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氯霉素在褐籃子魚流通環節中非法使用情況研究

2022-02-17 02:16:00楊海勇丘韶麟鄭澤洋張靜舒梁姍姍
食品安全導刊 2022年30期

楊海勇,廖 瑋,丘韶麟,鄭澤洋,張靜舒,梁姍姍

(1.茂名市茂南區食品醫藥信息技術服務和快篩快檢中心,廣東茂名 525000;2.廣東省食品工業研究所有限公司,廣東廣州 511442;3.廣東省食品質量監督檢驗站,廣東廣州 511442)

褐籃子魚[Siganus fuscessens(Houttuyn)]是籃子魚科,籃子魚屬的一個種[1]。體長一般約15~20 cm。體側上方為褐綠色,下方為銀白色并雜以白色微帶淺藍的圓形斑。這些圓形斑沿體縱軸拓撲結構成行。側線之下,斑點較大,約成6行,側線以上,斑點較小,拓撲結構較不規則約成18~20行。背、腹和臀鰭亦各有13枚、4枚和7枚毒棘,生活水深1~50 m,喜食海藻、海中浮游生物和附著物,故肉質有獨特風味。

氯霉素(Chloramphenicol,CAP)是一種殺菌劑,也是高效廣譜的抗生素,對革蘭氏陽性菌和革蘭氏陰性菌均有較好的抑制作用?!秳游镄允称分蝎F藥最高殘留限量》(原農業部公告第235號)中規定,氯霉素為禁止使用的藥物,在動物性食品中不得檢出[2]。長期食用氯霉素殘留超標的食品可能引起腸道菌群失調,導致消化機能紊亂。人體過量攝入氯霉素可引起人肝臟和骨髓造血機能的損害,導致再生障礙性貧血和血小板減少、肝損傷等健康危害[3]。國家市場監督管理局食品安全抽檢系統公布的結果顯示,不合格褐籃子魚中氯霉素檢出數值范圍從幾微克每千克到幾百微克每千克。

相關論文資料顯示,水產品非法添加氯霉素的原因主要有3個:①養殖環節為防病、增加養殖密度而使用相關藥物;②養殖環節購買使用的飼料中添加了相關藥物;③物流運輸環節和市場終端暫養殖環節為增加存活率而帶入的外源性污染[4]。氯霉素在水產品的檢出率常年居高不下,這是由于在運輸及銷售過程中,儲存密度較大,不易存活,在水體中添加氯霉素可起到抗菌消炎和保鮮的作用。研究表明,水產品菲律賓蛤仔中的氯霉素含量可隨著不同貯藏和前處理方式消退氯霉素殘留含量[5]。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

養殖水鹽(江西鹽通科技有限公司);氯霉素殘留檢測試紙條(檢出限為1.0 μg·kg-1,內含試劑及檢測卡,北京勤邦生物技術有限公司);氯霉素標準品(CAS:56-75-7,純度≥98%,德國Dr. Ehrenstorfer公司)。

1.2 儀器與設備

AB SCIEX 液相色譜-串聯質譜儀;搗樣機(JYL-C020E,九陽);電子天平(AR323CN,奧豪斯儀器有限公司);渦旋混合儀(MS3 basic S025,德國IKA公司);離心機(2-4,上海拖莫斯科學儀器有限公司);樣品濃縮儀(Pro-12 L,南京百思威科技發展有限公司);單道手動可調移液器(20~200 μL、1~5 mL,芬蘭biohit實驗室儀器有限公司);ACO系列電磁式空氣泵(森森集團股份有限公司)。

1.3 實驗設計

1.3.1 空白實驗

選取個體重量為100~150 g的褐籃子魚,需先經過氯霉素殘留膠體金快檢定性初篩實驗,對快速檢測結果顯示為陰性的樣本,根據《動物源性食品中氯霉素藥物殘留量測定》(GB/T 22338—2008)再次進行定量檢測確證,確認同一批的樣本不含有氯霉素殘留。實驗采用4次平行。

