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三陰性乳腺癌細胞裂解物通過PD1/PDL1相互作用抑制免疫細胞活性①

2022-02-13 10:41:32陳文利黃新亮周小楠潘中武董博翰皖南醫學院生物化學教研室蕪湖241000
中國免疫學雜志 2022年23期
關鍵詞:乳腺癌劑量檢測

陳文利 黃新亮 劉 輝 周小楠 潘中武 董博翰 (皖南醫學院生物化學教研室,蕪湖241000)

乳腺癌是女性最常見的惡性腫瘤之一,我國乳腺癌的發病率居于世界首位[1-2]。在各種病理類型的乳腺癌中,三陰性乳腺癌侵襲性最強,且預后較其他類型較差,目前的治療效果也不甚理想[3]。隨著現代科學的不斷進步,抗腫瘤免疫療法已逐漸應用于各種癌癥的治療,并顯示了較好的治療效果[4]。其中腫瘤細胞裂解物(tumor cell lysate,TCL)是抗腫瘤免疫治療中常用的免疫細胞激活物。TCL含有腫瘤細胞中的各種腫瘤抗原和免疫活化蛋白因子,可誘導抗腫瘤免疫的發生,從而治療腫瘤[5]。但TCL在實際應用過程中也面臨免疫激活能力不夠強,甚至可能誘導免疫細胞凋亡的問題,這可能同TCL 中也存在免疫抑制物質有關[6]。程序性死亡因子1(programmed cell death protein 1,PD1)是公認的免疫檢查點分子,其配體細胞程序性死亡配體1(pro?grammed cell death protein ligand 1,PDL1)在多種癌癥中高度表達,PD1 與PDL1 結合,可引發PIK3CA/AKT 等信號通路的抑制,傳導負性調節信號,向下調節抗腫瘤、抗感染免疫,產生免疫逃逸促進腫瘤發生[7-11]。因此,TCL 對免疫細胞的活性產生的負面影響以及這種影響是否同PD1/PDL1 相互作用啟動免疫檢查機制有關值得探索。本研究將三陰性乳腺癌TCL 作用于T 淋巴細胞系H9,并用不同劑量的PD1/PDL1 抑制劑共同處理H9 細胞,以此探討TCL本身以及抑制劑PDL1 與PD1 結合后對H9 細胞活性的影響。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 儀器 化學發光成像系統(中國Clinx);流式細胞儀(貝克曼CytoFLEX);酶標儀(美國Thermo)。

1.1.2 試劑 DMEM 培養液(美國Gibco);胎牛血清(烏拉圭Lonsera)及雙抗,辣根過氧化物酶偶聯的山羊抗兔IgG 二抗(中國碧云天);PD1/PDL1 抑制劑(美 國Selleck,PD1/PDL1 Inhibitor 3);PD1 抗 體、PDL1 抗體及GAPDH 抗體、TNF-β 細胞因子檢測試劑盒(中國ABClonal);PE 標記的CD69 單克隆抗體(美國Thermo Fisher Scientific);細胞凋亡檢測試劑盒(中國凱基);IL-2、IL-4(中國依科賽)。

1.2 方法

1.2.1 細胞培養 將MDA-MD-231 細胞及MCF-10A 細胞在含有10%胎牛血清、100 U/ml 青霉素和100 U/ml 鏈霉素的DMEM 培養液中培養。H9 細胞于含10%胎牛血清、100 U/ml 青霉素和100 U/ml 鏈霉素的RPMI1640培養基中培養。每1~2 d換液1次,3~5 d 傳代1 次。細胞培養于5%CO2、37 ℃培養箱中,取對數生長期細胞進行實驗。PBMC 取自正常人外周血,采用人淋巴細胞分離液經過簡單分離得到,倫理審批批號為:2020論審國研第(87)號。

1.2.2 231-TCL 的制備 取對數生長期的MDAMD-231 細胞計數并溶于PBS 溶液,每1×107個細胞溶于1 ml PBS,分別于-80 ℃冷凍15 min,于37 ℃融化5 min,振蕩1 min,為1個循環;反復凍融細胞5次。采用臺盼藍染色法檢測細胞凍融破裂情況,細胞全部死亡即為凍融細胞完成,得到231-TCL。

1.2.3 Western blot 檢測 收集各細胞后用適量裂解液裂解細胞,BCA 法測定蛋白濃度后,于10%的SDS-PAGE 分離蛋白,轉至PVDF 膜,5%脫脂奶粉封閉膜,4 ℃濕盒中孵育相應的一抗過夜,TBST 洗膜,辣根過氧化物酶偶聯的山羊抗兔IgG 二抗于室溫下孵育1.5 h,洗膜,避光條件下用適量化學發光液鋪展在膜上,于化學發光儀上顯影。通過Image J 軟件分析目的蛋白相對于GAPDH蛋白的灰度值。

