郭 琦, 王向斌, 黃 茜, 梁子怡, 王心雨, 劉慧芬*
(河南師范大學水產學院, 河南新鄉 453007)
抗繆勒氏管激素(Anti-Müllerian hormone,Amh)又稱繆勒氏管抑制物, 是轉化生長因子-β(Transforming growth factor-β,TGF-β) 超家族中的一員[1]。在哺乳動物中,Amh表達于精巢的支持細胞,可引起繆勒氏管的退化,維持雄性特征[2]。 雌性個體中,Amh在原始卵泡的募集以及優勢卵泡選擇中發揮重要作用[3]。 雖然絕大多數魚類沒有繆勒氏管,但是卻保留了Amh基因。 2002年在日本鰻鱺中發現Amh基因,主要在支持細胞中表達,與精子發生有關[4]。 硬骨魚類中,雖然Amh主要在雄性性別分化中發揮關鍵作用,但其在雌性卵巢中也有表達。 在斑馬魚中敲除Amh基因會導致卵巢肥大,初級卵母細胞數量顯著增多,卵母細胞發育進程受阻[5]。 使用花鰭骨AMH重組蛋白對卵母細胞進行體外孵育, 結果發現AMH重組蛋白可以促進花鰭骨卵母細胞成熟[6]。這說明Amh在魚類性腺發育過程中發揮一定作用。
大口黑鱸(Micropterus salmoides),又名加州鱸,隸屬于鱸形目 (Perciformes)、 太陽魚科(Cehtrachidae)、黑鱸屬(Micropterus),具有肉質鮮美、抗病力強、 生長迅速、 適溫范圍較廣等優點。 大口黑鱸自1983年被引入內地以來, 在全國多地區實現了人工養殖[7]。目前關于大口黑鱸品種開發、營養品質、養殖模式分析等方面已有較多研究, 但是有關其性腺發育及相關分子調控機制的研究鮮有報道。
本研究利用已經獲得的大口黑鱸Amh基因cDNA全長序列,構建原核表達載體,制備多克隆抗體,以期為研究Amh基因的功能及其在大口黑鱸性腺發育中的分子機制提供參考。
大口黑鱸購自于新鄉市洪門鎮鱸魚養殖基地,暫養于河南師范大學水產養殖基地。 用于多克隆抗體制備的小鼠購自華蘭生物工程股份有限公司。
感受態細胞、限制性內切酶、pET-32a(+)載體等購自寶日醫生物技術(北京)有限公司。 彩虹180廣譜蛋白Marker、 弗氏佐劑等購自北京索萊寶科技有限公司。His Tag HP鎳柱購自上海生工生物工程股份有限公司。 實驗所用引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
根據Amh基因序列, 選擇合適的區域設計特異性引物, 同時根據原核表達載體pET32a的圖譜選取酶切位點,具體信息見表1:

表1 重組載體引物
以大口黑鱸卵巢cDNA為模板,通過PCR擴增序列、 瓊脂糖凝膠電泳回收PCR產物。 將回收產物和pET-32a質粒用BamH I 和Xho I限制性內切酶雙酶切(37℃,過夜),酶切產物純化后,構建重組表達載體pET32a-AMH。 將重組質粒轉化至BL21感受態細胞中,挑選陽性克隆送至生工生物工程(上海)股份有限公司測序, 采用DNAMAN軟件對測序結果進行比對分析,以判斷目的基因是否正確插入載體。
將陽性表達菌接入LB液體培養基中進行擴大培養(取部分菌液作為對照),37℃震蕩培養至OD6000.5左右, 向其中加入IPTG (Isopropyl β-D- Thiogalactopyranoside,終濃度1 mmol/L)進行誘導表達,37℃震蕩培養,在培養6 h、8 h、10 h及12 h后取材,12000 rpm離心20 min,收集沉淀。菌體沉淀以4×loading buffer重懸裂解,隨后使用SDS-PAGE對總菌體、沉淀和上清進行檢測。
用上述條件大量誘導蛋白, 在室溫下8000 rpm離心5 min收集菌體, 加入適量變性結合緩沖液,超聲波破碎 (破3 s, 停3 s, 功率50%, 破碎總時間30 min),獲得融合蛋白,用His Tag HP柱純化蛋白。蛋白純化所需試劑配制及操作方法參照馮軍廠的方法[8]。 用純化透析后的融合蛋白免疫小鼠,每隔一周加強免疫一次, 首次將融合蛋白與弗氏完全佐劑等比混合后對小鼠進行皮下注射, 之后每次將融合蛋白與弗氏不完全佐劑等比混合后注射,4周后采血獲得抗血清。
利用酶聯免疫 (enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)法檢測制備抗體的效價,測定時以未免疫的小鼠血清作為陰性對照。
采用SPSS 22.0統計分析, 不同組之間的差異顯著性(P<0.05)采用單因素方差分析(ANOVA)進行檢驗,Duncan氏方法多重比較, 實驗數據均使用平均值±標準誤(mean ± SE)表示。
以大口黑鱸卵巢cDNA為模板進行擴增,獲得的目的片段與預期大小一致 (圖1 a)。 重組質粒pET32a-AMH經單雙酶切驗證, 檢測目的片段已成功導入表達載體(圖1 b)。 隨后,將產物進行純化、測序,結果表明構建的pET32a-AMH正確。