1.3.2 暫養處理實驗

準備2個規格容積為60 L的容器用于暫養褐籃子魚,2個容器分別以A容器、B容器代名。在每個容器中鋪平放入12條褐籃子魚后加入40 L養殖水溶液(鹽度為19 ‰),控制水溫在18~23 ℃,室溫20 ℃[6]。在A容器中使用增氧泵來暫養殖,B容器不使用增氧泵。比對A、B容器中褐籃子魚在12 h內的暫養情況,每隔2 h記錄1次存活率。

1.3.3 停藥處理實驗

將不含氯霉素的褐籃子魚分別暫養于5個規格容積為60 L的容器。在每個容器內放置21條不含氯霉素的鮮活褐籃子魚,對應添加氯霉素的給藥濃度 為 0 mg·L-1、5 mg·L-1、10 mg·L-1、15 mg·L-1和20 mg·L-1,并按1.3.2暫養處理實驗中A容器的環節條件進行控制。

在本次實驗的第0 h、2 h、4 h、8 h、12 h、24 h和48 h分別取3條褐籃子魚進行氯霉素殘留量的測定,同時測定對應養殖水中氯霉素殘留量。

1.3.4 換水處理實驗

將21條不含氯霉素的褐籃子魚暫養于1個規格容積為60 L的容器,氯霉素給藥濃度為20 mg·L-1,并按1.3.2暫養處理實驗中A容器的環節條件進行控制。在24 h后,把容器中的魚轉移至另一新的容器中,并在暫養殖的第0 h、2 h、4 h、6 h、8 h、12 h、24 h和48 h分別更換1次純凈水繼續暫養。每次換水后立刻取3條褐籃子魚,對其進行氯霉素殘留含量的測定,同時測定水中氯霉素殘留量。測定結果與1.3.3中相同給藥濃度的樣本結果進行比對。

2 結果與分析

2.1 氯霉素給藥濃度對褐籃子魚中氯霉素含量的影響

本實驗選擇了4個梯度的氯霉素養殖水溶液對褐籃子魚進行養殖,濃度分別為 5 mg·L-1、10 mg·L-1、15 mg·L-1和 20 mg·L-1,養殖后褐籃子魚中氯霉素含量初始濃度分別為 168.27 μg·kg-1、224.70 μg·kg-1、347.37 μg·kg-1和 478.48 μg·kg-1。由圖 1 可知,氯霉素給藥濃度在0~20 mg·L-1,褐籃子魚體內的氯霉素含量為0~478 μg·kg-1,從而可初步推斷出流通環節中褐籃子魚氯霉素的非法添加量。結果表明,當氯霉素給藥濃度在0~20 mg·L-1,氯霉素給藥濃度與褐籃子魚中氯霉素含量呈線性關系,氯霉素給藥濃度越高,褐籃子魚中氯霉素含量越大。

圖1 氯霉素給藥濃度與褐籃子魚中氯霉素含量的關系

2.2 停藥處理對褐籃子魚體內氯霉素含量的影響

4個梯度的氯霉素養殖水溶液中(5 mg·L-1、10 mg·L-1、15 mg·L-1和 20 mg·L-1)養 殖 褐 籃 子 魚24 h,停藥后采用不換水方式持續養殖,觀察氯霉素在褐籃子魚體內的消除情況。

由表1可知,在4個梯度的氯霉素藥濃度下,隨著停藥時間的延長,48 h內褐籃子魚中氯霉素含量逐漸降低。當氯霉素給藥濃度為5 mg·L-1時,褐籃子魚中的氯霉素含量在48 h內從168.27 μg·kg-1降低至4.42 μg·kg-1;當氯霉素給藥濃度為 10 mg·L-1時,褐籃子魚中的氯霉素含量在48 h內從224.70 μg·kg降低至11.78 μg·kg-1;當氯霉素給藥濃度為 15 mg·L-1時,褐籃子魚中的氯霉素含量在 48 h 內從 347.37 μg·kg-1降低至 5.37 μg·kg-1;當氯霉素給藥濃度為 20 mg·L-1時,褐籃子魚中的氯霉素含量在48 h內從478.48 μg·kg-1降低至 8.73 μg·kg-1。

