冷等離子體處理對飼用苦瓜嫁接苗成活率的影響

摘 要： 為探討冷等離子體種子處理技術對飼用苦瓜嫁接苗成活率及后期長勢的影響，通過冷等離子體技術對飼用苦瓜砧穗組合進行處理，研究了冷等離子體種子處理對飼用苦瓜砧穗組合的傷面愈合、成活率、長勢、抗性和商品性等的影響，調查隔離層和愈傷組織形成的天數、處理后飼用苦瓜砧穗組合的成活率和生長量數據、飼用苦瓜嫁接苗定植成活率、飼用苦瓜抗病情況及飼用苦瓜果肉厚度的情況，并進行數據分析。結果表明，合適工藝處理砧穗組合可以縮短愈合時間1～2 d，接穗成活率顯著提高，接穗生長量提高1.17%～7.62%，果皮厚度增加1.75%～8.77%。該處理方式克服了現有飼用苦瓜嫁接苗傷口愈合慢、傷口二次感染等缺陷，定植后植株發病率降低、抗逆性增強及商品性提高，因此具有良好的使用和推廣價值。

關鍵詞：冷等離子體；飼用苦瓜；砧穗組合；嫁接苗；傷面愈合；成活率

中圖分類號：S129 文獻標識碼：A 文章編號：2095-1795（2024）06-0050-06

DOI：10.19998/j.cnki.2095-1795.2024.06.009

0 引言

苦瓜（Momordica charantia L.）為葫蘆科苦瓜屬植物，一年生攀援狀柔弱草本，隨著人們對飼用苦瓜食用價值和藥用價值的重新認識，苦瓜種植面積逐年擴大[1]。苦瓜葉和次品苦瓜是苦瓜種植過程中收獲的農業副產品，含有大量番苦瓜堿、氨基酸等豐富的營養成分，以天然農副產品苦瓜葉為主的復合飼料添加劑，能夠促進家畜的健康、快速生長，無毒副殘留，幫助家畜抵抗疾病。該添加劑提高了農副產品的價值，降低了成本，節約能源、減少對糧食的占用，苦瓜葉子和次品苦瓜的需求量十分巨大[2]。然而，多年種植難免重茬連作，土壤中病菌基數增多，病蟲害也愈加嚴重，尤其是枯萎病的發生逐年加重。飼用苦瓜枯萎病一般發病率10%～50%，有的田塊甚至達到100%，嚴重影響其產量和收益，致使農民種植積極性受挫，種植面積銳減，已嚴重地影響到飼用苦瓜產量的提高及飼用苦瓜種植面積的擴大[3]。嫁接栽培是克服土壤連作障礙和防控土傳病害最有效的措施之一，一般嫁接栽培死亡率1%～3%[4-5]。飼用苦瓜嫁接栽培技術在生產上的應用，從根本上克服了重茬連作障礙，能夠降低飼用苦瓜枯萎病發生率，有效地防止了枯萎病危害，增強飼用苦瓜的抗逆性；可以更有效地吸收土壤中的水和養分，防止植株早衰，延長采收期，增產20%～60%，減少農藥用量[6-7]。嫁接栽培技術為飼用苦瓜的規模化生產和可持續發展創造了條件，促進飼用苦瓜產業健康發展，在畜牧業生產上具有廣闊前景[8]。

目前，在飼用苦瓜生產上，一般選用靠接法、插接法和劈接法等嫁接方式，不論采取什么嫁接方式，目的都是把砧木和接穗完美地結合在一起，使兩個本不是一棵的植株苗，生長成為一顆完整的植株，需要接口處達到完全愈合，植株外觀完好，以及內部組織部分結合緊密，營養水分疏導暢通[9]。飼用苦瓜嫁接操作中無論采用何種方法，接穗和砧木嫁接后，都出現較大傷面，影響水分、養分的流通，而傷面愈合的速度直接影響了飼用苦瓜接穗的長勢和嫁接的成活率[10]。

