楊億然,張 真,劉 雨
(1.湖南中醫藥大學,湖南 長沙 410208;2.湖南省中醫藥研究院附屬醫院,湖南 長沙 410006)
慢性阻塞性肺疾?。╟hronic obstructive pulmonary disease,COPD)是臨床常見的呼吸系統疾病,以不可逆的氣流受限為主要特征,臨床表現為咳嗽、咳痰及呼吸困難等[1]。COPD與吸煙、呼吸道感染和空氣污染等因素密切相關。炎癥是COPD發生發展的重要機制,預防和控制肺部炎癥的發生是改善COPD患者癥狀的重要方法[2-4]。肺部炎癥與巨噬細胞密切相關,主要包括經典激活的巨噬細胞(巨噬細胞M1極化)和替代活化的巨噬細胞(巨噬細胞M2極化)兩種活化方向。M1極化以釋放炎癥因子、促進炎癥發展為主,M2極化以釋放抑炎因子、抑制炎癥發展為主。因此,明確COPD中巨噬細胞的極化方向有重要意義[5-8]。金水六君煎出自《景岳全書》,具有養陰化痰之功效?,F有研究表明,金水六君煎對COPD有著良好的治療作用。無論是COPD緩解期還是急性加重期,在常規治療的基礎上加用金水六君煎,能有效縮短病程,改善患者癥狀,減少病情惡化的發生率[9]。研究認為其機制可能與抑制炎癥因子高表達有關[10]。因此,本研究以COPD小鼠為研究對象,觀察金水六君煎對巨噬細胞極化方向的影響,以闡明金水六君煎治療COPD的可能機制及靶點。
1.1 實驗動物 SPF級雄性ICR小鼠32只,6~8周齡,體質量(16.91±1.24)g,由北京華阜康生物科技有限公司提供,實驗動物質量合格證號:110322211101433345,動物生產許可證號:SCXK(京)2019-0008。本實驗經湖南中醫藥大學動物實驗中心審核通過,動物實驗倫理批號:LL2022022305。小鼠飼養于12 h黑夜、12 h白晝的環境中,飼養室溫度為22~24 ℃,相對濕度為50%~60%。飼養期間小鼠自由進食和飲水。
1.2 香煙 金圣牌香煙,江西中煙工業有限責任公司生產,焦油含量8 mg,煙氣煙堿量0.8 mg,CO含量9 mg。
1.3 實驗試劑 PBS(批號:04B230203)購自長沙艾碧維生物科技有限公司;CD86抗體(PE)(批號:02S230111)、CD163抗體(APC)(批號:20210727003)、CD206抗體(FITC)(批號:00113481)均購自安諾倫生物科技有限公司;CD68抗體(PC5.5)(批號:00109616)購自百進生物科技有限公司;石蠟(批號:20213642012)、中性樹膠(批號:20211031020)購自上海西格瑪有限公司;蘇木素(批號:20210301006)、PBS(批號:20210618005)、伊紅(批號:20211130004)購自美國薇碧生化科技集團公司;白介素-6(IL-6)ELISA試劑盒(批號:07D21228)、白介素-8(IL-8)ELISA試劑盒(批號:03C20216)、CoraLite488-conjugated Affinipure Goat Anti-Rabbit lgG(H+L)(批號:13A2030004)、CoraLite594-conjugated Goat Anti-Mouse IgG(H+L)(批號:10S22110)均購自武漢三鷹生物技術有限公司;甲潑尼龍片(批號:13A221229)購自意大利輝瑞制藥廠。
