999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

冬季油樟產黃酮內生真菌的分離鑒定及其抗氧化和揮發性成分分析

2024-01-01 00:00:00劉雯雯劉曉鳳沈愛軍馮瑞章胡連清陳露魏琴周萬海
中國抗生素雜志 2024年6期

摘要:目的 深入挖掘油樟內生真菌資源,從冬季油樟根、莖、葉中篩選產黃酮菌株并對其抗氧化和揮發性成分進行分析。方法 采用組織培養、形態學觀察和分子生物學方法分離鑒定油樟內生真菌,借助顯色反應和NaNO2-Al(NO3)3比色法篩選具有產黃酮能力菌株,利用清除自由基初步評估產黃酮最優菌株的抗氧化活性,并通過氣相色譜-質譜法(GC-MS)分析菌株的發酵產物成分。結果 共獲得61株內生真菌,隸屬于3門23科29屬,子囊菌門(Ascomycota)為優勢門,肉座菌科(Hypocreaceae)和小叢殼科(Glomerellaceae)為優勢科,木霉屬(Trichoderma)和炭疽菌屬(Colletotrichum)為優勢屬。不同組織間內生真菌種類和數量存在明顯差異,其中莖部菌株多樣性、均勻度和豐富度指數均最高,且莖部和葉部相似性系數最高。通過產黃酮篩選到WG5(Trichoderma)和WG15(青霉屬,Penicilium)2株內生真菌,其中WG15總黃酮含量較高且表現出較好的抗氧化活性,DPPH和ABTS自由基清除率的IC50分別為0.52和0.49 mg/L。揮發性物質分析顯示,2株菌株代謝產物存在共性和差異,主要包括酯類、酸類、醇類和酚類等物質,共有苯乙醇、2,6-二叔丁基苯酚和棕櫚酸成分。結論 WG15具有較好的產黃酮和抗氧化能力,可用于后續其他功能的開發,為內生真菌次生代謝產物的活性研究提供了菌種資源。

關鍵詞:油樟;內生真菌;物種鑒定;功能探索;多樣性

中圖分類號:R931 文獻標志碼:A

Isolation and identification of flavonoid-producing endophytic fungi with antioxidant and volatile components from Cinnamomum longepaniculatum in winter

Liu Wenwen1,2, Liu Xiaofeng3, Shen Aijun2, Feng Ruizhang1, Hu Lianqing2, Chen Lu2 , Wei Qin1, and Zhou Wanhai1,2

(1 Sichuan Oil Cinnamon Engineering Technology Research Center, Yibin University, Yibin 644007; 2 Faculty of Agriculture, Forestry and Food Engineering, Yibin University, Yibin 644007; 3 College of Health Industry, Sichuan Tianyi College, Deyang 618000)

Abstract Objective To explore the endophytic fungi resources of C. longepaniculatum, flavonoids-producing strains were screened from the roots, stems and leaves of C. longepaniculatum in winter, and their antioxidant and volatile components were analyzed. Methods The endophytic fungi of C. longepaniculatum were isolated and identified by tissue culture, morphological observation and molecular biology. The strains with flavonoid production capacity were screened by color reaction and the NaNO2-Al(NO3)3 colorimetric method. The antioxidant activity of the strains with optimal flavonoid production was preliminary evaluated by scavenging free radicals, and the fermentation products were analyzed by GC-MS. Results " "A total of 61 strains of endophytic fungi were obtained, belonging to 3 phyla, 23 families and 29 genera. Ascomycota was the dominant phyla; Hypocreaceae and Glomerellaceae were the dominant families. Trichoderma and Colletotrichum were the dominant genera. There were significant differences in the number and species of endophytic fungi among different tissues, among which the diversity, evenness and richness indices of stem strains were the highest and the similarity coefficients of stem and leaf strains were the highest. Two endophytic fungi strains, WG5 (Trichoderma) and WG15 (Penicilium), were screened by flavonoids production, and the total flavonoids content of WG15 was high and showed good antioxidant activity. The IC50 of DPPH and ABTS free radical scavenging were 0.52 and 0.49 mg/L, respectively. Volatile substances analysis showed that the metabolites of the two strains had similarities and differences, mainly including esters, acids, alcohols and phenols, including phenylethyl alcohol, 2,6-di-tert-butylphenol and palmitic acid. Conclusion WG15 has good flavonoid-producing and antioxidant capacity, which can be used for further development of other functions and provides a strain resource for the study of the activity of secondary metabolites in endophytic fungi.