冷等離子體是物質存在的第4 種狀態，即物質第4 態，是一種能量更高的物質聚集態。冷等離子體中含有大量的電子、離子、激發態的分子原子、自由基及紫外光等活性粒子，是一種分子、原子、自由基電子等活性粒子的混合體，使生物大分子產生能量的躍遷，即由基態躍遷到激發態，從而使種子產生積極的生物學效應，比一般情況下的化學反應所產生的活性粒子種類更多、活性更強，更易于和所接觸的材料表面發生反應，因此其被用來對材料表面進行改性處理及殺菌等[11]。等離子體的表面改性機理，可以促進傷口愈合，小鼠的模擬試驗得到了驗證[12-13]。廖非等[14] 運用大氣壓低溫等離子體（cold atmospheric plasma，CAP）對大鼠化膿性感染傷口愈合的影響進行研究，結果表明，適當照射劑量的CAP 可以增加化膿性感染性傷口組織中生長因子的含量，控制感染病灶，加速傷口愈合。冷等離子體中大量存在的活性粒子能夠作用于植物，引起某些性狀的改變 [15]，近年來，有冷等離子體在處理種子方面的應用，主要是通過冷等離子體處理種子獲得有益的生物學性狀[16]，等離子體處理對種子萌發[17]、產量[18]、抗性[19-20] 和育種[21-22] 等方面的研究也有涉及。將等離子體處理應用于嫁接技術較少，山東農業大學[23] 提供了一種采用冷等離子體優化番茄嫁接的方案，采用冷等離子體處理番茄接穗品種種子和砧木品種種子，通過對種子本身進行處理，提高了番茄嫁接苗成活率。

現有研究中通常采用冷等離子體處理種子[24] 及接穗[25]（穩定的母本枝條），作物的部位具有較厚的種皮或韌皮組織，可以承受促使作物性狀改變的輻射劑量。而有些作物需要采用幼苗或幼枝作為接穗進行嫁接，如飼用苦瓜嫁接，幼苗和嫩枝難以承受冷等離子體輻射，并且幼苗中水分、養分的運輸系統并不完善，面臨著更高的嫁接失敗率，無法直接應用上述冷等離子體處理手段。針對這種幼苗嫁接成活率低的技術缺陷，本研究首先將幼苗嫁接至砧木并用嫁接夾固定后，再通過冷等離子體處理，可以有效地提高幼苗耐受輻射的劑量，并且起到愈合時間縮短、成活率提高的效果[26]。將上述嫁接方式應用于飼用苦瓜幼苗的嫁接，不僅能夠有效地提高飼用苦瓜嫁接成活率，獲得的健康飼用苦瓜嫁接苗，還能夠提高飼用苦瓜果實皮厚及經濟價值。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

選擇南瓜作為砧木，飼用苦瓜作為接穗。本試驗供試砧木品種為山東省種子有限公司的自育品種藜木砧1 號，該品種莖稈柔韌、嫁接期長、成活率高、長勢健壯、耐低溫、低溫下坐瓜性好及抗病能力強，對苗期白粉病、結瓜期枯萎病有一定抗性，油亮一致性高達98% 以上，是飼用苦瓜工廠化育苗的理想品種。本研究供試接穗品種為山東省種子有限公司的自育品種麗都1 號，該品種生物產量高，含有生物堿、膽堿、類胡蘿卜素、蕓香甙（蘆丁）及氨基酸等豐富的營養成分，是制作苦瓜葉復合飼料添加劑的優秀品種。

1.2 處理設備

冷等離子體處理設備選用中國農業大學王德成教授實驗室搭建的試驗平臺。采用頻率10～50 kHz、電壓幅值10～30 kV 和時間5～30 s 的冷等離子體處理飼用苦瓜砧穗組合。通過高頻高壓電源介質阻擋放電的方式，在大氣壓開放式條件下產生冷等離子體，砧穗組合通過傳輸帶進入處理環境，實現冷等離子體處理。該設備易于操作、處理成本低、可靠性高。