圖1 Amh目的片段擴增及驗證
構建好的重組質粒pET32a-AMH轉入大腸桿菌BL21。 隨后采用IPTG在16℃下進行誘導,SDS-PAGE檢測發現,在52.3 kDa左右出現目的條帶,而對照在同一區域未出現特異條帶, 表明重組表達載體pET32a-AMH構建成功。 誘導后菌體經超聲破碎、離心、SDSPAGE電泳分析表明重組蛋白主要存在于沉淀中。
對誘導菌液進行收集、破碎,利用親和純化的方法,對AMH融合蛋白進行純化。使用不同濃度咪唑洗脫液洗脫蛋白,SDS-PAGE 電泳檢測結果顯示,100 mM咪唑洗脫時開始檢測到目的蛋白;150 mM和200 mM咪唑洗脫時,檢測到大量的目的蛋白,但是200 mM 咪唑濃度洗脫時,獲得的目的蛋白純度更高(圖2)。經透析去除雜質,SDS-PAGE電泳檢測結果顯示,純化后的雜蛋白明顯減少,條帶較為單一,可用于后續實驗(圖3)。

圖3 AMH重組蛋白不同濃度咪唑洗脫結果

圖4 AMH重組蛋白純化
經過4次免疫,獲得鼠源AMH抗血清。 使用酶聯免疫吸附方法對獲得的多克隆抗體血清進行效價測定,結果顯示多克隆抗體的效價為2.7×105,可為后續實驗提供原材料。
抗繆勒氏管激素是轉化生長因子家族成員之一,在哺乳動物中具有調節細胞發育及分化,誘導繆勒氏管退化,維持雄性特征的作用。當前已有較多研究表明,Amh在哺乳動物卵巢發育過程中發揮一定作用。 在硬骨魚類中,Amh多被當作雄性性別分化關鍵基因。 尼羅羅非魚XX個體中,amhy的過表達導致了雌性到雄性的性逆轉[9]。 也有研究表明,Amh在雌性個體卵巢發育過程中發揮一定作用。 在黑鯛研究中發現,Amh在卵巢發育早期不表達,在卵黃蛋白原合成期表達量升高[10]。 斑馬魚中的研究發現,Amh缺失會導致雌魚性腺發育不良,卵泡發生受阻[11]。 這說明,Amh基因在魚類性腺發育過程中發揮重要作用。
原核表達是外源基因融合表達的方式之一, 具有易培養、生長快、操作簡單等優點[12]。 多克隆抗體具有穩定性較好、制備技術要求不高、周期短、成本低等優點,廣泛用于蛋白亞細胞定位、蛋白互作、細胞信號通路等研究領域[13]。 本研究利用獲得的大口黑鱸Amh基因序列,成功構建pET32a-AMH原核表達載體,誘導出大小為52.3kDa的AMH重組蛋白, 與奧利亞羅非魚49kDa的AMH重組蛋白[14]及雙須骨舌魚48kDa的AMH重組蛋白[15]大小相近。隨后通過免疫小鼠,獲得AMH多克隆抗體,利用ELISA對抗體血清進行效價檢測,結果顯示多克隆抗體的效價為2.7×105,可用于后續研究。
本研究通過構建大口黑鱸AMH原核表達載體,獲得AMH重組蛋白,利用重組蛋白對小鼠進行免疫,獲得AMH多克隆抗體。 獲得的大口黑鱸AMH重組蛋白和多克隆抗體可為后續研究Amh在大口黑鱸中的功能和作用機制提供基礎。