1.4 實驗儀器 SL02型低速離心機購自上海知信實驗儀器;A00-1-1102型流式儀購自貝克曼庫爾特有限公司;H1650R型臺式高速冷凍離心機購自湖南湘儀實驗室儀器開發有限公司;PW-812型全自動酶標洗板機、MB-530型多功能酶標分析儀均購自深圳市匯松科技發展有限公司;DHP-500型電熱恒溫培養箱購自北京市永光明醫療儀器有限公司;TS-92型搖床購自其林貝爾;DYY-6C型恒溫箱購自北京六一生物科技有限公司;MM721 AAU-PW型微波爐購自美的集團有限公司;M199型切片刀購自德國徠卡公司;YD-315型切片機購自浙江金華益迪試驗器材;BMJ-A型包埋機購自常州中威電子儀器有限公司;BCD-245F型普通冰箱購自合肥榮事達電子電器集團有限公司;E-201-C型精密pH計購自上海雷磁環保工程有限公司;BA210T型顯微鏡購自麥克奧迪有限公司;DY89-1型蓋玻片、AY89-2型載玻片均購自海門遠泰實驗器材廠。
1.5 藥物配制 金水六君煎藥物組成參照《景岳全書》原方[11]:當歸6 g,熟地黃15 g,陳皮4.5 g,法半夏6 g,茯苓6 g,炙甘草3 g,生姜10 g。以上各藥均為新綠藥配方顆粒,購自湖南省中醫藥研究院附屬醫院,經田其學主任藥師鑒定確認為正品。將上述藥物用適量的滅菌水配置成生藥質量濃度為1 g/mL的藥液,現配現用。
2.1 模型制造 將小鼠放置于熏煙箱(1.6 m×0.5 m×0.25 m),箱體設有通風口,防止小鼠窒息死亡。通風口對接煙霧處理設備,防止煙霧逸出污染環境。將20根香煙點燃后并放入熏煙箱內,持續熏煙1 h,中途休息15 min,重復上述步驟再次熏煙1 h,1次/d,2 h/次,連續12周。
2.2 實驗分組 將32只ICR小鼠隨機分為空白組、模型組、西藥組和中藥組,每組8只。小鼠給藥劑量參考人和動物表面積折算的等效劑量比率表,中藥組給藥劑量為6.565 g/(kg·d),西藥組經人體劑量換算后予甲潑尼龍,4.16 mg/(kg·d)[12],空白組和模型組小鼠予等量生理鹽水灌胃,6.57 mL/(kg·d)。除空白組外,各組小鼠均在第1周起接受煙熏,第5周開始在熏煙前1 h灌胃相應藥物??瞻捉M小鼠只灌胃,不做熏煙處理。
2.3 觀察指標
2.3.1 肺功能檢測 12周后腹腔注射1%戊巴比妥鈉(40 mg/kg)麻醉小鼠后,分離暴露氣管,進行氣管插管固定,使用小動物肺功能檢測儀測定每分鐘通氣量(MV)、吸氣峰流量(PIF)及呼氣峰流量(PEF)。
2.3.2 肺組織病理 HE染色觀察肺組織病理。12周后處死小鼠,取小鼠肺部組織浸入4%多聚甲醛內固定24 h。60 ℃烤片12 h,切片脫蠟至水,經蘇木素、伊紅染色后,梯度酒精脫水。取出后置于二甲苯10 min,2次,中性樹膠封片,顯微鏡觀察并采集圖像。
2.3.3 肺組織IL-6和IL-8水平 取一定量肺組織,制備10%肺組織勻漿液,4 ℃,1 000 r/min離心10 min(離心半徑為7 cm),取上清液,嚴格按照ELISA檢測試劑盒說明書檢測IL-6、IL-8水平。
2.3.4 肺組織CD68和CD206表達 采用免疫熒光觀察小鼠肺組織CD68和CD206表達。取小鼠肺部組織浸入4%多聚甲醛內固定24 h。60 ℃烤片12 h,切片脫蠟至水,熱修復抗原,經過硼氫化鈉溶液、乙醇溶液、蘇丹黑染液處理后,于10%正常血清/5%BSA封閉60 min。孵育一抗:滴加適當稀釋的一抗(CD68+CD206),4 ℃過夜。PBS沖洗3次,5 min/次。孵育二抗:滴加50~100 μL抗-小鼠+兔-IgG標記熒光抗體,37 ℃孵育60~90 min,PBS沖洗3次,5 min/次。DAPI工作液染核后PBS充分沖洗后取出。熒光顯微鏡下觀察,熒光顯微鏡電腦采集圖像。