1.3 試驗設計

1.3.1 嫁接

砧木選用營養缽育苗，接穗選用凈土育苗，謹防土傳病害感染。將用作接穗的飼用苦瓜種子置于55～60 °C 溫水中浸種15～25 min，浸種過程中不斷攪拌使種子充分吸水，然后用70%～80% 的百菌清或45%～55% 多菌靈浸種25～35 min；浸種后的種子清洗后在28～32 °C 條件下催芽，當種子60%～80% 露白后轉移至穴盤中播種[27]。用作砧木的南瓜種子不需處理，直接置于營養缽中育苗，砧木種子早于飼用苦瓜種子8～12 d 播種。當砧木子葉平展，長出第1 片真葉后進行嫁接得到砧穗組合。將砧穗組合置于冷等離子體環境中處理10～20 s，將冷等離子體處理后的砧穗組合進行溫室培育，獲得嫁接苗。嫁接后前3 d 需要遮光，溫度應保持在20～35 °C，最好是25～30 °C，有利于砧穗組合愈合和生長[28]。定植前5 d，將夜溫降到10 °C左右，進行低溫鍛煉，提高定植后的成活率及對外界低溫的適應能力。

1.3.2 砧穗處理方案

先將幼苗嫁接至砧木并用嫁接夾進行固定后，再通過冷等離子體處理，處理頻率14 kHz、處理電壓12 kV，處理時間5～30 s 設6 個處理，分別為A1 處理5 s、A2 處理10 s、A3 處理15 s、A4 處理20 s、A5 處理25 s 和A6 處理30 s。每個處理設3 次重復，每個重復100 株。設置對照處理（CK 處理），即未作任何處理的組合。

1.3.3 測定項目及方法

1.3.3.1 砧穗愈合過程組織學觀察

利用光學顯微鏡觀察不同砧穗組合不同時期的切片，對砧穗愈合切面組織、結構變化進行觀察比較，研究砧穗愈合階段的組織學和細胞學差異，比較處理間的傷面愈合速度[29]。

1.3.3.2 接穗成活率和生長量調查

將處理后的苦瓜砧穗進行接穗成活率和生長量的調查[30]。在嫁接后第5 天調查接穗成活率，在嫁接后第10 天調查接穗成活率。每個處理隨機選10 株調查接穗平均生長量。

1.3.3.3 田間定植成活率調查

嫁接苗全部定植大田，調查嫁接苗田間定植成活率。將嫁接苗進行煉苗，7～10 d 后定植，選擇晴朗無風的下午進行，選擇適合飼用苦瓜生長的土地，確保土壤肥沃且排水良好。清理土地，去除雜草和其他障礙物，定植前施足基肥，施優質腐蝕農家肥或商品有機肥15 000～22 500 kg/hm2、復合肥375 kg/hm2；再進行深翻整地， 整成畦寬150 cm、畦高25 cm、溝寬20 cm，單行定植。在土地上挖洞并逐個定植嫁接苗，要求株距1.5～1.8 m、行距1.5 m 及3 750～4 500 株/hm2，確保每株苗都被妥善安置、根系完整、避免損傷。定植后及時澆定根水，嫁接苗定植覆土高度應低于嫁接口1～2 cm，預防苦瓜接穗基部長不定根伸入土壤而感染土傳病害[31]。在3 周后通過檢查嫁接苗的生長狀態和數量，進行成活率調查評估，記錄存活和死亡幼苗的數量，確保土壤狀況、天氣條件、管理措施等一致，以減少成活率的影響因素。

1.3.3.4 病害調查

在植株生長過程中，定期巡視田間，觀察每種處理的嫁接苗是否出現白粉病、枯萎病和病毒病的癥狀。按照白粉病和枯萎病病害分級標準（NY/T 2354—2013《植物新品種特異性、一致性和穩定性測試指南——飼用苦瓜》），具體如表1 和表2 所示。記錄每種病害的發生狀況、嚴重程度和影響范圍，根據記錄的病害發生情況，分析不同處理組之間的差異和趨勢。收集數據，包括不同處理組的病害發生率、癥狀特征等，以便后續分析和比較。

1.3.3.5 果肉厚度調查

在結實盛期，針對每個處理組隨機選擇10 個有代表性的飼用苦瓜商品果進行調查。需要嚴格的樣本選擇和測量操作，確保選取的飼用苦瓜樣本代表性強，這些樣本代表整個處理組合的一般特性。使用游標卡尺，測量選取的飼用苦瓜商品果的果肉厚度。針對每個樣本記錄測量值，并計算出每個處理組的果肉厚度平均值。

