生物學性狀的影響及具體機制。
1.1 細胞與主要試劑 腎癌786-O細胞株購于上海中科院細胞庫;實時熒光定量聚合酶鏈反應(qRT-PCR)相關試劑盒購于日本TaKaRa公司;circ-BTG2抑制劑(GATAACAGGGTAACGCTGTCT)和無義對照序列由廣州市銳博生物科技有限公司合成;轉染試劑Lipofectamine RNAiMAX購于美國Invitrogen公司;Transwell小室購自美國Corning公司;一抗購于美國BD公司;四甲基偶氮唑藍(MTT)試劑盒和二甲基亞砜購自武漢博士德生物技術有限公司。
1.2 細胞培養和分組 786-O細胞培養在含10%胎牛血清(FBS)的RPMI 1640培養基,培養條件為5%CO2、37℃。將對數生長期786-O細胞接種至24孔板,依據Lipofectamine RNAiMAX的說明將無義對照序列和circ-BTG2抑制劑轉染,命名為對照組和實驗組。
1.3 qRT-PCR檢測circ-BTG2和Grb2協同結合蛋白2(Grb2-associated binding protein-2,GAB2)信 使RNA(mRNA)的表達 選擇Trizol試劑提取786-O細胞總RNA,進一步合成cDNA,依據qRT-PCR相關試劑盒的說明進行擴增。使用2-ΔΔCt方法計算相對表達量,以甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)為內參,引物序列見表1。

表1 qRT-PCR引物序列
1.4 MTT法檢測細胞活性 取對數生長期的轉染后786-O細胞,分別以5×103個/孔接種96孔板,連續5 d MTT檢測。每孔分別加入MTT溶液,培養箱孵育3.5 h。采用移液器吸去溶液,每孔分別加入二甲基亞砜,在振蕩器上快速震蕩30 min。在490 nm波長處,利用酶標儀檢測細胞的吸光度(A)值。
1.5 Transwell遷移實驗檢測786-O細胞遷移能力 取對數生長期的轉染后786-O細胞,采用不含FBS的RPMI 1640培養基重懸786-O細胞,以1×104個/孔接種于Transwell上室,在下室加含血清的RPMI 1640培養基。培養24 h。利用甲醇固定、結晶紫染色,利用棉簽擦去未穿過微孔膜的786-O細胞,在光學顯微鏡(×100)下拍照、計數。
1.6 Western blotting檢測GAB2蛋白和AKT/mTOR信號通路蛋白表達 取對數生長期的轉染后786-O細胞,依據蛋白提取試劑盒說明書分別提取各組786-O細胞總蛋白,設定電泳參數,在十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)膠中電泳以分離蛋白,采用電轉法將分離后的蛋白轉至聚偏二氯乙烯膜。利用10%的脫脂牛奶進行封閉。采用適量封閉液制備一抗,在4℃孵育12 h。洗膜后,加入辣根過氧化物酶(HRP)標記的二抗羊抗兔,室溫下孵育1.5 h,滴加發光液,利用凝膠成像系統曝光、顯影。
1.7 統計學方法 利用SPSS 17.0統計學軟件對所有數據進行統計分析,計量資料符合正態分布,以(±s)表示,兩組間比較均采用獨立樣本t檢驗,P<0.05認為差異有統計學意義。
2.1 qRT-PCR檢測轉染后786-O細胞中circ-BTG2的表達 在786-O細胞株中,對照組與實驗組中circ-BTG2表達 量 分 別 為(1.70±0.20)和(0.44±0.09),實 驗 組circ-BTG2表達被明顯抑制(t=5.69,P<0.01),見圖1。

圖1 轉染陰性對照無義序列(對照組)及circ-BTG2抑制劑(實驗組)后786-O細胞中circ-BTG2的表達
2.2 MTT法檢測轉染后786-O細胞增殖情況 MTT分析結果顯示,與對照組786-O細胞相比,實驗組786-O細胞轉染circ-BTG2后第2天開始,786-O細胞的增殖水平下降(t=3.86,P<0.05),見圖2。

圖2 circ-BTG2對786-O細胞增殖情況的影響
2.3 Transwell遷移實驗檢測轉染后786-O細胞的遷移情況 Transwell遷移實驗分析顯示,對照組和實驗組遷移786-O細胞數分別為(94.91±15.34)個和(25.48±6.60)個,實驗組遷移細胞數明顯減少(t=4.16,P<0.01),這表明circ-BTG2可導致786-O細胞遷移能力明顯降低,見圖3。

圖3 circ-BTG2對786-O細胞遷移情況的影響(×100)
2.4 qRT-PCR檢測轉染后786-O細胞中GAB2 mRNA的表達 在786-O細胞株中,對照組與實驗組中GAB2 mRNA表達量分別為(2.86±0.24)和(1.27±0.18),實驗組GAB2 mRNA表達被明顯抑制(t=5.25,P<0.01)。
2.5 Western blotting檢測GAB2蛋白和AKT/mTOR信號通路蛋白的表達 與對照組786-O細胞相比,實驗組786-O細胞中GAB2蛋白表達明顯降低,AKT/mTOR信號通路蛋白如p-AKT蛋白、p-mTOR蛋白表達明顯降低,見圖4。

圖4 Western blotting檢測GAB2蛋白及AKT/mTOR信號通路蛋白相對表達
circRNA廣泛存在于動植物細胞內,直接影響細胞的分化、增殖、發育等生物學功能[5]。越來越多的circRNA被證實在腎癌中異常表達,在腎癌的發生、發展中起到了非常重要的調控作用[6]。Sun等[7]報道,circ-SCARB1在腎癌組織和細胞系中升高,敲除circ-SCARB1抑制細胞增殖、遷移和侵襲,同時誘導細胞凋亡,miR-510-5p是circ-SCARB1的靶標。Liu等[8]報道,腎癌細胞系和組織中circPTCH1表達上調,其高水平表達的患者生存率降低,circPTCH1可在體外和體內誘導腎癌細胞遷移和侵襲能力增加。circ-BTG2是一種新發現的長鏈非編碼RNA(lncRNA),circ-BTG2在腎癌細胞中作用及機制尚未見報道。
本研究顯示,下調circ-BTG2能夠抑制腎癌細胞的增殖和遷移,表明circ-BTG2高表達可能參與腎癌的發生和發展。GAB2蛋白由1 870個氨基酸構成,其在多種惡性腫瘤如卵巢癌、前列腺癌、乳腺癌中存在過量表達,與腫瘤的分期、分級相關,沉默GAB2蛋白可顯著抑制腫瘤細胞的增殖和轉移[9-10]。Mu等[11]報道,miR-218通過抑制GAB2蛋白表達抑制腎癌細胞的惡性生物學行為,GAB2在腎癌中表現為癌基因作用。本研究結果表明,下調circ-BTG2可明顯抑制GAB2基因的表達。AKT/mTOR信號通路在腎癌細胞的惡性轉化中發揮關鍵作用[12]。GAB2蛋白表達被抑制后,AKT/mTOR信號通路蛋白表達明顯降低,表明AKT/mTOR信號通路被抑制。
綜上所述,本研究證實過表達circ-BTG2有助于抑制腎癌細胞的增殖和侵襲,其具體機制可能與抑制GAB2基因表達相關。circ-BTG2的深入研究可能為腎癌的基因治療提供新的突破口。
利益沖突:作者已申明文章無相關利益沖突。