表1 停藥時間對褐籃子魚中氯霉素含量的影響

由表2可知,當氯霉素給藥濃度為20 mg·L-1時,停藥后養殖水養殖2 h氯霉素消除率高達50.74%,而在當給藥濃度為 5 mg·L-1、10 mg·L-1和 15 mg·L-1時,氯霉素消除率分別為34.67%、14.92%和38.02%。在 4 個梯度的給藥濃度(5 mg·L-1、10 mg·L-1、15 mg·L-1和20 mg·L-1)下,停藥后養殖水養殖12 h褐籃子魚中氯霉素消除率均在70%以上,而經過停藥養殖水養殖24 h后消除率均在90%以上。

表2 停藥時間對褐籃子魚中氯霉素消除率的影響

2.3 換水處理對褐籃子魚內氯霉素含量的影響

褐籃子魚養殖于20 mg·L-1氯霉素養殖水溶液24 h,停藥后采用養殖水養殖,每個時間段換水1次,并觀察氯霉素在褐籃子魚體內的消除規律,結果如表3、表4所示。

表3 換水處理對褐籃子魚中氯霉素含量的影響

表4 換水處理對褐籃子魚中氯霉素消除率的影響

經過48 h后,換水處理組的褐籃子魚中氯霉素含量從 479.31 μg·kg-1下降至 2.61 μg·kg-1,氯霉素消除率高達99.46%,而未換水(對照組)的氯霉素消除率為98.18%。褐籃子魚停藥后采用養殖水養殖,每換水1次,在養殖第8 h內,換水前后褐籃子魚中氯霉素含量無明顯變化;在第12~24 h內,換水處理組的褐籃子魚中氯霉素含量明顯低于未換水處理組。在第 12 h 時,換水處理組(78.43 μg·kg-1)的褐籃子魚中氯霉素含量明顯低于未換水處理組(92.94 μg·kg-1);在第 24 h 時,換水處理組(22.78 μg·kg-1)的褐籃子魚中氯霉素含量明顯低于未換水處理組(44.29 μg·kg-1);在第 48 h 時,換水處理組(2.61 μg·kg-1)的褐籃子魚中氯霉素含量明顯低于未換水處理組(8.73 μg·kg-1)。換水與不換水養殖方式對褐籃子魚中氯霉素殘留量變化的影響不會很大,但通過換水養殖還是會令魚體內的氯霉素殘留量有所下降,換水處理有助于褐籃子魚體中氯霉素含量的消除。

2.4 養殖水溶液中氯霉素的變化

2.4.1 氯霉素給藥濃度中褐籃子魚養殖水中氯霉素含量的變化

于4個梯度的氯霉素養殖水溶液中(5 mg·L-1、10 mg·L-1、15 mg·L-1和 20 mg·L-1)養 殖 褐 籃 子 魚24 h,停藥后采用不換水方式持續養殖,觀察褐籃子魚養殖水中氯霉素含量的變化。

由圖2可知,在4種氯霉素給藥濃度下,隨著停藥時間的延長(2~24 h),養殖水中的氯霉素含量變化不明顯。當氯霉素給藥濃度為5 mg·L-1時,養殖水中的氯霉素含量在24 h內從45.59 μg·kg-1降低至42.58 μg·kg-1,氯霉素消除率為6.60%;當氯霉素給藥濃度為10 mg·L-1時,養殖水中的氯霉素含量在 24 h 內 從 164.41 μg·kg-1降低至 148.79 μg·kg-1,氯霉素消除率為9.50%;當氯霉素給藥濃度為15 mg·L-1時,養殖水中的氯霉素含量在24 h內從245.98 μg·kg-1降低至 227.19 μg·kg-1,氯霉素消除率為7.64%;當氯霉素給藥濃度為20 mg·L-1時,養殖水中的氯霉素含量在24 h內從298.41 μg·kg-1降低至283.22 μg·kg-1,氯霉素消除率為5.09%。而在48 h時,氯霉素給藥濃度為 5 mg·L-1、10 mg·L-1、15mg·L-1、20 mg·L-1分別下降到 27.41 μg·kg-1、116.08 μg·kg-1、190.96 μg·kg-1、201.54 μg·kg-1,氯霉素消除率分別為39.88%、29.40%、22.37%和32.46%。由此可見在0~24 h養殖水中的氯霉素含量變化不大,直至48 h之后,其含量才開始有明顯的下降。