1.4 計算公式和數據分析

1.4.1 成活率和生長量

成活率和生長量按式（1）和式（2）計算。

S成=（N成／N總）×100% （1）

S生=L1-L2 （2）

式中 S成——成活率，%

N成——成活數，株

N總——總株數，株

S生——生長量，cm

L1——第10 天接穗長度，cm

L2——嫁接時接穗長度，cm

1.4.2 數據分析

用Excel2016 軟件處理試驗數據并做統計分析，利用 SAS8.2 方差分析軟件對試驗數據進行單因素隨機區組試驗方差分析，圖和表中的不同小寫字母表示在5%水平上差異顯著。

2 結果與分析

2.1 飼用苦瓜嫁接苗傷面愈合情況

在嫁接后2～12 d 每天取砧穗組合嫁接愈合部位，用甲醛?乙酸?乙醇固定液（FAA 液）固定，酒精脫水，透蠟，再經過包埋、切片、烘干和染色的步驟，石蠟切片制作流程參照文獻[32]，利用光學顯微鏡對不同砧穗組合不同時期的切片進行砧穗愈合切面組織、結構變化的觀察。

嫁接后砧木和接穗結合部位的薄壁細胞大量分裂，形成愈傷組織。不斷增加的愈傷組織充滿砧木和接穗間的空隙，并使兩者的愈傷組織結合成一體[33]。在植物體的創傷部分，愈傷組織可幫助傷口愈合，嫁接中可由新生的維管組織使砧木和接穗愈合。由表3 可知，冷等離子體處理影響飼用苦瓜砧穗組合愈傷組織形成和隔離層消失。A4 處理愈傷組織最先形成，飼用苦瓜接穗和砧木嫁接而成的幼苗比CK 處理愈傷組織形成提前1 d，隔離層消失提前2 d，即處理時間20 s 時，對于砧穗組合的傷面愈合最佳。A3 處理的隔離層比CK處理提前1 d 消失，而A1、A2 和 A5 處理隔離層消失的天數不變，A6 處理比CK 處理延遲1 d 消失，A6 處理已經抑制了隔離層的消失，影響傷口愈合。處理時間影響砧穗組合的愈合速度，處理時間20 s 為促進砧穗組合愈合的最佳時間。

2.2 飼用苦瓜嫁接苗成活率和生長量情況

2.2.1 嫁接苗成活率和定植成活率

由表4 可知，冷等離子體處理影響接穗成活率，A4 處理飼用苦瓜接穗和砧木嫁接而成的幼苗比CK 處理接穗成活率提高，產生顯著差異；A2 和A3 處理嫁接苗接穗成活率與CK 處理無差異；A1 處理嫁接苗接穗成活率低于CK 處理，方差分析有差異，但差異不顯著；A5 和A6 處理嫁接苗接穗成活率降低，并且產生顯著差異。飼用苦瓜嫁接苗定植成活率均在99.5% 以上，冷等離子體處理對飼用苦瓜定植成活率沒顯著影響。

2.2.2 嫁接苗生長量

由表5 可知，A1、A2、A3、A4 和A5 處理嫁接苗生長量均高于CK 處理，分別提高1.17%、2.34%、2.73%、7.62% 和3.91%；A4 處理嫁接苗生長量最高，比CK 處理高7.62%，產生顯著差異；A1、A2、A3 和A5 處理嫁接苗生長量較CK 處理均有提高，有差異但不顯著；A6 處理嫁接苗生長量比CK 處理降低1.95%，沒有顯著差異。

2.3 飼用苦瓜抗病性調查

由表6 可知，不同冷等離子體處理均能降低白粉病、枯萎病和病毒病的發病率，不同處理的飼用苦瓜嫁接苗間的抗病性不同。A4 處理嫁接苗枯萎病和白粉病的發病率最低，抗性最好；A3 處理病毒病的抗性最好；A2、A3 和A4 處理均可顯著降低白粉病、枯萎病和病毒病發病率。田間調查發現，白粉病和枯萎病發病株的病害分級降低1～2 級，冷等離子體處理飼用苦瓜嫁接苗的方式，提高了相同管理條件下嫁接苗田間生長的抗病性。

