山桃生根成苗關鍵技術研究

張雪冰　王鴻　張帆　陳建軍　李寬瑩

摘要：山桃是甘肅地區普遍應用的桃樹優良砧木，具有抗寒、抗旱的特性。然而山桃通過種子繁殖的方式存在一定比例上的抗性分離現象，而且繁殖周期較長。為探索山桃組培快繁技術。對山桃組培苗的生根培養和煉苗移栽進行了試驗。結果表明，以改良QL培養基為基本培養基，當IBA濃度為1.0 mg/L時，試管苗生根效果最好，根系粗壯，側根較多，生根率達94%以上，平均根數6根以上，平均根長6.8 cm以上；添加80 mg/L PG的處理，無論是生根率、平均根數還是平均根長，較不添加80 mg/L PG的處理相比均表現不理想。將根長超過3 cm的山桃組培苗置于溫室中，先遮光煉苗5～7 d，后將瓶蓋打開1/2，并配制800倍多菌靈溶液少量倒入組培瓶中，4 d后可將瓶蓋全部打開繼續煉苗5～7 d，組培苗根系生長基本正常，煉苗成活率可達88%。

關鍵詞：山桃；組織培養；生根；激素

中圖分類號：S662.1? ? ? ? ? ? ? 文獻標志碼：A? ? ? ? ? ? ? 文章編號：2097-2172（2023）03-0270-05

doi：10.3969/j.issn.2097-2172.2023.03.014

Abstract： Mountain peach， i.e. Prunus davidiana（Carr.） Franch， is a high-quality rootstock which is widely used in Gansu Province， it possesses both cold and drought resistance. However， mountain peach has a percentage of resistance separation in the way of seed propagation， and its propagation cycle is long. To explore the technology of tissue culture and rapid propagation of mountain peach. Rooting culture of the test-tube seedling and the transplanting of the tissue culture seedling of mountain peach were conducted to study the tissue culture and rapid propagation system of mountain peach. The results were as followed. When improved QL culture medium was used， best tube seedlings rooting effect was detected under the concentration of IBA at 1.0 mg/L， which delivered stronger root systemand more capillary roots， the rooting rate was above 94%， the average root number was over 6 and average root length was more than 6.8 cm under this concentration， whereas in the treatment of adding 80 mg/L PG， the average rooting rate， root number and root length showed less ideal performance compared with those in treatment with no 80 mg/L PG added. Tissue culture seedlings with root length over 3 cm were placed in the greenhouse environment， dark cultured for 5 to 7 days first， then small amount of 800 times Carbendazim solution were poured into the tissue culture bottle with lid half open， after 4 days， culture seedling root were refined for 5 to 7 days with cap fully open， in this way， the root system growth of tissue cultured seedlings was basically normal and the survival rate of refined seedlings could reach 88%.

Key words：? Prunus davidiana （Carr.） Franch; Tissue culture; Rooting; Plant growth regulator

桃是我國主要栽培的果樹之一，目前桃生產上所用的品種80%以上為我國自主選育的。我國的桃產業分布比較廣泛，而不同生態區域的立地和自然條件有很大差異，因此對桃品種的需求也呈現多樣化。與其他果樹相比，桃的經濟壽命相對比較短，一般只有15～20 a，生產上存在的再植障礙等問題也比較突出。山桃作為落葉小喬木，主產我國黃河流域，喜光，耐寒，耐旱，耐鹽堿，對土壤要求不嚴，貧瘠、荒山均可生長。山桃早春開花，色彩艷麗，樹形優雅，是北方園林中早春重要的觀花樹種，也是西北地區普遍應用的優良砧木，適于做桃、李、榆葉梅等嫁接砧木。然而山桃通過種子繁殖的方式存在一定比例上的抗性分離現象，且繁殖周期較長。通過組培快繁技術不但可以保留其抗性，還能夠提供大量整齊一致的優良苗木。在國外，組培快繁技術已經在工廠化生產中得到廣泛應用，但目前在國內組培快繁技術還不夠成熟完善。我們以山桃作為試驗材料，探討其組培快繁技術，以期獲得更加成熟的無性繁殖技術，為桃樹的無性繁殖提供技術支持。

1? ?材料與方法

1.1? ?材料

2020年10月，以高于2 cm 山桃試管苗作為生根培養試驗材料。2021年1月，以組培室成功生根的山桃組培苗作為煉苗移栽試驗材料。

1.2? ?方法

1.2.1? ? IBA對山桃試管苗生根的影響? ? 將高于2 cm 組培試管苗轉接到以改良QL為基本培養基、添加不同濃度IBA（0.50、0.75、1.00、1.25、1.50 mg/L）的生根培養基中進行生根培養，處理編號分別為處理1、2、3、4、5。首先需暗培養7 d，然后再轉光照培養，21 d后觀察試管苗生根情況并調查統計其生根率、平均根數、平均根長。

