馬 婕,楊曉雪,遲玉杰,*,遲 媛
(1.東北農業大學食品學院,黑龍江 哈爾濱 150030;2.東北農業大學工程學院,黑龍江 哈爾濱 150030)
蛋黃因其較高的營養價值、濃郁的感官風味和良好的乳化特性而廣泛應用于蛋黃醬、沙拉醬和焙烤食品等的制作。蛋黃在食品中主要的功能特性是乳化性質,通過將油和水融合,形成完全分散的乳濁液,有助于提高食品的口感、掩蓋不良風味[1]。蛋黃常用于制作油酥性面團、蛋糕面糊、蛋撻等焙烤食品,可以使各種脂溶性成分與水更好地結合,使其口感更加柔軟,因此改善蛋黃乳化性質可以擴大其在食品工業中的應用范圍。提高蛋黃乳化性質可以改善其作為天然乳化劑的品質,減少食品工業對人工合成乳化劑的依賴。因此,為研究具有良好乳化性質的蛋液并在實際生產中應用,本研究通過超聲協同殼聚糖處理的手段提升蛋黃的乳化性質,并研究其乳化性質與結構特性之間的關系。
殼聚糖由N-乙酰葡萄糖胺通過β-1,4-糖苷鍵連接而成,由甲殼素經過脫乙酰作用得到,是一種綠色安全的可再生資源,甲殼素脫去55%以上的N-乙酰基時就可被稱為殼聚糖[2]。殼聚糖與蛋白質的非共價聚合可以改善乳液的乳化性質,使得蛋白質-多糖復合物具有優于單一蛋白質的特性[3]。Schulz等[4]的研究表明殼聚糖能夠穩定水-油-水型多重乳液,其親水親油平衡值大約為36.7,親水性較強。Torrico等[5]發現殼聚糖對蛋黃內部品質不僅有保鮮作用,還可以起到乳化劑的效果,即殼聚糖可有效改善蛋黃的乳化性質。Zhang Lijuan等[6]基于靜電相互作用,開發了鱈魚蛋白/殼聚糖復合顆粒,顯著提高了其乳液穩定性,并改善了乳液的黏彈性和觸變性。
超聲處理是一種公認的綠色無公害食品加工技術,其應用成本低,超聲處理下蛋黃顆粒的理化性質及微觀結構都會發生一定變化[7]。超聲處理可用于改善蛋白質的特性,如起泡性、凝膠性和乳化性質等[7-9]。蛋黃中含有豐富的低密度脂蛋白,它提供了主要的乳化活性[10]。杜清普等[11]的研究表明超聲處理后冰蛋黃的乳化活性提高了7.54%。Li Qiqi等[12]發現超聲處理導致蛋黃顆粒粒徑減小,而表面疏水性增大;畢雅雯等[13]發現150 W超聲處理后蛋黃液乳化性質得到改善,粒徑及乳析指數顯著降低。因此利用超聲處理蛋黃液,通過改變其蛋白結構而改善其乳化性質的方法是可行的。
目前,超聲協同殼聚糖處理對蛋黃乳化性質的影響及其與蛋白結構之間的關系鮮有報道,故本研究在單一條件改性的基礎上,采用超聲協同殼聚糖處理雞蛋黃,以期為改善蛋黃的乳化性質提供依據,并為進一步將其應用于生產實踐提供理論指導。
新鮮A級雞蛋(平均質量為45~55 g)由黑龍江省哈爾濱市雙城區某農場生產;大豆油 哈爾濱九三油脂有限責任公司;殼聚糖(脫乙酰度80%~95%) 國藥集團化學試劑有限公司;4×天然聚丙烯酰胺凝膠電泳(polyacrylamide gel electrophoresis,PAGE)上樣緩沖液、考馬斯亮藍G-250 北京索萊寶科技有限公司;其他試劑均為國產分析純。
超聲破碎儀 美國Sonics公司;JJ-1精密定時電動攪拌器 上海浦東物理光學儀器廠;HWS-24型電熱恒溫水浴鍋 上海一恒科學儀器有限公司;T18型高速勻漿機 德國IKA公司;TU-1810型紫外-可見分光光度計北京普析通用儀器有限責任公司;BX53型科研級正置顯微成像系統 日本奧林巴斯公司;S-3400N型鎢燈絲掃描電子顯微鏡、F-7100型熒光分光光度計 日本日立公司;HAAKE MARS40流變儀、Nicolet IS50型傅里葉變換紅外光譜儀 美國賽默飛世爾公司;Mastersizer 2000型激光粒度儀 英國馬爾文儀器有限公司;*Theta型視頻光學角 瑞典百歐林公司。
1.3.1 蛋黃液樣品的制備
