趙雪卿,王樹照
(呂梁學院 化學化工系,山西 離石 033001)
血清白蛋白(Serum albumin,簡稱SA)是一種球狀蛋白,它在生物體內血漿中占據主導地位,有著非常重要的作用[1].在生物體中,血清白蛋白可以通過運輸膽色素、類固醇、氨基酸等物質達到運輸的作用,也維持著血液正常的滲透壓,在生命過程中有重要的意義[2].BSA具有水溶性,它與人血清白蛋白(HSA)結構同源性和相似的三維結構達到了76%,大多數的有機藥物小分子能夠和牛血清白蛋白結合,從而運輸到靶組織器官中,故被頻繁地選擇為研究藥物與SA相互作用的蛋白質模型[3].甲砜霉素(Thiamphenicol,簡稱Tap),主要用于治療由敏感菌引起的呼吸道、腸道等感染.Tap的毒性比氯霉素小,現已成為氯霉素的替代品,但也逐漸被發現其對人體會產生危害[4].本文通過研究不同溫度下甲砜霉素與牛血清白蛋白的光譜行為,獲得了其相互作用機制、作用力類型以及Tap對BSA構象的影響,這為開發新一代抗菌藥物具有重要意義.
牛血清蛋白(BSA,上海金穗生物科技有限公司)5×10-4mol·L-1,用時稀釋250倍即2×10-6mol·L-1;甲砜霉素(優級純,大連科寶生物科技有限公司)2×10-3mol·L-1,用時稀釋100倍即為2×10-5mol·L-1;pH為7.40的Tris-HCl緩沖溶液,實驗所用水均為二次蒸餾水.
LS-45型熒光分光光度計(美國Perkin Elmer公司),SYC-15B恒溫槽(南京肯凡電子科技有限公司),pHS-3C酸度計(上海儀電科學儀器股份有限公司).
不同溫度下,用移液槍準確吸取1.5 mL 2.0×10-6mol·L-1BSA溶液于比色皿中,固定激發波長為278 nm,依次向比色皿中滴加不同體積濃度為2.0×10-5mol·L-1Tap溶液,記錄300~450 nm發射光譜.當激發波長范圍介于240~320 nm時,分別掃描Δλ=15 nm和Δλ=60 nm的同步熒光光譜.
圖1~3是不同溫度下,隨著甲砜霉素濃度的增加,BSA的熒光光譜.由圖可知牛血清白蛋白的最大發射波長處于344 nm,隨著甲砜霉素的體積逐漸增加,牛血清白蛋白的熒光強度呈現下降趨勢,這說明甲砜霉素與BSA發生了相互作用,導致BSA的熒光猝滅.

圖1 25℃下甲砜霉素對牛血清白蛋白的猝滅光譜圖1.5 mL牛血清白蛋白(2.0×10-6mol·L-1)pH=7.4 Tris-HCl緩沖溶液甲砜霉素(2.0×10-5mol·L-1)的濃度從1到12依次為:(0,0.03,0.98,1.59,2.25,2.56,2.86,3.15,3.43,3.95,4.39,4.94)×10-6mol·L-1

圖2 35 ℃下甲砜霉素對牛血清白蛋白的熒光猝滅圖譜1.5 mL牛血清白蛋白(2.0×10-6mol·L-1)pH=7.4 Tris-HCl緩沖溶液甲砜霉素(2.0×10-5mol·L-1)的濃度從1到12依次為:(0,0.03,1.07,1.76,2.09,2.40,2.71,3.00,3.29,3.83,4.33,5.07)×10-6mol·L-1

圖3 45 ℃下甲砜霉素對牛血清白蛋白的熒光猝滅圖譜1.5 mL牛血清白蛋白(2.0×10-6mol·L-1)pH=7.4 Tris-HCl緩沖溶液甲砜霉素(2.0×10-5mol·L-1)的濃度從1到9依次為:(0,0.03,0.20,1.07,1.71,2.25,2.81,3.43,4.08)×10-6mol·L-1
分子熒光猝滅主要分為動態猝滅和靜態猝滅.其中,動態猝滅主要發生在猝滅劑與發光物質的激發態(Si)分子之間的相互作用,靜態猝滅則主要發生在猝滅劑與發光物質的基態(S0)分子之間的相互作用[5-8].其中動態猝滅涉及到的是能量轉移過程或電子轉移過程,所以不會影響到血清白蛋白的構象.靜態猝滅則會影響到BSA的構象及其生理活性[9].為了確定甲砜霉素Tap與牛血清白蛋白SA相互作用的猝滅類型,假定其為動態猝滅,可利用Stern-Volmer公式(公式1)計算動態猝滅常數.
F0/F=1+Kqτ0[Q]=1+KSV[Q]
(1)
式中Kq:雙分子猝滅過程的速率常數;τ0:沒有加甲砜霉素時測得的牛血清白蛋白的熒光壽命;[Q]為甲砜霉素的平衡濃度;F0為只有BSA溶液時的熒光強度;F為加入Tap溶液時的BSA的熒光強度;KSV叫做S-V猝滅常數.
根據Stern-Volmer方程作圖可得:
由圖4可得出下表:

圖4 不同溫度下甲砜霉素與BSA熒光猝滅的Stern-Volmer圖
從表1中可以得出,25 ℃下Tap與BSA的猝滅常數為1.44×105L·mol-1,熒光分子的平均壽命τ0約等于10-8s,甲砜霉素對牛血清白蛋白的雙分子猝滅常數Kq遠大于2×1010L·mol-1·S-1[10],故可以得出Tap對BSA是靜態猝滅,改變溫度后,Tap對BSA的猝滅方式仍為靜態猝滅.在不同溫度下比較S-V猝滅常數,可以看出隨著溫度的升高,其數值在不斷的降低.出現該現象可能是由于溫度的升高,BSA溶液的黏度降低;另一方面隨著溫度的升高,溶液中分子,熱運動加快,以至于分子的擴散系數增大,從而引起絡合物的穩定性降低,導致靜態猝滅的程度減小.