1.2.2? ? PG對山桃試管苗生根的影響? ? 將高于2 cm 組培試管苗轉接到以改良QL為基本培養基、添加不同濃度PG和不同濃度IBA組合的生根培養基中進行生根培養（表1），先暗培養7 d，然后再轉光照培養，21 d后觀察試管苗生根情況并調查統計其生根率、平均根數、平均根長。

1.2.3? ? 山桃試管苗的煉苗移栽試驗? ? 試驗設3個處理，處理1，將根長超過3 cm的山桃組培苗置于溫室環境中，不需遮光培養5～7 d，查看組培苗的適應情況，然后將瓶蓋打開1/2，并配制800倍的多菌靈（80%可濕性粉劑）溶液少量倒入組培瓶中，4 d后將瓶蓋全部打開繼續煉苗5～7 d，觀察組培苗根系生長是否良好，枝條生長是否正常，并統計煉苗成活率。將其從組培瓶中取出，根部清洗干凈后移栽到配制好的基質中。處理2，將根長超過3 cm的山桃組培苗置于溫室環境中，遮光培養5～7 d，查看組培苗的適應情況。然后將瓶蓋打開1/2，配800倍的多菌靈溶液少量倒入組培瓶中，4 d后將其瓶蓋全部打開繼續煉苗5～7 d，觀察組培苗根系生長是否良好，枝條生長是否正常，并統計煉苗成活率。將其從組培瓶中取出，根部清洗干凈后移栽配制好的基質中。處理3，將根長超過3 cm的山桃組培苗置于溫室環境中，遮光培養5～7 d，查看組培苗的適應情況。然后將瓶蓋全部打開，并配制800倍的多菌靈溶液少量倒入組培瓶中5～7 d后觀察組培苗根系生長是否良好，枝條生長是否正常，并統計煉苗成活率。將其從組培瓶中取出，根部清洗干凈后移栽到配制好的基質中。

2? ?結果與分析

2.1? ?IBA對山桃試管苗生根的影響

從表2可知，IBA濃度為1.0 mg/L時，山桃試管苗的生根效果最顯著，主根根系粗壯，側根較多，生根率達94.72%，平均根數5.63根，平均根長6.83 cm；IBA濃度為0.75、1.25 mg/L時，生根效果較好，生根率分別為79.17%、73.33%；IBA濃度為0.50 mg/L時，生根率較低，平均根長短，只有主根，沒有側根；IBA濃度為1.50 mg/L時，生根效果最差，平均根數小于3根，無側根，主根細，生根率僅50.83%。

2.2? ?PG對山桃試管苗生根的影響

從表3可知，IBA濃度為1.00 mg/L時，不添加PG的處理生根率最高，為94.72%，且平均根數較多，為5.63根；平均根長較長，為6.83 cm。IBA濃度為0.75 mg/L時生根率較高，不添加PG和添加80 mg/L PG處理分別為79.17%、78.61%，不添加PG的處理平均根數較多、平均根長較長。IBA濃度為1.25 mg/L時，不添加PG處理的生根率高于添加80 mg/L PG處理，為73.33%，平均根數相對較多，平均根長相對較長。IBA濃度為1.50 mg/L時生根率較低，不添加PG處理生根率相對高于添加80 mg/L PG處理，平均根數相對較多，平均根長相對較長。

2.3? ?煉苗移栽的成活率

從表4可知，在煉苗移栽過程中，煉苗前期經過遮光處理、中間又有半開蓋煉苗過程的組培苗根系生長基本正常，僅個別葉片枯黃，零落，煉苗成活率達88.00%。沒有經過遮光處理的組培苗，更早的出現葉片干枯的現象，后期還發現其個別根系發褐、發黑，煉苗成活率達80.33%。沒有經過半開蓋煉苗過程的組培苗，葉片零落嚴重，且有些生根苗頂尖停長，煉苗成活率僅77.33%。