Key words Cinnamomum longepaniculatum; Endophytic fungi; Functional verification; Functional exploration; Diversity

內生真菌廣泛存在于健康植物組織細胞及細胞間隙中,與寄主植物有著密切的共生關系[1]。由于不同生境孕育了不同的真菌類群,內生真菌多樣性顯示出宿主和組織特異性。研究表明,內生真菌能產生生物堿、多糖、黃酮和酚類等活性物質,被認為是生物活性代謝物的豐富來源[2-3],各類次生代謝物在各項報道中證明具有抗氧化、抑菌、殺蟲和調節植物生長等功能,可用于醫藥、農業、食品等領域,具有廣闊的應用前景[4]。

油樟[Cinnamomum longepaniculatum (Gamble) N. Chao]是我國特有的樟科樟屬常綠喬木,已被列為國家Ⅱ級重點保護野生植物,宜賓為該植物的主產地,占全國油樟總資源的75%以上。現代天然產物化學及藥理學研究顯示,油樟各組織含揮發油、有機酸、黃酮、多糖和內酯等結構類型的次生代謝產物,具有抗菌、抗氧化和抗癌等活性[5]。現關于油樟內生真菌的報道僅有春季油樟不同組織內生真菌多樣性分析[6-7]。

黃酮類化合物是植物的次級代謝產物,具有抗菌、抗氧化和抗炎等重要藥理活性,羥基功能團分子結構賦予了黃酮類物質良好的抗氧化作用[8]。傳統黃酮類來源已無法滿足現有需求,以微生物為宿主合成代謝黃酮類產物已成為熱門趨勢,真菌能利用黃酮作為底物,經生物轉化獲得高活性生物功能衍生物[9],現已揭示黃酮類在真菌中的生物合成途徑[10-11],且有報道表明內生真菌具有富產黃酮類化合物的功能,部分此功能菌株已被分離純化,如從Siraitia grosvenorii內生真菌的發酵液及菌絲體[12]、海南東寨港紅樹林植物分離獲得的Penicillium sp. H1N1內生真菌[13]、北桑寄生分離純化的8株Alternaria tenuissima、Dothiorella gregaria、Penicillium aethiopicum、Nothophoma quercina和Hypoxylon perforatum內生真菌[14]中均提取到黃酮類代謝產物,Tang等[15]利用比色法首次從野生金龍膽草內生真菌中篩選到11株產黃酮菌株,其中CBL50總黃酮含量達到(78.2±4.12) mg/L。因植物提取黃酮受環境和時空特異性的限制,成本高且耗時長,因此,產黃酮內生真菌是尋找新型抗氧化劑的重要資源。為充分利用地方經濟作物油樟,本研究嘗試分離純化冬季油樟不同組織中內生真菌,并篩選產黃酮菌株,測定其抗氧化能力和揮發性成分,為挖掘油樟功能真菌和開發活性因子奠定基礎,豐富油樟微生物資源庫。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

12月上旬于四川省宜賓市高縣月江森林經營所油樟母本園(28°47'77\"N,104°59'76\"E)采集40齡健康油樟的根、莖、葉組織,裝于無菌取樣袋中,4 ℃冰盒帶回實驗室作為試驗材料。PDA培養基、麥芽提取物瓊脂培養基、改良馬丁瓊脂培養基、卵磷脂吐溫80營養瓊脂培養基、玉米粉瓊脂培養基用于內生真菌的分離。

1.2 方法

1.2.1 內生真菌的分離純化

自來水沖洗各組織表面2 h,無菌水沖洗3次,95%乙醇漂洗1 min,無菌水沖洗1次,4%(有效氯含量)次氯酸鈉漂洗4 min,最后用95%乙醇漂洗1 min,無菌水沖洗5次,每次30 s。取最后一次清洗用的無菌水20 μL涂布于分離培養基上,檢測消毒是否徹底。表面消毒處理后的組織置于無菌濾紙上吸干水分,利用無菌剪刀將根和莖裁剪成1 cm小段,葉剪成0.5 cm×0.5 cm小片,分別接種到不同分離培養基上,各培養基3個重復,28 ℃恒溫培養。待培養基上單菌落長出后,在對應新鮮平板上劃線純化至菌落形態單一,依次編號并斜面保種,置于4 ℃冰箱中保存。