手工破碎新鮮的雞蛋,使用分蛋器將蛋黃與蛋清分離,將鮮蛋黃(fresh egg yolk,FEY)慢慢攪拌以備后續使用。向蛋黃液中加入1.5 g/mL的殼聚糖充分攪拌2 h至殼聚糖完全溶解于蛋黃液中,置于冰水混合物中降溫,使用200 W的功率對樣品進行共10 min(開啟3 s、停止 2 s)的間歇超聲處理,制成超聲協同殼聚糖蛋黃(ultrasonic chitosan egg yolk,UCEY)。對照組樣品包括:1)加殼聚糖蛋黃(chitosan egg yolk,CEY),即向FEY中加入終質量濃度1.5 g/mL殼聚糖并且充分攪拌2 h的蛋黃;2)加熱蛋黃(heated egg yolk,HEY),即FEY經過54 ℃加熱處理的蛋黃;3)加殼聚糖加熱蛋黃(chitosan heated egg yolk,CHEY),即FEY加入終質量濃度1.5 g/mL殼聚糖后,54 ℃加熱處理的蛋黃;4)超聲蛋黃(ultrasonic egg yolk,UEY),即對FEY進行200 W間歇超聲處理10 min(開啟3 s、停止2 s)的蛋黃。用超聲儀器自帶的測溫裝置多次檢測顯示超聲探頭中心部位的蛋黃溫度為(54±2)℃。這可能是由于蛋黃液黏稠,冰塊的溫度無法傳遞到超聲中心,難以使探頭周圍的蛋黃液降溫。蛋黃屬于熱敏性物質,超聲中心的脂蛋白受熱變性聚集可使其加熱后黏度增大甚至凝固,為避免溫度對結果的影響,本研究設置54 ℃加熱的對照組HEY。
1.3.2 乳化活性和乳化穩定性的測定
乳化活性和乳化穩定性的測定參考Tang Chuanhe等[14]的方法并稍作改動。用蒸餾水將蛋黃液稀釋為蛋白質量濃度0.01 g/mL的溶液,將20 mL溶液與5 mL大豆油用高速勻漿機以10 000 r/min均質1 min,獲得乳液。在均質后0 min與5 min時,分別從底部吸取400 μL清液,采用40 mL 0.1 g/mL的十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS)溶液稀釋,以相同質量濃度的SDS溶液作為空白對照,在500 nm波長處測定乳液的吸光度,每個樣品平行測定3 次。分別按照公式(1)、(2)計算乳化活性指數(emulsification activity index,EAI)與乳化穩定性指數(emulsification stability index,ESI)。
式中:T=2.303,為ln 1的近似值;N為稀釋倍數;ρ為乳化前溶液中蛋白質量濃度/(g/mL);φ為油相體積分數/%;A0為0 min時的吸光度;A5為5 min時的吸光度;Δt為時間差(5 min)。
1.3.3 乳液粒徑的測定
采用Zhao Wenfei等[15]的方法,用蒸餾水將1 g蛋黃稀釋20 倍質量,磁力攪拌至完全溶解,加入5 mL大豆油,在12 000~13 000 r/min的轉速下均質1 min,以獲得乳液;吸取80 μL乳液分散至40 mL蒸餾水中,測定其粒徑分布。參數設置如下:樣品折射率1.46,水折射率1.33。
1.3.4 乳液微觀結構的光學顯微鏡觀察
采用Hu Chun等[16]的方法觀察乳液微觀結構,將10 μL 1.3.2節中新鮮乳液置于載玻片上,用蓋玻片覆蓋,平衡2 min后采用科研級正置顯微成像系統放大50 倍后觀察并拍攝照片。
1.3.5 蛋黃表面形貌的掃描電子顯微鏡觀察
參考Tian Xiaolu等[3]的方法并稍作修改,取少許蛋黃凍干樣品固定在鋁樣品臺上,噴金200 s。在掃描電子顯微鏡下放大200 倍觀察不同蛋黃的表面形貌并拍攝照片。
1.3.6 流變學性質的測定