3? ?討論與結論

誘導植物組培苗生根常用的外源激素有IAA、IBA、NAA等，其中IBA可以誘導桃組培試管苗的生根，但會影響根的生長、延長［1 ］。Hammerschlag等認為，NAA的生根效果要優于IAA和IBA，當生根培養基中的NAA的濃度為5.8 μmol/L時，生根效果最顯著［2 ］，這一結論與本研究發現IBA濃度為1.0 mg/L時生根效果最理想的結果并不相同。也有研究發現，IBA的生根效果比NAA和IAA更為理想［3 - 4 ］，在組培快繁生根過程中，生根培養基內所添加的IBA濃度一般為0.5～1.5 mg/L［5 - 6 ］，添加濃度太高反而會使生根率降低［7 ］，因為適宜的IBA濃度能夠抑制根的伸長生長，可見，高濃度IBA會使生根數量增多，而較低濃度的IBA會使平均根長增長［8 ］，這與本試驗的結果基本一致。本試驗發現，IBA濃度高于1.0 mg/L時生根率降低，平均根長減少，而低濃度的IBA生根效果也不理想。也有許多研究將IAA、IBA、NAA 3種激素搭配使用來促進生根。例如，有研究發現，在桃生根培養基中添加IAA 1.0 mg/L+IBA 1.0 mg/L時生根效果最為理想［9 ］，然而也有研究表明在生根培養基中只添加IBA 2.0 mg/L時生根率最高［10 ］。除了這3種常用的激素以外，有其他添加激素也可促進桃組培試管苗的生根。郭偉偉等［11 ］在‘黃金冠’桃的組培研究中發現，NAA+IBA組合使用時生根效果最顯著；潘瞳等［12 ］在對紫葉桃的組培研究中發現，IBA+2，4-D組合使用時生根效果最理想，而本試驗中，IBA濃度為1.0 mg/L時，生根效果很理想，說明不同桃品種適宜生根的激素也存在差異。在生根培養基中添加適量的80 mg/L間苯三酚（PG）可以提高桃組培試管苗的生根率，當添加濃度低于15 mg/L時生根效果并不明顯［7 ］，這一結論與本研究結果并不一致。本試驗發現生根培養基中添加間苯三酚（PG）對山桃的生根培養并沒有促進作用，其原因有待進一步研究。

組織培養的最后一步就是組培試管苗的煉苗移栽，是組培試管苗移栽于大田能否成功的最后一道關卡，也是組培這一技術能否生產化的關鍵［13 ］。當組培試管苗經過生根培養后，移栽時根的長度一般要求不小于3 cm，否則由于根過短移栽不易成活；另外移栽時根的長度也不宜過長，以防在移栽的過程中將根折斷而導致降低成活率［14 ］。若直接將組培生根苗移栽于大田，由于生長環境差別太大會導致成活率降低。因此，組培生根苗必須在溫室條件下進行煉苗，煉苗成功后方可移栽定植大田。組培生根苗需要在溫室環境下閉瓶煉苗 3 d左右，然后再打開瓶塞煉苗4 d左右［15 ］。移栽前必須清洗干凈組培生根苗根部的瓊脂，然后栽入含有少量營養成分的基質中。有研究發現，組培試管苗移栽到養分很低的蛭石中成活率高，不能直接移栽到養分充足的有機土壤里［7 ］，移栽的基質應偏酸性。這與本試驗研究結果基本一致。本試驗也是選擇現在溫室煉苗數天后再移栽，同樣選擇養分較低的基質為移栽所用。有研究發現，組培試管苗在移栽時應緩慢降低環境濕度，盡量保持高濕的環境才能提高成活率［15 ］，因此保證高濕的密閉環境是煉苗前期的關鍵。桃快繁生根煉苗的環境溫度應保持在20 ℃左右為宜。移栽后為防止組培苗污染，應噴灑 800 倍的多菌靈或代森錳鋅控制病害的發生。煉苗過程中前期需適當遮陰，后期逐漸增加光照強度，從而促進組培苗逐漸木質化［16 - 17 ］。低溫處理不同天數對打破種子休眠有一定的作用，可以提高萌芽率［18 ］。總之，在本試驗煉苗移栽的過程中發現，溫度、光照等因素十分重要，這與大多數研究結果一致。本試驗表明，將根長超過3 cm的山桃組培苗置于溫室環境中，需要遮光培養5～7 d，觀察組培苗的適應情況，之后將瓶蓋打開一半，并配置800倍的多菌靈少量倒入組培瓶中，既可以預防組培苗污染，也可以保持培養基不被晾干，4 d后可將其瓶蓋全部打開繼續煉苗5～7 d，觀察組培苗根系生長是否良好，枝條生長是否正常，便可以將其從組培瓶中取出，將根部清洗干凈后移栽到配置好的基質中。這種煉苗移栽方法對山桃試管苗最為適合。