1.2.2 內生真菌的ITS鑒定及多樣性分析

按照真菌組DNA提取試劑盒說明書提取分離菌株DNA,采用通用引物擴增ITS序列(ITS1:5'-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3'、ITS4:5' TCCTCCGCTTATTGATATGC-3')(引物由上海生工生物工程有限公司合成)對提取的內生真菌DNA進行PCR擴增。50 μL PCR擴增體系:21 μL ddH2O,25 μL 2×Taq PCR Master Mix,上下游引物各1 μL,DNA模板2 μL。PCR擴增程序:94 ℃預變性10 min,94 ℃變性30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸45 s,循環數為35次,72 ℃終延伸10 min,4 ℃停止反應。PCR產物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,將合格樣本送至上海生工生物工程公司測序,所得序列信息提交至NCBI網站BLAST程序進行序列同源性比對,確定分離菌株分類地位,構建進化樹,設定bootstrap為1 000。

評價內生真菌多樣性選用多樣性指數H’、均勻度指數E’、優勢度指數C、豐富度指數D,計算公式為:多樣性指數H’=-PiInPi;均勻度指數E’=H’/lnS;優勢度C=(Ni/N)2;豐富度指數D=(S-1)/lnN。式中:N為所有屬數的個體數,Ni為第i個屬數的個體數;Pi=Ni/N;S為屬數。采用相似性系數SC描述2個組織間真菌物種組成的相似程度,計算公式為:SC=2j/(a+b),式中:j表示2個組織共同的真菌屬數,a和b分別表示不同組織的真菌屬數。

1.2.3 供試樣品的制備

接種適量菌餅至PDB培養基中,28 ℃ 110 r/min培養3~5 d,在無菌操作臺中利用無菌紗布過濾分離菌絲和發酵液。發酵液于旋轉蒸發儀中濃縮,然后用乙酸乙酯等體積萃取,再將萃取液減壓蒸餾濃縮成干膏,甲醇復溶,配置成不同質量濃度樣品用于后續研究。

1.2.4 產黃酮類內生真菌篩選

參考鄭紫云等[16]顯色反應初步篩選產黃酮菌株,包括NaOH反應、乙酸鎂甲醇反應、FeCl3反應和鹽酸-鎂粉反應,并利用NaNO2-Al(NO3)3比色法測定總黃酮含量[15]。

1.2.5 抗氧化活性測定

配制0、0.25、0.50、0.75、1.00、1.25、1.50和2.00 mg/mL的樣品液用于抗氧化活性的測定,抗壞血酸(VC)作為陽性對照。ABTS自由基清除活性和DPPH自由基清除活性均采用蘇州科銘有限公司總抗氧化能力試劑盒測試,參照說明書操作。各樣品重復3次。總抗氧化能力計算公式為:總抗氧化能力(ABTS/DPPH)=(A空白-A測定)/A空白×100%,其中A表示各組的吸光度。

1.2.6 發酵液揮發性成分分析

采用氣相色譜-質譜聯用儀分析菌株發酵液揮發性成分,其中氣相色譜采用毛細管氣相色譜柱HP-5(30 m×0.25 μm),載氣為高純N2,流量26.56 mL/min,

程序升溫,80 ℃ 3 min→5 ℃/min升溫至90 ℃ 2 min

→升溫至170 ℃ 2 min→升溫至220 ℃ 2 min。進樣口溫度240 ℃,進樣量1 μL,不分流進樣,尾吹流量25 mL/min。質譜采用電子轟擊離子源(EI)方式,離子源溫度為200 ℃,離子化電壓70 eV,掃描范圍50~650 m/z。

2 結果與分析

2.1 內生真菌分離純化及分子生物學鑒定

從油樟根、莖和葉組織中共分離得到內生真菌61株,通過與NCBI數據庫比對并構建發育樹(表1和圖1),可知菌株隸屬于3門5綱11目23科29屬,菌屬包括曲霉屬(Aspergillus)、青霉屬(Penicilium)、籃狀菌屬(Talaromyces)、木霉屬(Trichoderma)、Gliocladiopsis、鐮孢屬(Fusarium)、炭疽菌屬(Colletotrichum)、Plectosphaerella、小貝氏孢屬(Beltraniella)、擬盤多毛孢屬(Pestalotiopsis)、Leptosillia、黑孢霉屬(Nigrospora)、間座殼屬(Diaporthe)、Pseudoplagiostoma、Thozetella、鏈格孢屬(Alternaria)、Microsphaeropsis、Curvularia、Ophiosphaerella、Didymocyrtis、Crassiparies、葡萄座腔菌屬(Botryosphaeria)、新殼梭孢屬(Neofusicoccum)、橫梗霉屬(Lichtheimia)、瓶霉屬(Saksenaea)、Phanerochaete、Bjerkandera、栓菌屬(Trametes)、蟻巢傘屬(Termitomyces)。優勢門為子囊菌門(Ascomycota),其分離頻率RF為88.52%;優勢科為肉座菌科(Hypocreaceae,RF 13.11%)和小叢殼科(Glomerellaceae,RF 13.11%);優勢屬為木霉屬和炭疽菌屬,RF亦為13.11%。