參考Zhao Wenfei等[15]的方法測定蛋黃液的流變特性。選擇平行板直徑為35 mm。25 ℃下在0.1~10 Hz的頻率范圍內進行動態振蕩頻率掃描,固定應變值為0.5%,板間隙為0.3 mm。設定剪切速率范圍為0.1~100 s-1,在25 ℃下測定樣品的表觀黏度。
1.3.7 界面張力的測定
參照Aris等[17]的方法測定1.3.2節中乳液在油-水界面上的界面張力。將連接在毛細管上的不銹鋼針插入裝滿大豆油的玻璃比色皿中,從針尖滴入5 μL液滴到大豆油中,持續1 h檢測界面張力的變化情況,每個數據點的時間間隔為0.5 s。之后基于液滴形狀分析,根據楊-拉普拉斯方程計算界面張力,每個樣品測定3 次取平均值。
1.3.8 SDS-PAGE測定
根據Qing Mingmin等[18]的方法,使用12%分離膠和3%濃縮膠,將蛋黃液稀釋為蛋白質量濃度為10 mg/mL的溶液。將樣品和上樣緩沖液(含有β-巰基乙醇)以體積比1∶1混合后在沸水浴中反應5 min,上樣樣品含20 μg蛋白質。使用實驗室凝膠成像系統獲取圖像信息。
1.3.9 傅里葉變換紅外光譜測定
蛋黃樣品凍干后將凍干樣品切成薄片,并使用傅里葉變換紅外光譜(Fourier transform infrared spectroscopy,FTIR)儀記錄4 000~400 cm-1范圍內的光譜。掃描分辨率為4 cm-1,使用PeakFit v4.12軟件進行積分,以獲得次級導數譜的峰面積。通過酰胺I帶(1 700~1 600 cm-1)吸收峰的高斯反卷積獲得每個二級結構的相對含量。
1.3.10 熒光光譜及疏水性測定
將不同方法處理的蛋黃液用pH值為8.0的磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)稀釋為0.1 mg/mL,按如下參數測定樣品在最大發射波長下的熒光強度:激發波長為280 nm,發射波長為300~420 nm,狹縫寬度為2.5 nm,掃描間隔為1 nm,掃描速率為1 200 nm/min。以相對熒光強度為縱坐標、蛋白質量濃度作為橫坐標作圖,以其斜率表示樣品的表面疏水性。
本研究所得數據均為3 次重復測定的平均值,使用SPSS軟件(版本26.0)進行數據分析。使用單因素方差分析法進行顯著性分析,以P<0.05表示差異顯著。采用Origin 2022軟件進行數據擬合和繪圖。采用PeakFit v4.12軟件進行多峰擬合。
與對照組FEY(EAI為(10.98±0.15)m2/g,ESI為(6.65±0.21)min)相比,CHEY、UEY和UCEY的乳化活性分別顯著升高了21.77%、18.49%和29.51%(P<0.05),乳化穩定性分別顯著升高了6.48%、6.66%和9.47%(P<0.05)(圖1)。

圖1 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃乳液乳化活性及乳化穩定性的影響Fig. 1 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on emulsifying activity and emulsion stability of egg yolk emulsion
超聲協同殼聚糖處理后蛋黃液會逐漸變得黏稠,其黏度的升高提示蛋黃液內部蛋白形成三維網狀結構,液滴之間存在較大的靜電斥力,因此不易聚集,從而使其乳化活性及乳化穩定性升高,這可能是由于蛋白質分子之間的相互作用增強所導致的。根據Xie Yunxiao等[19]的研究結果,超聲處理可能會增加蛋白質之間的相互作用以及蛋白質的水合作用,導致其更緊密地連接。EAI的改善可能歸因于分子柔韌性的提高,其得益于均勻的顆粒分布,說明適度的超聲及殼聚糖處理可以改善蛋黃的乳化性質[20-21]。油-水乳化體系的特性受蛋白濃度、添加油的體積分數、攪拌速度及攪拌時間等因素影響[22]。對于乳化穩定性,攪拌速度的影響最為顯著。本實驗中各處理組的均質時間均為1 min,因此CEY、CHEY、UEY和UCEY的ESI差異不顯著(P>0.05)。與上述4 組相比,HEY的ESI顯著較低,這可能是由于溫度的提高使部分脂蛋白變性聚集,蛋白質分子柔韌性減弱,其在油-水界面的穩定性降低,從而引起ESI降低。