2.4 飼用苦瓜果肉厚度情況

由圖1 可知，冷等離子體處理影響飼用苦瓜商品果的肉厚，A1、A3、A4、A5 和A6 處理均高于CK 處理的飼用苦瓜肉厚，肉厚提高比例在1.75%～8.77%，促進了飼用苦瓜商品性的提高。

3 討論

（1）利用冷等離子體處理飼用苦瓜嫁接砧穗組合，采用播種后的幼苗作為接穗，將其直接采用冷等離子體處理，短時間處理時，性狀不發生改變；長時間冷等離子體處理時，飼用苦瓜嫁接砧穗組合幼苗會發生萎靡無法成活，整個過程中，重點是對冷等離子體處理的時間參數和效果進行精準控制和使用。

（2）冷等離子體處理飼用苦瓜嫁接苗，可以為飼用苦瓜嫁接提供一種新的處理方式，以確保嫁接后飼用苦瓜接穗的成活率、田間定植抗病性和商品性。冷等離子體處理時間人為可控，此技術應用于飼用苦瓜嫁接技術尚屬于新的研究領域。對于其他品種的應用，有待于進一步研究，需要精準掌握冷等離子體的處理時間，防止操作失誤，造成不必要的損失。

（3）為了提高處理效率，需要研發更大處理量的裝置。新設備的研發涉及工程設計、技術研發、試驗驗證和工業化生產等多個環節。首先，需要確定處理的飼用苦瓜嫁接苗數量和處理時間，以及對等離子體處理的特定參數要求；根據需求分析，制定裝置的處理能力、功率、尺寸和其他技術規格，以確保能夠處理更大規模的嫁接苗。其次，需要對更大處理量的飼用苦瓜嫁接苗進行測試，驗證新裝置處理的效果和穩定性；觀察處理后飼用苦瓜嫁接苗的狀況和生長表現，確認處理效果是否符合預期。要確保新裝置能夠滿足大規模飼用苦瓜嫁接生產的要求，并在實際應用中取得良好的效果，讓更多的飼用苦瓜種植者或農業生產者使用，提高飼用苦瓜嫁接生產的效率和質量。

4 結束語

（1）當處理時間20 s 時，飼用苦瓜接穗和砧木嫁接而成的幼苗比對照處理愈傷組織形成提前1 d，隔離層消失提前2 d，說明此處理促進了砧穗的傷面愈合速度。

（2）當處理時間20 s 時，飼用苦瓜嫁接苗的生長量提高7.62%，接穗成活率明顯提高，經過方差分析差異顯著。冷等離子處理能促進飼用苦瓜嫁接苗成活，嫁接后接穗能更快生長。

（3）經過冷等離子體處理的飼用苦瓜肉厚提高1.75%～8.77%，促進了飼用苦瓜商品性的提高。

（4）本研究提供了適合飼用苦瓜幼苗作為接穗的處理方式，將接穗與砧木插接或靠接形成砧穗組合，對嫁接后的砧穗組合進行冷等離子體處理。這種方式處理后，幼苗不僅不會發生萎靡，還能有效促進創面的愈合，處理后的飼用苦瓜接穗成活率和生長量均提高，抗病性增強，飼用苦瓜果實厚度增加，提高了商品性。

參考文獻

［1］歐陽昌東．絲瓜作砧木嫁接對“科農二號”苦瓜生長、產量、抗性和品質的影響[D]．南昌：江西農業大學，2017．

OUYANG Changdong． Effects of grafting with loofah as stock onthegrowth， yield and quality of \"Ke Nong Er Hao\" balsam pear[D]．Nanchang：Jiangxi Agricultural University，2017．

［2］南寧市百濟生物工程有限公司．一種苦瓜葉復合飼料添加劑及其制備方法：CN201610192886.3[P]．2016-08-03．

［3］陳明靜．屯昌縣苦瓜枯萎病原因分析及防治措施[J]．農業科技通訊，2019（10）：287-289．

［4］陽燕娟，王麗萍，高攀，等．嫁接提高蔬菜作物抗逆性及其機制研究進展[J]．長江蔬菜，2013（22）：1-10．

YANG Yanjuan， WANG Liping， GAO Pan， et al． Advances onmechanisms of improving stress resistance in rootstock-grafted vegetablecrops[J]．Journal of Changjiang Vegetables，2013（22）：1-10．