2.2 不同組織內生真菌群落組成和多樣性分析

通過圖2可知,不同組織內生真菌種類和數量間存在明顯差異。油樟根部共獲得內生真菌21株,分屬于2門3綱6目9科10屬,RF超過10%的菌科包括肉座菌科(38.10%)、曲霉科(Aspergillaceae,14.29%)、叢赤殼科(Nectriaceae,14.29%),RF超過10%的菌屬包括木霉屬(38.10%)和Gliocladiopsis(14.29%);從莖部共獲得內生真菌22株,分屬于2門3綱7目11科15屬,RF超過10%的菌科有間座殼科(Diaporthaceae,18.18%)、叢赤殼科(13.64%)、Pleosporineae(13.64%),RF超過10%的菌屬包括間座殼屬(18.18%)和鐮孢屬(13.64%)。從葉部共獲得內生真菌18株,分屬于2門3綱5目7科7屬,RF超過10%的菌科包括小叢殼科(38.89%)、梨孢假殼科(Apiosporaceae,16.67%)、Pleosporineae(16.67%)、Sporocadaceae(11.11%),RF超過10%的菌屬包括炭疽菌屬(38.89%)、黑孢霉屬(16.67%)、鏈格孢屬(16.67%)和擬盤多毛孢屬(11.11%)。通過圖3可知,根、莖、葉特有菌科分別為7、8和4個,Sporocadaceae和Pleosporineae為莖葉共有菌科,叢赤殼科為根和莖共有菌科,小叢殼科是根和葉共有菌科;根、莖、葉特有菌屬分別為9、13和4個,炭疽菌屬為根和葉共有菌屬,鏈格孢屬和擬盤多毛孢屬為莖和葉共有菌屬。3個組織間未見共有菌屬和菌科。表2顯示,油樟不同組織間內生真菌多樣性具有差異,其中莖部內生真菌多樣性、均勻度及豐富度指數分別為2.56、0.94和4.85,均高于其他部位。葉部內生真菌優勢度最高,為0.23。相似性系數表明,莖部和葉部相似性系數最高,為0.18,與根部內生菌不存在相似度(表3)。

2.3 產黃酮內生真菌的篩選

根據顯色反應(表4)篩選出變化明顯的2株產黃酮類化合物內生真菌WG5和WG15。采用NaNO2-Al(NO3)3比色法建立蘆丁吸光度標準曲線(Y=0.008 2X+0.0075,R2=0.9923),以此為基礎測定WG5和WG15菌株發酵液中總黃酮含量。結果表明,WG15總黃酮含量為(9.93±0.35) mg/L,WG5總黃酮含量相對較低,為(1.51±0.19) mg/L。

WG5菌落在培養基上生長迅速,質地疏松,菌絲呈白色且密集。菌絲有明顯節狀結構,內含橫隔膜,有分枝,菌絲側邊有囊狀突起,孢子呈卵形或橢圓形(圖4)。WG15菌落中心呈綠色、粉末狀,外周顏色呈白色,菌絲內含橫隔膜,有分枝,孢子呈橢圓、內壁光滑(圖5)。

2.4 菌株粗提物抗氧化活性

通過圖6顯示,WG5和WG15發酵液在0.25~2.0 mg/mL濃度范圍內具有清除DPPH和ABTS自由基的能力,且此活性與濃度呈正相關。在最高濃度2.0 mg/mL時,2個菌株DPPH自由基清除率分別為49.22%±2.21%和75.80%±3.59%,其IC50分別為2.28和0.52 mg/mL。同時,在最高濃度2.0 mg/mL下,2個菌株ABTS自由基清除率分別為70.94%±3.08%和84.31%±1.97%,其IC50分別為0.91和0.49 mg/mL。

2.5 菌株發酵液揮發性成分分析

通過質譜數據譜庫檢索,鑒定出WG5發酵液中共13種成分,C2~C7化合物相對含量為23.08%

(3種),C8化合物相對含量為15.38%(2種),C9~C15化合物相對含量為46.15%(6種),揮發性成分主要是醇類、醛類、酮類、酚類等,其中醇類數量最多。鑒定出WG15菌株發酵液共有17種成分,C2~C7化合物相對含量為41.18%(7種),C8化合物相對含量為11.76%(2種),C9~C15化合物相對含量為35.29%(6種),揮發性成分主要是酯類、酸類、醇類和酚類等,其中酯類數量最多。2個菌株共有成分為苯乙醇、2,6-二叔丁基苯酚和棕櫚酸。