1.2.4 細胞凋亡檢測 以2.5×105個H9 細胞接種于12 孔板,待H9 細胞穩定后加入不同劑量(MDAMD-231細胞數:H9細胞數分別為0.125:1、0.25:1、0.5:1、1:1、2:1、3:1)的231-TCL,分別孵育24 h、48 h、72 h后收集細胞用于檢測231-TCL不同劑量對H9 細胞凋亡的影響;或加入同一劑量(MDA-MD-231 細胞數:H9 細胞數為2:1)的231-TCL 并加入不同劑量的PD1/PDL1 抑制劑,孵育48 h 后收集細胞用于檢測抑制劑作用后的231-TCL 對H9 細胞凋亡的影響。收集細胞后用PBS 洗滌2 次,再將其重新懸浮在500 μl 染色緩沖液中,用碘化丙啶(PI)和膜聯蛋白V(Annexin V)對細胞進行避光染色15 min,在1 h內用流式細胞儀測細胞凋亡。

1.2.5 細胞活化檢測 以2.5×105個H9 細胞接種于12 孔板,待H9 細胞穩定后加入同一劑量的231-TCL 并加入不同劑量的PD1/PDL1抑制劑,孵育48 h后收集細胞,并用PBS 洗滌細胞2 次,再將其重新懸浮在500 μl 染色緩沖液中,用PE 標記的CD69 染料對細胞進行避光染色15 min,在1 h內用流式細胞儀收集細胞檢測CD69。

1.2.6 ELISA 檢測 以2.5×105個H9 細胞接種于12 孔板,待H9 細胞穩定后加入同一劑量的231-TCL,孵育48 h 后收集上清液,按照ELISA 試劑盒說明書進行IL-2、IL-4、TNF-β細胞因子檢測。

1.3 統計學處理 利用SPSS18.0統計學軟件進行數據處理,所有實驗數據使用單因素差異分析法來進行分析。如兩樣本均數方差齊,采用t 檢驗進行比較;如兩樣本均數方差不齊,采用秩和檢驗或方差分析進行比較。對于兩個獨立樣本率,采用卡方檢驗進行比較。P<0.05時認為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 PDL1 在MDA-MD-231、MCF-10A 細胞中及在H9、PBMC 中的表達 Western blot 結果顯示,MDAMD-231 細胞、MCF-10A 細胞中均可見PDL1 蛋白表達(圖1A),其中MDA-MD-231 細胞中PDL1 蛋白含量明顯較高(P<0.01);在H9細胞和PBMC中也檢測到PD1 蛋白存在(圖1B),在GAPDH 含量不變的情況下,H9 細胞中PD1 蛋白表達升高(P<0.01)。其中,陰性對照BSA 中未見條帶,說明該PDL1 抗體和PD1抗體為特異性抗體。

圖1 MDA-MD-231、MCF-10A 細 胞 中PDL1 表 達 及H9細胞、PBMC中PD1表達Fig.1 PDL1 expression in MDA-MD-231 and MCF-10A cells and PD1 expression in H9 cells and PBMC

2.2 231-TCL誘導H9細胞凋亡的劑量-時間摸索通過流式凋亡檢測發現,在24 h、48 h、72 h 3個時間點下,H9 細胞的凋亡大致遵循劑量依賴關系,隨著231-TCL 劑量逐漸增加,細胞凋亡增加(P<0.01)。其中在24 h 作用時間點,231-TCL 在與H9 細胞數量比例為1:1、2:1、3:1 時,凋亡數基本無變化;在48 h作用時間點,231-TCL 在與H9 細胞數量比例為2:1時,凋亡數最多;而在72 h 作用時間點,仍然是細胞數量比例為2:1 時凋亡最高,但231-TCL 誘導H9 的凋亡數整體偏低(圖2)。綜合以上結果,選擇231-TCL 與H9 細胞比例為1:2,作用時間48 h 為最佳劑量-時間進行后續實驗。

圖2 231-TCL誘導H9細胞凋亡Fig.2 231-TCL induces H9 cell apoptosis

2.3 PD1/PDL1 抑制劑與231-TCL 共同作用對H9細胞凋亡的抑制作用 為了驗證231-TCL 中PDL1對H9 細胞凋亡的影響,使用PD1/PDL1 抑制劑與231-TCL 共同作用H9 細胞,檢測H9 細胞的凋亡情況。流式結果表明,231-TCL 使H9 細胞凋亡明顯增加(P<0.01)。然而,PD1/PDL1 抑制劑共同作用后的H9 細胞,在低劑量5.6 nmol/L 時,細胞凋亡略有增加;隨著劑量增加,凋亡逐漸減少;但是當劑量到達112 nmol/L 后,H9 細胞凋亡有明顯增加趨勢(P<0.01),見圖3。