［5］魏國平，唐于銀，張曉青．嫁接對蔬菜作物生理與抗性影響的研究進展[J]．江蘇農業科學，2012，40（9）：135-138．

［6］杜卓濤，朱白婢，賴彩余，等．不同砧木嫁接對苦瓜幼苗抗冷性的影響[J]．熱帶作物學報，2016，37（12）：2306-2311．

DU Zhuotao，ZHU Baibi，LAI Caiyu，et al．Effects of different stock grafting on chilling tolerance of bitter gourd seedlings[J]． ChineseJournal of Tropical Crops，2016，37（12）：2306-2311．

［7］肖昌華，曠碧峰，余席茂，等．嫁接對苦瓜疫病抗性及產量品質的影響[J]．中國蔬菜，2011（4）：66-69．

XIAO Changhua， KUANG Bifeng， YU Ximao， et al． Effects ofgrafting on bitter gourd resistance to phytophthora blight，yield and quality[J]．Chinese Vegetables，2011（4）：66-69．

［8］呂立新．苦瓜嫁接技術及其管理[J]．吉林蔬菜，2016（11）：19-20．

［9］嚴澤生．苦瓜嫁接苗酶變化及抗性和栽培效果研究[D]．雅安：四川農業大學，2007．

YAN Zesheng． Studies on the activities of PAL、PPO and POD ofthegrafted balsm pear seedlings and their effects of cultivation[D]．Ya'an：Sichuan Agricultural University，2007．

［10］林奕峰，陳亞雪，羅燕華，等．苦瓜嫁接技術研究[J]．福建農業科技，2017（9）：23-25．

LIN Yifeng，CHEN Yaxue，LUO Yanhua，et al．Studies on graftingtechniques of bitter gourd[J]． Fujian Agricultural Science and Technology，2017（9）：23-25．

［11］劉濤，趙夢靜，楊樹峰，等．中間包等離子加熱工業試驗[J]．中國冶金，2020，30（10）：36-40．

LIU Tao， ZHAO Mengjing， YANG Shufeng， et al． Industrial practiceof tundish plasma heating[J]．China Metallurgy，2020，30（ 10）：36-40．

［12］張之武．大氣壓低溫等離子體療法在小鼠傷口愈合過程中的實驗研究[D]．合肥：中國科學技術大學，2014．

ZHANG Zhiwu． Experimental study of coldatmospheric plasma therapyinwound healing of mice model[D]．Hefei：University of Scienceand Technology of China，2014．

［13］賈冰．脈沖等離子休射流促進凝血及傷口愈合實驗研究[D]．杭州：浙江大學，2020．

JIA Bing． Experimental study on blood coagulation andwound healingby pulsed plasma jet[D]．Hangzhou：Zhejiang University，2020．

［14］廖非，楊晨，曹莉，等．大氣壓低溫等離子體對大鼠急性化膿性感染傷口愈合的影響[J]．中國皮膚性病學雜志，2021，35（ 8）：855-860．

LIAO Fei， YANG Chen， CAO Li， et al． Cold atmospheric plasmapromoting wound healing in rats with acute suppurative wound[J]．TheChinese Journal of Dermatovenereology，2021，35（8）：855-860．

［15］MUNKHUU N， SHAO C， WANG D， et al． Stimulating effect oflow-temperature plasma on seed germination characteristics ofTrifolium repens[J]． Springer International Publishing， 2015． DOI：10.1007/978-3-319-19620-6_21.

［16］邵長勇，方憲法，唐欣，等．冷等離子體處理對大蔥種子發芽特性的影響[J]．農業機械學報，2013，44（6）：201-205

SHAO Changyong，FANG Xianfa，TANG Xin，et al．Effects of lowtemperatureplasma on seed germination characteristics of greenonion[J]．Transaction of the Chinese Society for Agriculture Machinery，2013，44（6）：201-205．

［17］馬玉婷，米敏，白梅梅，等．冷等離子體處理對紫花苜蓿種子萌發和幼苗MDA 含量的影響[J]．安徽農業科學，2020，48（8）：1-5，10．

MA Yuting， MI Min， BAI Meimei， et al． Effects of CPT on seedgermination and seedling MDA content of alfalfa[J]． Journal of Anhui Agricultural Sciences，2020，48（8）：1-5，10.