3 討論與結論

分析植物內生真菌群落結構多樣性并篩選功能性菌株,為植物可持續開發和微生物資源利用奠定基礎。相對高通量測序技術,可培養法雖不能完整揭示內部微生物群落組成,但獲得的純菌株可用于微生物生理和代謝研究,是闡明菌株功能所必需。本研究利用組織培養、形態學觀察和分子生物學法從油樟不同組織中分離到3門29屬61株內生真菌。前期課題組借助高通量技術發現油樟根、莖和葉部優勢菌屬分別為unclassified fungi、Passalora和unclassified Ascomycota,未知菌屬占比較大,同時從春季油樟分離獲得28屬62株內生真菌,如鏈格孢屬、附球屬(Epicoccum)和間座殼屬等[6-7],上述研究結果均與本試驗所分離鑒定的菌屬類型和數量存在差異,可知,不同季節和組織中內生真菌群落多樣性存在共性和特異性。油樟不同組織多樣性指數和相似性系數分析顯示,莖部內生真菌多樣性和豐富度指數均最高,地上部分莖和葉間群落組成最接近,與地下組織根部組成差異較大,可能由于莖部充足的養分促使更多內生真菌侵染定殖,但與春季油樟根部內生真菌種群多樣性最豐富的報道不一致[7],同時不同組織化學成分、通氣狀況、空間大小等微環境的差異,直接影響宿主內生真菌群落組成[17],其他研究也證實根部內生菌資源主要與土壤菌群相似,葉和莖部內生真菌與外界空氣菌群相關,小黃花茶和云南廣南蒜頭果不同組織內生真菌研究結果也類似[18-19]。本試驗分離頻率較高的木霉屬、炭疽菌屬和鏈格孢屬等表現出獨特的促生、生物防治和生物施肥等功能,如炭疽菌屬能產生甾醇、萜烯、吡喃酮等至少109種次生代謝產物,廣泛應用于抗菌、病蟲害防治等領域[20-21],對于61株內生真菌在宿主中發揮何種生態學作用還需深入探討。

本試驗利用顯色反應和NaNO2-Al(NO3)3比色法[15]獲得2株高產黃酮內生真菌,分別屬于木霉屬和青霉屬。其中木霉屬具有產生多種生物活性次生代謝物的巨大潛力,此代謝物是新型除草劑和抗生素的重要來源,可促進植物根系生長、磷元素吸收[22-23];青霉素也是天然產物的重要來源[24],因此,通過產黃酮功能篩選獲得的內生真菌具有較高研究和應用價值, WG15總黃酮產量最高,為(9.93±0.35) mg/L。寇曉琳等[25]從青錢柳中67株內生真菌中確定4株具有產黃酮物質功能,其中3株鑒定為鏈格孢屬,CY12屬于正青霉屬(Eupenicillium),PZ06產黃酮量最高,為3.61 mg/L,CP06最低為0.57 mg/L。鄭紫云等[16]從北桑寄生中篩選出3株產黃酮內生真菌,分別鑒定為Botryosphaeria sp.(ZC020)、Phoma sp. (ZZ105)和Nemania sp.(ZS042),ZC020和ZS042總黃酮含量較高,分別為(44.58±0.72) mg/L和(31.98±0.18) mg/L。Tang等[15]利用NaNO2-Al(NO3)3比色法從中藥材金龍膽草中獲得高產黃酮菌株CBL11、CBL12和CBL9,產量分別為(50.78±2.4)、(10.64±1.01)和(10.17±0.11) mg/L。因此,WG15菌株黃酮含量居中等水平,后續還需利用單因素和正交試驗優化培養條件,以此提高菌株黃酮產量。隨著黃酮類化合物藥用價值的提高,尋找黃酮產量更高、抗氧化活性強的內生真菌勢在必行。