圖3 PD1/PDL1 抑制劑與231-TCL 共同作用抑制H9 細胞凋亡Fig.3 231-TCL with PD1/PDL1 inhibitor inhibit H9 cell apoptosis

2.4 PD1/PDL1 抑制劑與231-TCL 共同作用對H9細胞的活化作用 為了驗證231-TCL 中PDL1 對H9細胞活性的影響,使用PD1/PDL1 抑制劑與231-TCL共同作用H9細胞,檢測H9細胞的活化情況,結果見圖4。流式結果表明,231-TCL 可對H9 細胞具有一定的活化作用(P<0.01)。當231-TCL 與PD1/PDL1抑制劑共同作用后,隨著劑量增加,H9 細胞的活化逐漸增加;但當劑量到達112 nmol/L 后,H9 細胞活化效果有下降趨勢。

圖4 PD1/PDL1 抑制劑與231-TCL 共同作用促進H9 細胞活化Fig.4 231-TCL with PD1/PDL1 inhibitor promote H9 cell activation

2.5 PD1/PDL1 抑制劑與231-TCL 共同作用對H9細胞分泌IL-2、IL-4、TNF-β 細胞因子的影響 收集231-TCL 與PD1/PDL1 抑制劑共同作用H9 細胞的上清液,應用ELISA 實驗檢測上清液中的細胞因子情況,結果如圖5A、B 所示,231-TCL 可促進H9 細胞分泌IL-2、TNF-β,當231-TCL與PD1/PDL1抑制劑共同作用H9細胞后,IL-2和TNF-β的分泌也有一定程度的增高(P<0.05),劑量高于112 nmol/L 時差異均有統計學意義(P<0.05),且IL-2 中效果最佳。作用前后IL-4的分泌并無明顯變化(圖5C)。

圖5 PD1/PDL1 抑制劑與231-TCL 共同作用影響H9 細胞因子分泌Fig.5 231-TCL with PD1/PDL1 inhibitor affect H9 cell cytokine secretion

3 討論

乳腺癌在我國有較高的發病率,并且具有相當高的病死率,但目前的臨床治療效果不佳[12]。研究發現,通過TCL 可以致敏免疫細胞,進而產生抗腫瘤免疫作用[13],因此如何讓TCL 更好的活化免疫細胞,是基于TCL 的抗腫瘤方法有效應用的關鍵。TCL 作為細胞內各種內容物的混合物,其中包含免疫活化物質,同時也勢必含有免疫抑制成分。本研究著眼于免疫檢查點分子PD1及其配體PDL1,探討三陰性乳腺癌TCL 通過PD1/PDL1 的相互作用對T淋巴細胞系H9細胞活性及功能產生的影響。

首先通過Western blot 檢測發現,三陰性乳腺癌細胞MDA-MD-231 中PDL1 表達明顯高于正常乳腺細胞MCF-10A,同時H9 中PD1 蛋白表達也明顯高于正常人PBMC。由于MDA-MD-231 細胞中PDL1蛋白的表達量較高,利用其制備的231-TCL 中也一定含有大量的PDL1 分子。而H9 細胞高表達PD1,則證明H9 細胞中存在PD1 免疫檢查機制啟動的分子基礎。

TCL 是抗腫瘤免疫治療中常用的免疫活化劑,但過去的研究發現肺癌細胞TCL 也能誘導免疫細胞凋亡[14]。本研究也發現了類似的現象,三陰性乳腺癌細胞MDA-MD-231 制備的231-TCL,能在適當的比例和作用時間下誘導T 淋巴細胞系H9 凋亡。凋亡的發生會使體外培養的H9 中的為TCL 激活的“有效細胞”數目大為減少,真正能轉變生成的抗腫瘤免疫細胞,因此也會出現下降,這十分不利于抗腫瘤免疫作用的產生。而且,TCL 如果能誘導T 細胞凋亡,也極有可能同時誘導抗原提呈細胞、NK 等細胞發生凋亡,TCL 抗腫瘤的實用效果會被嚴重削弱。如何消除TCL 的這種凋亡誘導作用,顯得尤為重要。