蛋黃乳液樣品的粒徑為微米級,可通過動態光散射技術測定蛋黃樣品顆粒聚集體的粒徑變化,從而反映超聲協同殼聚糖處理對蛋黃中脂蛋白聚集程度的影響[23]。除HEY,所有處理組的粒徑圖像相較于未超聲樣品都向左移動,CHEY、UEY和UCEY的平均粒徑分別為104.70、104.68 μm和62.23 μm,其中UCEY的粒徑減小最明顯,與FEY相比減小了50.01%(圖2)。

圖2 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃乳液粒徑的影響Fig. 2 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on particle size of egg yolk emulsion
超聲協同殼聚糖處理對乳液粒徑的影響與圖1中EAI的測定結果相印證,較小的粒徑說明液滴較分散,這可能是由于超聲處理使蛋白質分散,使得乳液由緊密的聚集體變得分散,從而使具有疏水性的官能團快速遷移到油-水界面并穩定乳液,200 W超聲處理引起的空化效應產生了高剪切能量和湍流,為蛋白質分子的碰撞和解離提供了足夠的能量。蛋白質分子由于分子間相互作用被破壞及化學鍵被解離形成小分子,從而使蛋白質粒徑減小,表面積增大,蛋白質與油相吸附的可能性增大,乳化性質得到改善。CEY中殼聚糖的加入使帶正電的殼聚糖通過靜電相互作用移動到帶負電荷的乳液層,其與蛋黃蛋白的復合提供了較大的空間阻力,使乳液粒徑減小。
油-水界面被認為是厚度無限小的平面,但是界面區域/膜本質上是動態的,例如在一個區域內有水-水(氫鍵)、油-油(范德華力)和水-油(疏水效應,其中水分子遠離非極性甘油三酯以盡量減少與其接觸)3 種分子間相互作用力。本研究中超聲處理時,蛋黃的界面張力在一定時間內明顯下降,之后隨時間的延長變化趨于平緩,在達到峰值時UCEY的界面張力較FEY降低了16.67%(圖3)。

圖3 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃乳液界面張力的影響Fig. 3 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on interfacial tension of egg yolk emulsion
FEY、CEY和HEY的界面張力曲線在超聲處理的前200 s較陡,而超聲協同殼聚糖處理不僅可以降低界面張力,與其他實驗組相比,UCEY的界面張力曲線更加平滑,且更快達到平衡狀態,說明其具有較高的吸附速率、較平衡的表面張力及較低的膨脹表面模量。CEY界面張力的降低可能是由于殼聚糖與脂蛋白經過靜電相互作用復合后,提高了復合顆粒的疏水性。超聲處理200 s后CEY、UEY與UCEY的界面張力曲線有相似的變化趨勢,且平滑程度相當,但UCEY的初始界面張力更低,說明超聲與殼聚糖處理對界面張力的降低存在著一定程度的協同作用。超聲協同殼聚糖處理可以抑制蛋黃蛋白的相互聚集,有利于蛋白顆粒更快地移動到油-水界面,形成強而致密的吸附層,導致界面張力降低,通過防止油滴的聚集和絮凝提高體系穩定性。