適量的自由基是維持正常生命活動所必需,但自由基過多會引發氧化應激而加速疾病進程,如心腦血管疾病、糖尿病、阿爾茨海默癥和腫瘤等[26],黃酮苯環上OH-易失去氫電子,通過減緩或阻斷脂質過氧化發揮抗氧化功能,具有清除自由基的作用[27]。微生物已成為替代植物篩選天然抗氧化活性劑的巨大寶庫[28]。Uma Anitha等[29]對飛揚草內生真菌Achaetomium sp.抗氧化能力進行了分析,顯示總黃酮的DPPH清除率為(66.890% ±1.385%)~(87.340%±0.289)%;Tang等[15]分離的CBL12內生真菌對DPPH和ABTS自由基的清除率分別為94.56%±0.29%和99.88%±0.27%,IC50值僅為(0.11±0.01)和(0.20±0.01) mg/mL;王蘭英等[30]從蜂巢珊瑚中獲得1株高抗氧化活性S-1-5內生真菌,其DPPH和ABTS自由基清除率分別為70.60%和67.18%。喬自鵬等[31]研究顯示,勝紅薊莖部1株內生真菌的清除DPPH自由基率可達87.23%,IC50為242.13 μg/mL;清除ABTS自由基率為94.72%,其IC50為58.38 μg/mL;鄭紫云等[16]篩選的3株北桑寄內生真菌中ZS042的DPPH和ABTS自由基清除率均最高,分別為57.01%和88.17%。本試驗WG15菌株DPPH和ABTS自由基清除率分別為75.80%和84.31%,IC50分別為0.52和0.49 mg/mL,可知,WG15菌株不僅具有較高的總黃酮含量,且顯示出良好的抗氧化活性,現有研究結果表明,黃酮類化合物能抑制細菌毒力因子的表達,表現出顯著抗菌和抗炎活性[32],后續還將對功能菌株有效活性的組分展開深入探討。

微生物能產生成分復雜的揮發性有機混合物,通常利用頂空固相微萃取技術結合氣質聯用法鑒定真菌產揮發性有機物的種類和相對含量,耗時短、靈敏度高且精確度好。現已證實該成分共同作用表現出抑制病原菌、促進植物生長等功能。很多研究者已對真菌發酵混合物中單物質成分作用展開了研究[33],確定異山梨醇、甲基叔丁基醚、二甲基二硫醚、2-壬酮、二乙基己醇和苯甲醛等揮發性有機物具有抑菌活性,2,3-丁二醇和3-羥基-2-丁酮顯示促生和誘導植物抗病效應。Malmierca等[34]分析了番茄內生真菌哈茨木霉(Trichoderma harzianum)的發酵液揮發性物質,可知含有抑制灰葡萄孢病原菌的二萜類成分。Khruengsai等[35]從非洲哈茨木霉(Trichoderma afroharzianum)的發酵液中鑒定到苯乙醇物質,經證實該菌株可抑制鐮刀病原菌的生長。Mookherjee等[36]從茄子果實中篩選得到1株產果香味的白地霉(Geotrichum candidum),苯乙醇、乙酸異戊酯和萘是此真菌主要的抗菌活性物質。本研究2株內生真菌揮發性成分與上述揮發性物質有相同之處,均產生苯乙醇、苯甲醛等成分,但2株菌株揮發性成分差異亦大,僅共有苯乙醇、2,6-二叔丁基苯酚和棕櫚酸。有研究表明,木霉屬的揮發性物質中常存在具有“椰子香味”的吡喃酮-6-戊基-2H-吡喃-2-酮[37],但本研究的WG15木霉屬揮發成分中并未檢測到該物質,可能是檢測條件的改變或因真菌生長環境的不同引起,后續需利用純品化合物驗證菌株發酵液中揮發性有機物中單物質活性功能。

參 考 文 獻

Liu J, Liu G. Analysis of secondary metabolites from plant endophytic fungi[J]. Methods Mol Biol, 2018, 1848: 25-38.

Wang Z, Wang L, Pan Y, et al. Research advances on endophytic fungi and their bioactive metabolites[J]. Bioproc Biosyst Eng, 2023, 46(2): 165-170.

Zhou Z Y, Liu X, Cui J L, et al. Endophytic fungi and their bioactive secondary metabolites in medicinal leguminosae plants: Nearly untapped medical resources[J]. FEMS Microbiol Let, 2022, 369(1): 1-14.

Manganyi M C, Ateba C N. Untapped potentials of endophytic fungi: A review of novel bioactive compounds with biological applications[J]. Microorganisms, 2020, 8(12): 1934.

Zhao X, Yan Y, Zhou W H, et al. Transcriptome and metabolome reveal the accumulation of secondary metabolites in different varieties of Cinnamomum longepaniculatum[J]. BMC Plant Biol, 2022, 22(1): 243.

Zhou W H, Wei Q, Feng R Z, et al. Diversity and spatial distribution of endophytic fungi in Cinnamomum longepaniculatum of Yibin, China[J]. Arch Microbiol, 2021, 203(6): 3361-3372.

周萬海, 劉雯雯, 魏琴, 等. 春季油樟可培養內生真菌多樣性及產黃酮功能初篩[J]. 熱帶作物學報, 2022, 43(10): 2149-2159.