本試驗表明，IBA濃度為1.0 mg/L時，山桃試管苗的生根效果最好，根系粗壯，側根較多，生根率達94 %以上，平均根數6根以上，平均根長6.8 cm以上。添加80 mg/L PG的處理，無論是生根率、平均根數還是平均根長，較不添加80 mg/L PG的處理相比表現都不理想。將根長超過3 cm的山桃組培苗置于溫室環境中遮光煉苗5～7 d后，將瓶蓋打開一半，并配制800倍的多菌靈少量倒入組培瓶中，4 d后可將其瓶蓋全部打開，繼續煉苗5～7 d時，這樣的煉苗過程效果最好，組培苗根系生長基本正常，只有個別葉片枯黃，零落，煉苗成活率可達到88%。

參考文獻：

［1］ ANCHONDO T J R， FRATTARELLI A， MONTICELLI S， et al. Effect of the gelling agent and alternative substrates on micropropagation of peach rootstock GF677 （P. amygdalus× P. persica）［J］.? Acta Horticulturae， 2011， 923： 209-212.

［2］ KRIZAN P， SAULI P， LASTOVICKA J. Persistence of planetary wave type oscillations in the mid-latitude ionosphere［J］.? Annals of Geophysics， 2006， 49（6）：1189-1193.

［3］ FELEK W， MEKIBIB F， ADMASSU B. Micropropagation of peach， Prunus persica（L.） BATSCH. cv. Garnem［J］. African Journal of Biotechnology， 2017， 16（10）： 490-498.

［4］DEJAMPOUR J， MAJIDI I， KHOSRAVI S， et al. In Vitro Propagation of HS314 Rootstock （Prunus amygdalus× P. persica）［J］.? Hortscience， 2011， 46（6）： 928-931.

［5］ 趙劍波，郭繼英，姜全，等.? 桃抗重茬砧木GF677組培快繁技術［J］.? 江蘇農業科學，2016（5）：60-61；68.

［6］ 周玉碧，李? ?唯.? 晚熟桃微繁技術的研究［J］.? 甘肅農業大學學報，2005，40（6）：745-749.

［7］ PARK S H， ELHITI M， WANG H， et al.? Adventitious root formation of in vitro peach shoots is regulated by auxin and ethylene［J］.? Scientia Horticulturae， 2017， 226： 250-260.

［8］ 陳子萱，曹孜義，田福平.? 扁桃砧木Nemaguard和Lovell的組培快繁［J］.? 甘肅農業大學學報，2004，39（5）：524-528.

［9］ KORNOVA K， MICHAILOVA J， ASTADJOV N.? Application of In Vitro Techniques for Propagation of Rosa Kazanlika Top.（Rosa Damascena Var. Trigintipetala）［J］.? Biotechnology & Biotechnological Equipment， 2000， 14（2）：78-81.

［10］ KAMALI K， MAHIDI E， ZARGHAMI R.? Determination of the most suitable culture medium and growth conditions for micropropagation of GF677 （hybrid of almond × peach） rootstocks［M］. University of Oxford. 2001， 234-243.

［11］ 郭偉偉，孟慶杰，黃? ?勇，等. ‘黃金冠’桃組織培養的初步研究［J］.? 北方園藝，2010（19）：142-144.

［12］ 潘? ?瞳，姚苗笛，于曉南.? 紫葉桃（Prunus persica f. atropurpurea）的愈傷組織誘導和培養［J］.? 河北林果研究，2009，24（1）：77-80.

［13］ EDRISS M H， BAGHDADI G A， EL-RAZEK A M A， et al. Micropropagation of Some Peach Rootstocks［J］. Nature and Science， 2014，12（3）： 106-114.

［14］ PEREZ J M， CANTERO N E， PEREZ-A F， et al.? Relationship between endogenous hormonal content and somatic organogenesis in callus of peach （Prunus persica L. Batsch） cultivars and Prunus persica × Prunus dulcis rootstocks［J］.? Journal Of Plant Physiology， 2014， 171（8）： 619-624.

［15］ SOTIROPOULOS T E， FOTOPOULOS S.? In vitro propagation of the PR 204/84 peach rootstock（Prunus persica × P. amygdalus）： the effect of BAP， GA3， and activated charcoal on shoot elongation［J］.? European journal of horticultural science， 2005， 70（5）： 253-255.

［16］ 楊增海，胡霓云，路廣明.? 桃莖尖試管繁殖成苗［J］.? 植物生理學報，1982（3）：42-43.

［17］ 楊增海，胡霓云，路廣明.? 桃試管實生苗莖尖培養的研究［J］.? 園藝學報，1984，11（1）：7-13.

［18］ 張雪冰，王? ?鴻，張? ?帆，等.? 外源激素及低溫處理對桃種子休眠解除的影響［J］.? 甘肅農業科技，2020（12）：59-61.