2.3.5 巨噬細胞M1和M2極化情況 采用流式細胞儀檢測巨噬細胞M1和M2極化情況。取小鼠肺組織冷凍于液氮內,并用膠原酶I配制成0.2 mg/mL的消化液,組織剪碎后轉移至15 mL離心管,加入6 mL消化液,充分消化后加入6 mL DMEM終止消化。使用細胞濾網過濾,剩余組織研磨后,DMEM沖洗過濾網。4 ℃,1 000 r/min離心5 min(離心半徑為7 cm),棄去上清液,收集細胞懸液后再次4 ℃,1 000 r/min離心5 min(離心半徑為7 cm),收集細胞沉淀。加入CD86和CD163抗體,孵育。設置陰性管,單染管。4 ℃,1 000 r/min離心5 min(離心半徑為7 cm),破膜、洗滌,加入CD86和CD206抗體,孵育。設置單染管,洗滌后4 ℃,1 000 r/min離心5 min(離心半徑為7 cm),分別加入200 μL PBS重懸細胞,用流式儀檢測。
2.4 統計學方法 采用SPSS 26.0軟件進行統計學分析,計量資料用“均數±標準差”(±s)表示。計量資料符合正態分布且方差齊,使用單因素方差分析,若不符合正態分布,則使用非參數檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
3.1 各組小鼠肺功能比較 模型組小鼠MV、PIF和PEF水平均低于空白組(P<0.05);中藥組和西藥組小鼠MV、PIF和PEF水平均高于模型組(P<0.05);中藥組小鼠MV、PIF和PEF水平均高于西藥組(P<0.05)。(見表1)
表1 各組小鼠肺功能比較 (±s)

表1 各組小鼠肺功能比較 (±s)
注:與空白組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與西藥組比較,cP<0.05。
組別 n 給藥劑量 MV/mL PEF/(mL/s) PIF/(mL/s)空白組 8 - 44.85±3.05 4.53±0.32 3.71±0.16模型組 8 - 17.80±2.09a 2.37±0.19a 2.16±0.08a西藥組 8 4.160 mg/(kg·d) 31.48±1.90a b 3.64±0.23a b 2.57±0.09a b中藥組 8 6.565 g/(kg·d) 37.56±2.95a bc 3.69±0.87a bc 3.16±0.16a bc F 162.015 124.508 220.161 P 0.000 0.017 0.000
3.2 小鼠肺組織病理改變 空白組小鼠肺組織完整,肺泡無明顯破裂融合現象;模型組可見肺泡破裂融合,為明顯的COPD肺組織征象;與模型組比較,中藥組和西藥組肺泡破裂融合現象明顯減少。(見圖1)

圖1 小鼠肺組織病理圖 (HE,×100)
3.3 各組小鼠肺組織IL-6和IL-8水平比較 模型組小鼠肺組織IL-6和IL-8水平均高于空白組(P<0.05);西藥組、中藥組小鼠肺組織IL-6和IL-8水平均低于模型組(P<0.05);中藥組小鼠肺組織IL-6和IL-8水平均低于西藥組(P<0.05)。(見表2)
表2 各組小鼠肺組織IL-6 和IL-8 水平比較 (±s,pg/mL)

表2 各組小鼠肺組織IL-6 和IL-8 水平比較 (±s,pg/mL)
注:與空白組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與西藥組比較,cP<0.05。
組別 n 給藥劑量 IL-6 IL-8空白組 8 - 0.12±0.02 0.07±0.01模型組 8 - 0.26±0.02a 0.17±0.03a西藥組 8 4.160 mg/(kg·d) 0.21±0.02a b 0.15±0.02a b中藥組 8 6.565 g/(kg·d) 0.18±0.01a b c 0.13±0.02a b c F 84.301 37.696 P 0.001 0.000