為改善231-TCL的免疫活性,將PD1/PDL1抑制劑與231-TCL 共同作用于H9細胞,然后應用流式細胞術檢測,結果顯示:抑制劑劑量直至112 nmol/L時,H9 細胞凋亡呈劑量依賴性逐漸減少。這說明當設法阻止231-TCL 中的PDL1同H9細胞上的PD1結合后,免疫細胞的凋亡會出現減少。PDL1應該是TCL誘導H9 凋亡的關鍵物質。此外,當抑制劑劑量高于112 nmol/L后,凋亡有升高趨勢。說明112 nmol/L應該是抑制PD1/PDL1 相互作用的最佳劑量,而高濃度的抑制劑本身對免疫細胞有一定的傷害作用,可能也誘導了部分凋亡[15]。同上述誘導凋亡的結果相類似,PD1/PDL1 抑制劑聯合231-TCL 可以促進H9細胞表面CD69的表達、活化免疫細胞,抑制劑劑量到達112 nmol/L 時活化效果達到頂峰。CD69 是T 淋巴細胞激活后早期表達的表面抗原,當其表達后,可作為共刺激信號促進T 細胞進一步活化和增殖,通過檢測CD69 可以驗證T 淋巴細胞是否被活化[16]。上述結果證明,231-TCL 中的PDL1 可誘導H9細胞凋亡、降低其活化;當抑制了TCL中PDL1和H9 表面PD1 的結合,H9 細胞凋亡減少、活化增加,細胞活力得以顯著改善。

H9 細胞是一種CD4+T 淋巴細胞,其免疫學功能主要通過合成分泌細胞因子體現。因此,應用ELISA 法檢測了H9 細胞因子的分泌量,發現231-TCL 作用H9 細胞后,細胞培養上清液中細胞因子IL-2,TNF-β 分泌增加,說明231-TCL 本身可以活化免疫細胞。當加入PD1/PDL1 抑制劑后,細胞因子IL-2,TNF-β 分泌進一步增加。IL-2 主要由活化T 細胞產生,可刺激T 細胞生長、活化,并誘導CD4+T 細胞分化為Th1 輔助細胞,增強細胞免疫的殺傷作用[17-18];TNF-β 是活化T 細胞和B 細胞產生,參與多種生物調節,包括細胞凋亡、增殖、分化等,可直接殺傷腫瘤細胞等,從而抑制腫瘤的發展,這種細胞因子可以活化DC、巨噬細胞等抗原提呈細胞,促進這些細胞有效參與細胞免疫應答[19]??偟膩碚f,IL-2和TNF-β的分泌有利于細胞免疫的發生。抑制231-TCL 中的PDL1 和H9 細胞PD1 結合后,IL-2、TNF-β分泌量進一步增加的結果說明:231-TCL 中的PDL1對T 淋巴細胞所介導的細胞免疫應答是有抑制作用,抑制PDL1 和PD1 的結合則有助于細胞免疫應答的恢復。考慮到細胞免疫應答是機體抗腫瘤的最主要方式,因此,PD1/PDL1 抑制劑和TCL 的聯合應用或許可以誘導更強的抗腫瘤免疫作用。除了IL-2、TNF-β,還檢測了細胞因子IL-4,但是IL-4分泌量幾乎沒有變化。IL-4 也可由活化T 細胞產生,但其免疫學功能與IL-2 有所不同,主要增強體液免疫途徑[20]。細胞因子IL-4 分泌無明顯變化表明:TCL中的PDL1 與PD1 結合后,主要會影響后續細胞免疫應答的發生,而非體液免疫應答。體液免疫并不是最主要的抗腫瘤免疫作用,因此體液免疫沒有增強,并不會顯著影響PD1/PDL1 抑制劑和TCL 聯用所誘導的抗腫瘤免疫作用。

綜上,研究發現三陰性乳腺癌TCL本身對H9細胞具有活化和促凋亡的雙重作用。TCL 中PDL1 的存在有礙于TCL 發揮免疫活化作用,這同TCL 中的PDL1與H9細胞的PD1結合,并誘導細胞凋亡有關。將PD1/PDL1 抑制劑與TCL 聯用則能顯著提高TCL對H9 細胞的活化作用。這提示在體內外使用TCL活化各種免疫細胞時,均可考慮加入PD1/PDL1 抑制劑,這是一種提高TCL 免疫活性的新穎有效的方式。在此基礎之上,今后還可進一步對TCL 通過PD1/PDL1 抑制免疫細胞功能的下游分子機制進行研究,進而通過靶向PD1/PDL1 免疫檢查點通路優化TCL 對免疫細胞的活化,如將PD1/PDL1 信號通路中的信號分子抑制劑與TCL 聯用,以更好地活化免疫細胞。上述多種方式,均有望提高TCL 的抗腫瘤效果,可為臨床上三陰性乳腺癌治療提供更多的參考和解決方案。

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