顯微圖片可以直觀地顯示出乳液的分散特性,本研究觀察了放大50 倍后的蛋黃乳液液滴。未經過處理的蛋黃乳液液滴不均勻地分散,且大小不一,較為密集地聚集在一起;HEY乳液液滴明顯增大,且出現更加明顯的聚集和絮凝;CHEY乳液液滴粒徑相對較小,粒徑分布更為均一;而UCEY乳液液滴更加細小,最為均一地分布于視野之中(圖4)。

圖4 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃乳液微觀結構的影響Fig. 4 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on microstructure of egg yolk emulsion
UCEY中包裹油滴的界面蛋白之間會產生較強的空間阻力,使油滴形成規則的球形,并同時伴隨著乳液穩定性的上升。這可能是由于超聲及殼聚糖處理改變了卵黃顆粒的聚集形態和蛋白質的構象,使其微觀結構更加緊密細致,分子間作用力增大,抑制液滴顆粒的聚集,從而使絮凝現象減少,表明超聲及殼聚糖協同處理有助于油滴的均勻分布。多糖中的親水基團可以阻止由于靜電排斥缺乏而引起的聚合現象。顯微圖片觀察到CEY的乳液微粒較FEY略大,邊緣顏色較深,液滴壁較厚,表明帶正電的殼聚糖通過靜電相互作用形成復合顆粒,從而形成較厚的膜,或是存在未反應完全的殼聚糖顆粒。
本研究用掃描電子顯微鏡放大200 倍觀察蛋黃凍干顆粒的聚集程度。未經處理的FEY顆粒較大,部分顆粒彼此黏連,凝結在一起,總體呈不規則且不均勻分布。與FEY相比,CEY和CHEY顆粒較小,且分布更加松散;HEY顆粒發生了明顯的熱聚集;UCEY顆粒尺寸減小,且分布更加均勻(圖5)。

圖5 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃聚集程度的影響Fig. 5 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on the degree of aggregation of egg yolk
掃描電子顯微鏡圖像表明超聲協同殼聚糖處理對蛋黃結構的影響程度大于超聲或殼聚糖單一處理,這與超聲產生的空化和微湍流效應有關,超聲處理后蛋黃粉的顆粒結構被破壞并分裂為大量碎片,產生了不規則的孔狀結構,出現不同程度的凹陷、裂紋和片狀凸起,顆粒大小也變得更加不均勻。超聲處理使蛋黃顆粒的微觀結構變得更緊密,其可對蛋白質的構象和蛋黃顆粒中的物質組成產生影響,改變顆粒的聚集狀態。殼聚糖與蛋黃蛋白發生了反應,促進了分子之間的相互作用,使蛋黃顆粒結構更加穩定。超聲協同殼聚糖處理使結構緊密的蛋白質分子展開并暴露于活性殘基之中,從而使蛋黃顆粒更加分散、均勻,表明超聲協同殼聚糖處理蛋黃可有效改善其顆粒結構。
本研究使用模塊化旋轉流變儀測定蛋黃液的流變性質,并監測樣品的動態黏彈性。頻率掃描測試包括2 個獨立參數,儲能模量G’又稱彈性模量,反映了蛋黃的彈性特性;損耗模量G”又稱黏性模量,反映了蛋黃的黏性特性。頻率掃描的結果經常用于檢驗樣品的穩定性和內部組織變化情況[24]。各組蛋黃液的G’和G”變化趨勢大致相同,且G’與G”的數值與掃描頻率呈正相關,與Xu Lilan等[25]對蛋黃進行頻率掃描后觀察到的結果類似,意味著彈性行為并未占主導地位,所有處理組蛋黃的G”均大于G’,說明蛋黃表現出流體的性質(圖6)。蛋黃中蛋白質分子間相互作用力的增強會使其黏性增大,并且其彈性模量與黏性模量都隨之增大。本研究中UCEY的彈性模量和黏性模量均最高,說明超聲協同殼聚糖處理使蛋黃中蛋白質的多肽鏈展開,疏水作用增強,并且殼聚糖的添加使蛋黃液黏度增加,流動性變差,形成更加緊密的網絡結構,從而導致G’增大,最終促使蛋黃體系的穩定性得到改善。CEY與UEYG’和G”的變化趨勢與UCEY相似,但UCEY的性質改善更加明顯,表明超聲與殼聚糖處理存在協同作用,其共同使蛋黃蛋白質分子相互作用增強,并使液滴間網絡結構更加穩固。