Lou H H, Hu L F, Lu H Y, et al. Metabolic engineering of microbial cell factories for biosynthesis of flavonoids: A review[J]. Molecules, 2021, 26(15): 4522.

Wang J F, Liu S S, Song Z Q, et al. Naturally occurring flavonoids and isoflavonoids and their microbial transformation: A review[J]. Molecules, 2020, 25(21): 5112.

Zhang H, Li Z, Zhou S, et al. A fungal NRPS-PKS enzyme catalyses the formation of the flavonoid naringenin[J]. Nat Commun, 2022, 13(1): 6361.

Zhang W, Zhang X, Feng D D, et al. Discovery of a unique flavonoid biosynthesis mechanism in fungi by genome mining[J]. Angew Chem Int Ed , 2023, 62(12): e202215529.

Fan C Q, Zhang C Z, Long C M, et al. Separation of endophytic fungi of Siraitia grosvenorii and antioxidant activity of fermentation products[J]. China Brew, 2017, 36(12): 46-50.

Ling H P, Guo S Y, Lai B L, et al. Flavonoids metabolites of mangrove endophytic Penicillium sp. from Dongzhai Harbor[J]. Acta Scientiarum Naturalium Universitatis Sunyatseni, 2018, 57(5): 123-126.

Zheng Z Y, Chai S T, Chen J, et al. Isolation and identification of flavonoid-producing endophytic fungi from Loranthus tanakae Franch. amp; Sav that exhibit antioxidant and antibacterial activities[J]. J App Microbiol, 2022, 133(3): 1892-1904.

Tang Z Z, Wang Y S, Yang J Y, et al. Isolation and identification of flavonoid-producing endophytic fungi from medicinal plant Conyza blinii H.Lév that exhibit higher antioxidant and antibacterial activities[J]. Peer J, 2020, 8: e8978.

鄭紫云, 柴書彤, 陳婕, 等. 北桑寄生產黃酮內生菌的分離鑒定及其抗氧化和抑菌活性評價[J]. 微生物學通報, 2022, 49(9): 3798-3812.

Vesterlund S, Helander M, Faeth S H, et al. Environmental conditions and host plant origin override endophyte effects on invertebrate communities[J]. Fungal Divers, 2011, 47(1): 109-118.

易航, 何靜, 楊希, 等. 小黃花茶內生真菌的多樣性分析及抑菌活性初篩[J/OL]. 廣西植物: 1-16[2023-08-16]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/45.1134.q.20230628.0914.002.html.

雷小鈴, 潘悅, 張麗麗, 等. 云南廣南天然蒜頭果可培養內生及根際真菌多樣性分析[J]. 西南林業大學學報(自然科學), 2022, 42(5): 87-95.

Deng Z J, Zhang R D, Shi Y, et al. Characterization of Cd-, Pb-, Zn-resistant endophytic Lasiodiplodia sp. MXSP31 from metal accumulating Portulaca oleracea and its potential in promoting the growth of rape in metal-contaminated soils[J]. Environ Sci Pollut R., 2014, 21(3), 2346-2357.

Kim J W, Shim S H. The fungus Colletotrichum as a source for bioactive secondary metabolites[J]. Arch Pharm Res, 2019, 42(9): 735-753.

Guo R, Li G, Zhang Z, et al. Structures and biological activities of secondary metabolites from Trichoderma harzianum[J]. Mar Drugs, 2022, 20(11): 701.

胡嫻, 何珊, 史紅安, 等. 木霉菌應用研究進展[J]. 湖北工程學院學報, 2019, 39(6): 50-55.

Zhang X P, Yin Q Z, Li X Y, et al. Structures and bioactivities of secondary metabolites from Penicillium genus since 2010[J]. Fitoterapia, 2022, 163: 105349.

寇曉琳, 謝楠, 吳彩娥, 等. 青錢柳產黃酮類物質真菌的分離與鑒定[J]. 南京林業大學學報(自然科學版), 2020, 44(2): 26-34.

Munteanu I G, Apetrei C. Analytical methods used in determining antioxidant activity: A review[J]. Int J Mol Sci, 2021, 22(7): 3380.

孟歌, 崔寶凱, 李春道, 等. 藥用真菌靈芝液體培養過程中的抗氧化活性研究[J]. 菌物學報, 2018, 37 (4): 486-501.

Chandra P, Sharma R K, Arora D S. Antioxidant compounds from microbial sources: A review[J]. Food Res Int, 2020, 129: 108849.

Uma Anitha K P G, Mythili S. Antioxidant and hepatoprotective potentials of novel endophytic fungus Achaetomium sp. from Euphorbia hirta[J]. Asian Pac J Trop Med, 2017, 10: 588-593.