3.4 小鼠肺組織CD68和CD206的表達 免疫熒光實驗結果顯示,各組小鼠均有不同程度的CD68和CD206陽性表達。其中CD68反映巨噬細胞激活程度,CD206反映巨噬細胞M2極化程度??瞻捉M小鼠肺組織中CD68及CD206表達均不明顯,提示巨噬細胞處于未激活狀態。與其余各組比較,模型組的CD68陽性表達量最明顯,提示模型組肺組織中巨噬細胞被激活。中藥組和西藥組CD206陽性表達明顯升高,提示經過治療后,肺組織中巨噬細胞有向M2極化趨勢。(見圖2)

圖2 各組小鼠肺組織CD68 和CD206 的表達 (×200)
模型組小鼠肺組織CD68、CD206占比和CD206/CD68均高于空白組(P<0.05);西藥組、中藥組小鼠肺組織CD68占比低于模型組,CD206占比和CD206/CD68均高于模型組(P<0.05);中藥組小鼠肺組織CD68占比高于西藥組(P<0.05),CD206占比和CD206/CD68均低于西藥組(P<0.05)。(見表3)
表3 各組小鼠肺組織CD68、CD206 占比和CD206/CD68比較 (±s)

表3 各組小鼠肺組織CD68、CD206 占比和CD206/CD68比較 (±s)
注:與空白組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與西藥組比較,cP<0.05。
組別 n 給藥劑量 CD68占比/% CD206占比/% CD206/CD68空白組 8 - 2.40±0.18 0.06±0.01 0.03±0.01模型組 8 - 10.55±0.39a 2.64±0.32a 0.25±0.02a西藥組 8 4.160 mg/(kg·d) 6.43±0.33ab 3.65±0.19ab 0.57±0.05ab中藥組 8 6.565 g/(kg·d) 7.60±0.64abc 3.56±0.39abc 0.47±0.02abc F 1 460.409 946.189 794.516 P 0.030 0.000 0.028
3.5 小鼠肺組織巨噬細胞極化方向 CD86陽性比例反映巨噬細胞M1極化,CD163陽性比例反映巨噬細胞M2極化。模型組小鼠肺組織CD86陽性比例和CD86/CD163高于空白組(P<0.05),提示巨噬細胞激活以M1極化為主。西藥組與中藥組小鼠肺組織CD86陽性比例和CD86/CD163低于模型組(P<0.05),CD163陽性比例高于模型組(P<0.05),提示巨噬細胞以M2方向極化趨勢為主。(見表4、圖3)

圖3 各組小鼠巨噬細胞M1、M2 型表達水平
表4 各組小鼠肺組織CD86、CD163 陽性比例及CD86/CD163 比較 (±s)

表4 各組小鼠肺組織CD86、CD163 陽性比例及CD86/CD163 比較 (±s)
注:與空白組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與西藥組比較,cP<0.05。
組別 n 給藥劑量 CD86陽性比例/% CD163陽性比例/% CD86/CD163空白組 8 - 0.36±0.03 0.52±0.07 0.70±0.01模型組 8 - 2.76±0.08a 0.62±0.05a 4.46±1.34a西藥組 8 4.160 mg/(kg·d) 0.85±0.06ab 1.83±0.14ab 0.47±0.04ab中藥組 8 6.565 g/(kg·d) 1.24±0.11abc 2.54±0.08abc 0.48±0.05abc F 522.299 310.593 1 426.198 P 0.000 0.000 0.000