圖6 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃液流變學特性的影響Fig. 6 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on rheological properties of liquid egg yolk
表觀黏度是蛋黃液的基本功能指標,指在一定的速率梯度下剪切應力與速率之比。表觀黏度為食物乳液和其他懸浮顆粒提供物理支持,可直觀地反映出液體的流動性。蛋黃液的表觀黏度隨著剪切速率的增加而減小,表明所有蛋黃液都是假塑性流體,具有剪切變稀的特性,是非牛頓流體。蛋黃顆粒之間通過各種作用力形成較穩定的三維網絡結構,阻礙油滴的流動,使其具有一定的黏性。UCEY和CHEY的表觀黏度明顯高于FEY(圖7)。根據Ma Zihong等[26]的研究,糖對蛋黃中鐵或銅的螯合作用可能會限制或減少蛋白質結構的交叉鍵合,抑制蛋白質分子的聚集。殼聚糖的加入不僅改變了蛋黃液的聚集狀態,形成較大的液滴阻礙流動行為,還可能改變液滴的帶電情況,使液滴間排斥力增大,從而增加流動阻力。較高的黏度可以有效阻止液滴聚集,使乳液粒徑減小,增加蛋黃液的乳化穩定性,與2.2節粒徑的測定結果相印證。僅經過超聲的UEY表觀黏度較小,而UCEY的表觀黏度較大,表明加入殼聚糖可明顯改善蛋黃液黏度及乳化性質。

圖7 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃液表觀黏度的影響Fig. 7 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on apparent viscosity of liquid egg yolk
SDS-PAGE是反映蛋白質分子質量變化最直觀且便捷的方法之一,用于對蛋白質的亞基分子質量進行分析,SDS能使肽鏈伸展,破壞蛋白質原有的二、三級結構,β-巰基乙醇切斷了半胱氨酸之間的二硫鍵,排除由于二硫鍵引起蛋白質聚集的可能性,使蛋白質分子的移動速率僅與其亞基分子質量相關[27]。SDS-PAGE能反映蛋黃中蛋白質與殼聚糖發生的共價連接情況以及超聲對于蛋黃蛋白質分子質量的影響。
根據Wang Ruihong等[28]的研究,蛋黃液中主要含有低密度脂蛋白和卵黃球蛋白,蛋黃顆粒中主要含有高密度脂蛋白和卵黃高磷蛋白,分子質量為130 kDa的蛋白含量最多,其次是55~80 kDa的蛋白,本研究的測定結果與之相符。CHEY和UCEY各亞基組分的條帶相較于FEY明顯較淺,HEY條帶顏色相較于FEY變化最大,FEY和CEY之間條帶顏色無明顯差異(圖8)。

圖8 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃蛋白SDS-PAGE圖譜的影響Fig. 8 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on SDS-PAGE pattern of egg yolk proteins
蛋白條帶顏色變淺說明蛋白質聚集體被β-巰基乙醇和SDS分解,超聲處理促進了疏水相互作用和巰基二硫鍵交換的反應,使疏水相互作用增強的同時二硫鍵斷裂。蛋黃蛋白質與殼聚糖發生共價鍵結合減少了蛋白質中的自由氨基和巰基數量,即減少了與考馬斯亮藍發生顯色反應的基團數量,使條帶變淺或不顯色。
2.8.1 FTIR圖譜分析