表1 S-V方程相關系數
通過表1分析可得出結論,無論在哪個溫度下,甲砜霉素與牛血清白蛋白的熒光猝滅類型都是靜態猝滅.故可用L-B方程求得甲砜霉素與牛血清白蛋白的結合位點以及結合常數.
L-B方程:
lg[(F0-F)/F]=lgKA+nlg[Q]
(2)
式中F0:未加甲砜霉素時牛血清白蛋白的熒光強度;F;加入甲砜霉素時的牛血清白蛋白的熒光強度;KA;Tap和BSA的結合常數;n:Tap和BSA的結合位點數.
改變溫度條件,通過計算滴加甲砜霉素的濃度,記錄滴加不同濃度時的熒光強度,即可通過L-B方程,擬合得圖5,求得在25 ℃、35 ℃、45 ℃下的結合位點數n,結合常數KA.方程的斜率為n,截距為lgKA.

圖5 不同溫度下甲砜霉素與牛血清白蛋白的雙對數圖
由圖5可以得到以下參數:
通過表2可以得出25 ℃、35 ℃、45 ℃的結合位點數分別為1.40、1.23、1.02;結合常數分別為1.41×107L·mol-1、2.09×106L·mol-1、1.78×105L·mol-1.二者的結合常數較大,由此可得出甲砜霉素與牛血清白蛋白之間結合作用較強,可以被蛋白質儲存和運輸.當溫度升高時其結合常數降低,可能是由于隨著溫度的升高,甲砜霉素與牛血清白蛋白所形成的復合物穩定性降低,使得猝滅常數減小,這與靜態猝滅的規律符合.結合位點n也隨溫度的升高而降低,說明在結合過程中溫度的影響非常重要[11].因此,在甲砜霉素和牛血清白蛋白結合過程中,溫度是一個很重要的因素.

表2 L-B方程相關參數
有機藥物小分子與蛋白質等大分子之間的作用力主要為范德華力、靜電引力、氫鍵和疏水力等.以上相互作用力也可通過焓變、熵變等的大小和符號來判斷.
其中的的ΔH和ΔS可利用范特霍夫方程求得:
(3)
式中KA為25 ℃、35 ℃、45 ℃下的結合常數;R為摩爾氣體常數,單位為J/(mol·K).根據計算所得出的焓變ΔH和熵變ΔS,利用吉布斯-亥姆霍茲公式,即可求出Tap與BSA反應的ΔG:
ΔG=ΔH-TΔS
(4)
依據圖6中的斜率和截距可求得焓變ΔH和熵變ΔS(焓變和熵變的數值隨溫度的變化不大,因此可看為定值)再根據式(4)計算出不同溫度下的ΔG.具體結果可見表3:

圖6 甲砜霉素與牛血清白蛋白相互作用的范特霍夫方程

表3 不同溫度下甲砜霉素與BSA相互作用的熱力學參數
通過上表,可以發現體系的ΔH<0,ΔS<0,從而判斷牛血清白蛋白與甲砜霉素之間的作用力為氫鍵和范德華力.ΔG<0,說明此反應為自發反應.
同步熒光所測得的Δλ=60 nm與Δλ=15 nm光譜分別表現為Trp和Tyr的特征熒光.其中,在同一濃度下,Trp特征熒光要比Tyr的特征熒光要強.并且它們兩個的最大λem與它們所處環境的極性有關.
Δλ=60 nm時,此時表現出色氨酸的特征熒光,Δλ=15 nm時,此時表現出酪氨酸的特征熒光.圖7到圖12為不同溫度下的同步熒圖,表明在不同溫度下Trp殘基的熒光強度逐漸減弱,且最大λem向長波方向移動,發生了紅移.說明隨著甲砜霉素的不斷滴入使得牛血清白蛋白中Trp殘基微環境的極性增加,疏水性減弱.在不同溫度下Tyr殘基的熒光強度都逐漸減弱,最大激發波長向短波方向移動,發生了藍移.該現象表明隨著甲砜霉素的不斷滴入使得BSA中Tyr殘基微環境的極性減少,疏水性增強.

圖7 25 ℃下Δλ=60 nm時Tap對BSA的同步熒光光譜

圖8 25 ℃下Δλ=15 nm時Tap對BSA的同步熒光光譜

圖9 35 ℃下Δλ=60 nm時Tap對BSA的同步熒光光譜

圖10 35 ℃下Δλ=15 nm時Tap對BSA的同步熒光光譜

圖11 45 ℃下Δλ=60nm時Tap對BSA的同步熒光光譜

圖12 45 ℃下Δλ=15 nm時Tap對BSA的同步熒光光譜
不同溫度下,甲砜霉素與牛血清白蛋白的作用機制均為靜態猝滅,并隨著溫度的升高,甲砜霉素與牛血清白蛋白的相互作用的結合位點數逐漸降低,結合常數降低,二者結合的作用力為氫鍵與范德華力,同步熒光表明甲砜霉素對牛血清白蛋白的構像有影響.