［18］劉金平，孫菲菲，王夏．冷等離子體處理對不結球白菜種子萌發、幼苗生長特性及產量的影響[J]．中國瓜菜，2023，36（ 4）：101-105．

LIU Jinping， SUN Feifei， WANG Xia． Effects of cold plasma teatmentof non- heading cabbages seeds with different radiation intensity onseeds germination， growth and yields[J]． China Cucurbits and Vegetables，2023，36（4）：101-105．

［19］SHETEIWY M S A．Physiological，molecular and metabolic effects ofpriming andcold plasma treatment on rice seeds to improve resistance todifferent abiotic stresses[D] ．Hangzhou：Zhejiang University，2017．

［20］葛永群，王明俊，周志丹．等離子體種子處理技術抗逆性研究[J]．農機科技推廣，2013（7）：44，46．

［21］智建奇． 一種等離子體處理與轉基因結合的玉米育種方法：CN201510881192.6[P]．2016-02-10．

［22］山東農業工程學院．一種冷等離子體處理的西葫蘆育種方法：CN201510279424.0[P]．2015-08-26．

［23］山東農業大學．冷等離子體處理促進嫁接番茄成活和生長中的應用：CN201911288524.4[P]．2020-02-18．

［24］FENG Jinkui，WANG Decheng，SHAO Changyong，et al．Effects ofcold plasma treatment on alfalfa seed growth under simulated droughtstress[J]．Plasma Science and Technology，2018，20（3）：035505．

［25］郝學金，王麗娜，閆六英，等．利用等離子體注入棗樹接穗的誘變技術初探[J]．山西農業科學，2012，40（9）：930-932，939．

HAO Xuejin，WANG Lina，YAN Liuying，et al．Preliminary explorationon mutagenesis techniques of plasma injected into the jujube treescion[J]．Journal of Shanxi Agricultural Sciences，2012，40（9）：930-932，939．

［26］邵長勇，張麗麗，張玉英，等．一種基于冷等離子體處理提高飼用苦瓜嫁接苗成活率的方法：CN114303826B [P]．2023-03-31．

［27］鐘艷，傅鴻妃，程楚，等．嫁接白玉苦瓜早春設施高效栽培技術[J]．上海蔬菜，2021（3）：15-16，31．

［28］魏瑩．苦瓜砧木嫁接緩解高溫脅迫下黃瓜幼苗光抑制和氧化脅迫的機理[D]．南京：南京農業大學，2019．

WEI Ying．Mechanism of grafting cucumber onto momordica rootstockto alleviate photoinhibition and oxidative stress under heat stress[D]．Nanjing：Nanjing Agricultural University，2019．

［29］解華云，艾輝建，洪日新，等．薄皮甜瓜嫁接砧穗愈合過程組織學觀察[J]．福建農業科技，2021，52（9）：59-63．

XIE Huayun，AI Huijian，HONG Rixin，et al．Histological observationon the healing process of grafted rootstock and scion of thin skinnedcucumis melo[J]．Fujian Agricultural Science and Technology，2021，52（9）：59-63．

［30］張春燕，詹曉東，劉麗，等．不同砧木嫁接對長白苦瓜生長的影響[J]．四川農業與農機，2021（6）：39-40，56．

［31］陳中釤，許端祥，杜文麗，等．福建地區迎春苦瓜早春大棚高產栽培技術[J]．長江蔬菜，2023（19）：31-33．

［32］李峰．植物石蠟切片制作（ paraffin section）的試驗流程探討[J]．科技信息，2012（5）：104-105．

［33］謝露露，崔青青，董春娟，等．植物嫁接愈合分子機制研究進展[J]．植物學報，2020，55（5）：634-643．

XIE Lulu， CUI Qingqing， DONG Chunjuan， et al． Recent advancesin molecular mechanisms of plant graft healing process[J]． ChineseBulletin of Botany，2020，55（5）：634-643．