圖2 停藥時間對養殖水中氯霉素的影響

2.4.2 換水方式對褐籃子魚養殖水中氯霉素含量的變化

將褐籃子魚養殖于濃度為20 mg·L-1氯霉素養殖水溶液中24 h,停藥后采用不含氯霉素的養殖水養殖,每個時間段換水1次,并觀察氯霉素在養殖水溶液中的消除規律。養殖水經過儀器檢測方法檢測,結果如表5所示。換水比未換水處理組織樣本結果有明顯下降趨勢;由此推斷養殖水養殖溶液中氯霉素含量受換水與不換水方式影響很大,第3次(8 h)換水時,養殖水中氯霉素的含量接近為0 μg·kg-1。

由表5可知,經過48 h后,換水處理組的養殖水中氯霉素含量從 294.48 μg·kg-1下降至 0 μg·kg-1,氯霉素消除率高達100.00%,而對照組的養殖水中氯霉素含量從 298.41 μg·kg-1下降至 201.54 μg·kg-1,消除率為32.46%。褐籃子魚停藥后采用養殖水養殖,每換水1次,換水前后養殖水中氯霉素含量都有明顯變化;在第12~48 h內,換水處理組的養殖水中氯霉素含量已為0 μg·kg-1。在第12 h時,換水處理組(0 μg·kg-1)的養殖水中氯霉素含量明顯低于未換水處理組(289.98 μg·kg-1);在第 24 h 時,換水處理組(0 μg·kg-1)的養殖水中氯霉素含量明顯低于未換水處理組(283.22 μg·kg-1);在第 48 h 時,換水處理組(0 μg·kg-1)的養殖水中氯霉素含量明顯低于未換水處理組(201.54 μg·kg-1)。由此可見,未經換水的養殖水中氯霉素消除速度比較慢,而經過換水的養殖水中的氯霉素在12 h時間點的檢測結果為未檢出,由此可為監管部門在褐籃子魚水產品的監督檢查工作提供執法判斷依據。

表5 換水處理對養殖水中氯霉素含量的影響

3 結論

當氯霉素給藥濃度在0~20 mg·L-1,氯霉素濃度與褐籃子魚中氯霉素含量呈正相關,氯霉素濃度越高,褐籃子魚中氯霉素含量越高。停藥后在不換水狀態下持續養殖的褐籃子魚中氯霉素含量隨時間延長而降低,呈先快速下降后逐漸趨于平衡的變化趨勢,不同給藥濃度的褐籃子魚停藥持續養殖48 h后,消除率均可達90%以上。

對褐籃子魚進行換水處理,換水較不換水養殖更有利于氯霉素消減,換水養殖氯霉素消除率為99.46%,不換水養殖氯霉素消除率98.18%,換水比未換水多消除1.28%氯霉素。停藥后在不換水狀態下養殖水中氯霉素含量隨著時間延長緩慢下降;換水后養殖水中氯霉素含量隨時間延長而呈快速下降后到達零點。根據檢驗標準,氯霉素最高殘留限量為不得檢出。本次實驗中,停藥處理有利于在褐籃子魚體內氯霉素的消除,氯霉素含量能明顯下降;換水處理也有利于褐籃子魚中氯霉素的消除。

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