FTIR是檢測生物聚合物之間相互作用并揭示分子微觀結構變化的有力工具,其圖譜中1 700~1 600 cm-1之間的吸收峰是由于肽鍵的C=O伸縮和N—H氫鍵振動而產生,即酰胺I帶。酰胺I帶的遷移與蛋白質和多肽的二級結構密切相關。超聲協同殼聚糖處理前后的蛋黃液FTIR圖譜并無明顯變化,但在酰胺帶I處,FEY的峰值位于1 631.00 cm-1處,而CHEY的峰值位于1 632.45 cm-1處,向高波數方向移動,而UCEY的峰值位于1 633.41 cm-1處,發生明顯藍移(圖9)。氫鍵的斷裂可以提高化學鍵的力常數,從而使其吸收頻率向高波數方向移動,因此推測超聲協同殼聚糖處理后蛋白質分子由于氫鍵和肽鍵的斷裂而展開,從而導致官能團結構改變。

圖9 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃蛋白FTIR圖譜的影響Fig. 9 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on FTIR spectrum of egg yolk proteins
2.8.2 酰胺I帶的反卷積和曲線擬合
為進一步了解超聲及殼聚糖處理對蛋黃蛋白質二級結構的影響,本研究測定了不同處理蛋黃蛋白質的二級結構。蛋白質改性后C=O數量以及C=O和N—H之間形成的氫鍵都會發生改變,通過FTIR可以進行分析鑒定。
由表1可以看出,CEY的無規卷曲相對含量比FEY增加7.19%,表明殼聚糖促使蛋黃蛋白質結構展開。UCEY的α-螺旋和無規卷曲相對含量分別比FEY增加了3.48%和5.26%,β-折疊和β-轉角的相對含量分別比FEY減少了2.56%和14.04%。表明超聲協同殼聚糖處理可以打開氫鍵結構,使β-結構含量減少,促進了蛋黃蛋白質從有序結構到無序結構的過渡。在加入殼聚糖并提高溫度后,蛋白質結構更加伸展、無序,一些蛋白質的二級結構被破壞。蛋白分子中螺旋、折疊和轉角結構的相對含量均發生了變化,它們之間在不同作用下相互轉化或者轉化為無規卷曲,蛋白質分子伸展。UCEY的蛋白質結構中出現了類似的變化,其蛋白質結構打開、疏水性提高,側面說明超聲及殼聚糖處理有利于蛋白質乳化性質的改善。

表1 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃蛋白質二級結構相對含量的影響Table 1 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on relative contents of secondary structures in egg yolk proteins%
為了進一步研究超聲協同殼聚糖處理對蛋白質三級結構的影響,本研究分析了蛋黃蛋白質的熒光光譜,其可以反映蛋白質構象變化以及是否形成復合物[29]。色氨酸殘基的發射峰位置在340 nm波長附近,且蛋白質的熒光峰與色氨酸殘基的熒光峰相同,即色氨酸殘基的熒光峰位置是反映蛋白質構象變化的敏感指標,色氨酸殘基的變化會導致熒光猝滅或峰位置偏移[30]。
從圖10可以看出,與FEY相比,經過處理的蛋黃熒光光譜峰值降低,說明經過處理的蛋黃中色氨酸殘基發生熒光猝滅,可能是由于超聲協同殼聚糖處理使得蛋白質空間結構伸展,疏水的色氨酸殘基從蛋白質內部轉移到外部,從而使蛋白質結構由緊實變得松散,三級結構發生變化。UCEY的蛋白質三級結構變化最大,其熒光強度峰值為2 373,表明超聲協同殼聚糖處理導致熒光猝滅,并使蛋黃中蛋白質由緊密狀態轉變為較為伸展的結構。
從波長的變化來看,FEY的最大峰值在336.3 nm波長處,與FEY相比,CHEY、UEY和UCEY的最大峰值位置都略有藍移,最大峰值分別在335.6、336.0 nm和334.8 nm波長處,其中UCEY的最大峰值位置移動了0.45%,蛋白質的熒光強度和最大峰值位置的改變反映了色氨酸殘基被氧化的程度及微環境的變化,藍移的發生表明了蛋白質表面有色氨酸殘基的暴露,但從圖10中可以看出,藍移現象并不明顯,可以認為超聲協同殼聚糖處理只改變了蛋白質的支鏈結構,對其空間結構影響不大。