COPD是一種常見的慢性疾病,尤以老年人多見,嚴重影響患者的生活質量[13]。COPD的急性發展與炎癥密切相關,抗炎貫穿COPD治療始終,控制炎癥的進展是治療COPD的重要組成部分。臨床常根據痰培養鑒定選出合適的敏感抗生素進行治療,當炎癥反應嚴重,難以控制時,常配合激素治療改善癥狀。巨噬細胞在炎癥反應過程中有著不可替代的作用[14-15]。在人體氣道表面,巨噬細胞廣泛分布,具有抵御外來病原微生物入侵和調節人體炎癥反應的作用[16]。巨噬細胞具有明顯的可塑性和非均一性,其激活狀態取決于其自身的局部微環境信號。目前,巨噬細胞的表型主要有兩類:經典活化型(M1極化)和替代活化型(M2極化),細胞因子和表型標志物可區分兩者[17]。M1極化后的巨噬細胞主要分泌IL-6、IL-12和腫瘤壞死因子-α(TNF-α),具有積極的促炎作用,有利于機體對外來病原體的消滅清除,但是過度的炎癥反應對機體組織亦能造成損害[18]。M2型極化后的巨噬細胞主要分泌IL-10、轉化生長因子-β(TGF-β),具有積極的抗炎作用,有利于機體炎癥的減退,幫助組織修復[19]。研究表明,在COPD發生發展過程中,巨噬細胞的極化現象貫穿其中。對于極化方向,目前主流觀點認為,COPD往往由感染導致急性加重,巨噬細胞向M1轉化符合炎癥的發生發展規律[20]。
COPD屬中醫學中“肺脹”“喘證”等范疇。咳嗽、咳痰、胸悶氣促為主要表現。肺為嬌臟,喜潤惡燥。肺陰不足,宣降失常,氣滯飲停,聚而為痰。腎陰不足,腎不納氣,發為氣促[21-22]。金水六君煎養陰化痰,主治肺腎不足,水泛為痰。方中當歸補血活血;熟地黃補血滋陰,益精填髓。兩者合用,補肺腎之陰,以復肺臟宣降之權,腎臟納氣之能,治病之本[23]。半夏燥濕化痰,陳皮理氣健脾,茯苓利水滲濕。三者合用,健脾運濕,化痰止咳,治病之標。甘草調和諸藥。諸藥合用標本兼治,共奏滋養肺腎、止咳化痰之功?,F代藥理研究證實,當歸可以通過降低毛細血管的通透性、抑制炎癥因子的釋放、維持機體免疫細胞敏感性來起到抗炎的作用,同時當歸還可以通過增加免疫細胞的數量來起到提高免疫力的作用[24]。不同劑量地黃提取物能不同程度地提高T淋巴細胞比值和血清溶血素水平,從而提高機體免疫力。研究表明,地黃醋酸乙酯浸膏、正丁醇浸膏對金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、枯草桿菌等有明顯抑制作用[25]?,F代藥理研究表明,半夏提取物有顯著的鎮咳和祛痰作用[26];陳皮具有抑菌抗炎、抗病毒、抗氧化、清除自由基的作用[27];茯苓具有增強特異性細胞免疫功能、抗炎、抗病毒等作用[28]。
本實驗結果顯示,模型組小鼠存在明顯COPD病理現象,肺功能各項指標惡化,提示COPD造模成功。經金水六君煎和甲潑尼龍干預后,小鼠肺組織病理和肺功能明顯改善,炎癥因子減少,提示兩者可通過抑制肺部炎癥治療COPD。同時,模型組肺泡巨噬細胞數增多,M1/M2型巨噬細胞百分比升高。經金水六君煎和甲潑尼龍干預后,小鼠肺泡巨噬細胞數降低,M1型巨噬細胞比例下降,M2型巨噬細胞比例上升,提示金水六君煎和甲潑尼龍可通過抑制肺泡巨噬細胞M1極化和促進M2極化來抑制肺部炎癥,達到治療COPD的作用。
綜上所述,COPD小鼠肺組織存在巨噬細胞極化M1/M2失衡。金水六君煎可能通過促進巨噬細胞M2極化起到改善肺部炎癥,從而起到治療COPD的作用。