王蘭英, 韓丹丹, 鄧恒, 等. 蜂巢珊瑚共生真菌的分離、鑒定及其抗氧化活性[J]. 西北農業學報, 2019, 28 (3): 459-465.

喬自鵬, 張君毅, 王明元, 等. 一株勝紅薊內生真菌Letendraea sp. WZ07的鑒定、培養條件與抗氧化活性[J]. 應用與環境生物學報, 2021, 27(2): 449-458.

Shen N, Wang T F, Gan Q, et al. Plant flavonoids: Classification, distribution, biosynthesis, and antioxidant activity[J]. Food Chem, 2022, 383: 132531.

周連玉, 鐘松, 朵紅梅, 等. 中華羊茅內生真菌Epichloe sp.揮發性物質的抑菌活性及成分分析[J]. 天然產物研究與開發, 2019, 31(9): 1543-1551.

Malmierca M G, Mccormick S P, Cardoza R E, et al. Production of trichodiene by Trichoderma harzianum alters the perception of this biocontrol strain by plants and antagonized fungi[J]. Environ Microbiol, 2015, 17(8): 2628-2646.

Khruengsai S, Pripdeevech P, D’souza P E, et al. Biofumigation activities of volatile compounds from two Trichoderma afroharzianum strains against Fusarium infections in fresh chilies[J]. J Sci Food Agri, 2021, 101(14): 5861-5871.

Mookherjee A, Bera P, Mitra A, et al. Characterization and synergistic effect of antifungal volatile organic compounds emitted by the Geotrichum candidum PF005, an endophytic fungus from the eggplant[J]. Microb Ecol, 2018, 75(3): 647-661.

尤佳琪, 吳明德, 李國慶. 木霉在植物病害生物防治中的應用及作用機制[J]. 中國生物防治學報, 2019, 35(6): 966-976.

主站蜘蛛池模板: 国产成人亚洲欧美激情| 亚洲精品国产综合99| 免费在线a视频| 欧美人与性动交a欧美精品| 一级毛片在线直接观看| 露脸国产精品自产在线播| 国产女人爽到高潮的免费视频 | 日本中文字幕久久网站| 亚洲人成人无码www| 最新国产在线| 无码内射中文字幕岛国片| 国产18在线| 日韩福利在线视频| 久久久久亚洲精品成人网| 日韩欧美中文| 亚洲国产精品无码久久一线| 午夜小视频在线| 亚洲自偷自拍另类小说| 欧美性天天| 99久久人妻精品免费二区| 国产成人一区免费观看| 精品欧美日韩国产日漫一区不卡| 天天综合天天综合| 色一情一乱一伦一区二区三区小说| 国产一区二区三区日韩精品| 欧美a级在线| www亚洲精品| 亚洲成aⅴ人在线观看| 欧美一级一级做性视频| 美女被狂躁www在线观看| 国产91无码福利在线| 九九久久精品免费观看| 一本久道久久综合多人| 夜夜操国产| 国产Av无码精品色午夜| 免费jjzz在在线播放国产| 亚洲欧美综合另类图片小说区| 婷婷综合色| 亚洲精品亚洲人成在线| 国产中文在线亚洲精品官网| 亚洲经典在线中文字幕| 日本高清成本人视频一区| 欧洲亚洲欧美国产日本高清| 国产成人高清精品免费软件| 久久久精品国产亚洲AV日韩| 日本久久免费| 国内精品免费| 亚洲熟女中文字幕男人总站 | 欧美在线视频不卡第一页| 麻豆精品久久久久久久99蜜桃| 五月婷婷精品| 精品视频福利| 国产精品部在线观看| 精品亚洲麻豆1区2区3区| 999在线免费视频| 亚洲av无码久久无遮挡| 国产在线精彩视频论坛| 中国精品自拍| 欧美亚洲日韩不卡在线在线观看| 狠狠色丁婷婷综合久久| 国产麻豆91网在线看| 国产AV毛片| 亚洲天堂精品视频| 国产精品久久久久久久伊一| 麻豆精品视频在线原创| 色婷婷综合在线| 精品无码国产一区二区三区AV| 欧美精品在线视频观看| 亚洲制服丝袜第一页| 久久精品丝袜高跟鞋| 免费国产无遮挡又黄又爽| 男女性午夜福利网站| 2022国产91精品久久久久久| 日本不卡在线| 国产精品蜜臀| 亚洲男人天堂网址| 国产99免费视频| 欧美h在线观看| 国产成人久久综合777777麻豆| 亚洲人成网站观看在线观看| 一级一级一片免费| 国产成人91精品|