由圖11可知,所有處理組的表面疏水指數均顯著高于未處理組(P<0.05)。其中FEY的表面疏水指數為8 110.80;UCEY的表面疏水指數最高,為9 157.33,與FEY相比提高了12.91%;其次是HEY和UEY,其表面疏水指數分別為9 030.47和9 004.10,但二者與UCEY之間沒有顯著性差異(P>0.05)。

圖11 超聲協同殼聚糖處理對蛋黃蛋白質疏水性的影響Fig. 11 Effect of ultrasound-assisted chitosan treatment on hydrophobicity of egg yolk proteins
蛋白質顆粒的表面疏水性對其在油-水界面的吸附性能(即蛋白的乳化性質)具有顯著影響,蛋白質表面疏水性與其乳化能力呈正相關[31]。根據Ma Zihong等[26]的研究,經過物理處理后蛋白質結構發生變化,導致肽鏈斷裂、蛋白質結構展開,暴露出脂肪族和芳香族氨基酸,其疏水表面暴露并與8-苯胺-1-萘磺酸(8-anilino-1-naphthalenesulfonic acid,ANS)結合,導致其表面疏水性增強。根據閆崢蓉等[32]的研究,表面疏水性越高的蛋白質乳化性質越好,蛋白質分子由于靜電排斥等作用力而解聚,使其分子質量降低,從而使蛋白質更好地附著在油-水界面上。超聲產生的空化效應、機械剪切和湍流形成局部瞬時的高壓和高溫,從而引起蛋白質的展開和擴展,使得原本包埋在蛋白質分子內部的疏水基團暴露,并與ANS發生相互作用。殼聚糖分子中疏水性的N-乙酰基-D-葡糖胺單元暴露于復合顆粒的表面,提高了復合顆粒的疏水性。疏水性的增加會導致液滴表面形成界面膜,使蛋白質更多地吸附在乳液界面,減緩油滴的凝結速度,從而使其乳化性質得到改善。
本研究結果表明,與未處理組相比,超聲及添加殼聚糖處理使蛋黃液乳化性質提高了29.51%,乳液粒徑減小了50.01%,揭示了超聲協同殼聚糖處理后蛋黃液乳化性質與蛋白質結構之間的關系,證明超聲協同殼聚糖處理是一種能夠有效提高蛋黃液乳化性質的方法。經過超聲協同殼聚糖處理后,蛋黃乳液液滴更加細小,液滴形狀更加均勻,蛋黃蛋白質在油-水界面分布的均一性增加,超聲協同殼聚糖處理后蛋黃蛋白質界面張力隨時間延長的變化曲線更快達到平衡,說明其吸附速率提高,蛋黃液達到平衡的時間縮短。CEY、UEY與UCEY的EAI分別比FEY提高了1.18%、18.49%和29.51%;三者的界面張力有相似的變化趨勢,且平滑程度相當,但UCEY的初始界面張力更低;CEY與UEY流變學性質變化趨勢相同,但UCEY的流變學性質改善更加明顯。說明超聲與殼聚糖處理對界面張力的降低存在一定程度的協同作用。超聲協同殼聚糖處理后蛋黃蛋白質結構展開,蛋黃凍干顆粒體積的均一性提高、蛋黃蛋白質的聚集程度降低。FTIR分析結果表明,與FEY相比,蛋黃蛋白質無規卷曲結構相對含量增加了5.26%,蛋白質更加無序分散,而無規卷曲結構有助于改善蛋白質的乳化性質。熒光光譜分析結果顯示超聲協同殼聚糖處理后蛋黃蛋白質中色氨酸殘基更加傾向于暴露在外部,經超聲協同殼聚糖處理的蛋黃蛋白質表面疏水指數最高(9 157.33),其三級結構由緊密狀態轉變為較為伸展的結構,與SDS-PAGE的結果相印證。較為松散的蛋白質結構有利于蛋黃液乳化性質的改善,超聲協同殼聚糖處理可以打開蛋白質結構。本研究中經超聲協同殼聚糖處理獲得的UCEY顯示出良好的作為高乳化性質原料的應用潛力,未來可將其應用于焙烤蛋液等專用蛋液中。