LED3A強化紫花苜蓿修復Cd污染土壤的效果研究

刁靜茹 肖奇贊 張淋淋 閆利甜 趙保衛

DOI：10.16783/j.cnki.nwnuz.2024.01.010

收稿日期：20230720;修改稿收到日期：20231008

基金項目：國家自然科學基金資助項目（41261077）；甘肅省高等學校創新基金項目（2021B-102）

作者簡介：刁靜茹（1977—），女，山東平原人，副教授，博士.主要研究方向為污染控制化學及土壤修復.

Email：diaojr@qq.com

摘要：研究可生物降解螯合劑N-十二酰基乙二胺三乙酸鹽（LED3A）誘導強化紫花苜蓿修復Cd污染土壤的效果，采用盆栽方法，考察LED3A對紫花苜蓿生理指標、Cd亞細胞分布和化學形態以及增效提取土壤中Cd的影響.結果表明，Cd脅迫顯著抑制紫花苜蓿的生長及光合作用，增加丙二醛（MDA）的積累.而在土培體系中施用 LED3A，可以提高植株生物量、光合色素含量、過氧化物酶（POD）和超氧化物歧化酶（SOD）活性，緩解細胞膜脂過氧化損傷和Cd誘導產生的氧化應激.LED3A的螯合強化作用能夠增大紫花苜蓿細胞質中Cd的分布比例，促使植株中的Cd由高活性形態向低活性形態轉化，通過細胞壁固持和液泡區隔化提高耐Cd性能，進而減輕毒害.與不添加LED3A組相比，最佳LED3A添加量（321.3 mg·kg-1）組紫花苜蓿植株中的總Cd含量和積累量分別提高了29.4%和69.1%，地下/地上富集系數及轉運系數分別增加了28.6%，36.4%和10.5%.說明添加適量LED3A可有效提高紫花苜蓿對Cd的耐受性與修復Cd污染土壤的效果.

關鍵詞：LED3A；紫花苜蓿；Cd污染土壤；植物修復；化學強化

中圖分類號：X 171.5??? 文獻標志碼：A??? 文章編號：1001-988Ⅹ（2024）01-0061-09

Effect of LED3A enhanced phytoremediation of

cadmium contaminated soil by alfalfa

DIAO Jing-ru，XIAO Qi-zan，ZHANG Lin-lin，YAN Li-tian，ZHAO Bao-wei

（School of Environmental and Municipal Engineering，Lanzhou Jiaotong University，Lanzhou 730070，Gansu，China）

Abstract：A biodegradable chelating agent named N-lauroyl ethylenediamine triacetate（LED3A） was applied to the induction-enhanced phytoremediation of Cd contaminated soil by alfalfa.The pot experiments were conducted to investigate the effect of LED3A on the physiological indexes of alfalfa，the variations in subcellular distribution and chemical forms of Cd in plants，as well as the performance of LED3A in assisting phytoextraction of Cd from soil.The results showed that Cd stress significantly inhibits the plant growth and photosynthesis，and increases malondialdehyde（MDA） accumulation.After application of LED3A into soil-cultivated system，the biomass，photosynthetic pigments content，peroxidase（POD） and superoxide dismutase（SOD） activities of alfalfa all increase.Changes in these indexes can alleviate cellular membrane lipid peroxidation damage and oxidative stress caused by Cd.LED3As chelating enhancement effect results in a higher proportion of Cd in the cytoplasm of alfalfa cells，facilitates the transformation of Cd from highly active forms to less active forms within the plant，improves Cd resistance and reduces toxicity through cell wall immobilization and vacuole compartmentalization.Compared with the treatment without LED3A，the total Cd content and accumulation in alfalfa at optimal LED3A dosage（321.3 mg·kg-1） are increased by 29.4% and 69.1%.The bioconcentration factor（BCF） and translocation factor（TF） of Cd in alfalfa root and shoot increase correspondingly by 28.6%，36.4% and 10.5%，respectively.In conclusion，the application of situable amount of LED3A can improve the Cd tolerance of alfalfa and enhance the efficiency of phytoremediation for Cd contaminated soil.

Key words：LED3A；alfalfa；Cd contaminated soil；phytoremediation；chemical enhancement

《全國土壤污染狀況調查公報》顯示，我國土壤Cd污染危害嚴重，污染點位超標率達7.0%，遠高于其他重金屬污染物［1］.因此，Cd污染土壤的治理修復和農業安全問題備受關注.常見的重金屬污染土壤修復技術主要包括物理、化學、生物及其聯合修復方法，植物提取技術因具有成本低、環境擾動少和可持續等優點，得到了廣泛的研究和發展［2］，選取合適的修復植物是該技術應用的前提和關鍵.近年來，將高生物量經濟植物作為修復主體受到眾多研究者的青睞［3］.豆科牧草紫花苜蓿（Medicago sativa L.）具有生長快、產草量高的特點，其發達的根系與根瘤菌的共生固氮作用能夠改善土壤物理性狀和養分狀況［4］.紫花苜蓿在重金屬污染土壤的植物修復方面表現出良好的潛力［5］，但是由于土壤中重金屬的生物有效性較低，植物根系吸收并向上遷移重金屬的能力有限，導致植物提取修復效率低下［6］.

螯合誘導植物修復技術是解決植物修復低效瓶頸的有效措施［7］，該技術是基于螯合劑對土壤中重金屬的活化作用，通過與重金屬形成穩定可溶的螯合物提高其生物可利用性，進而增強植物對重金屬的提取修復效果［8］.如乙二胺四乙酸（EDTA）能夠將土壤吸附的重金屬螯合解吸至土壤液相，顯著提高生物有效態重金屬含量，使其向根部擴散促進植物吸收提取，并向地上部分轉運［9-10］.Li等［2］研究表明施加EDTA顯著提高了土壤中酸溶態Cu，Zn，Ni，Cd和Pb的濃度，增加了黑麥草對重金屬的吸收，但因EDTA存在不易降解及浸出風險等問題，其在聯合植物修復方面的應用受到限制［11］.氨三乙酸（NTA）和乙二胺二琥珀酸（EDDS）等強化劑對環境的危害小，對土壤重金屬同樣具有較強的螯合作用，可改善植物對金屬的吸取性能，Mehrab等［12］和Wang等［13］發現NTA和EDDS的存在能夠顯著提升Cd在玉米和龍葵中的積累，但兩種螯合劑在土壤中降解過快［14］，需多次施加才能得到理想的強化修復效果［15］.因此，探尋新的生態安全的化學強化試劑，對重金屬污染土壤植物修復技術的發展具有重要意義.

N-十二酰基乙二胺三乙酸鹽（LED3A）是在EDTA分子中引入疏水基團而得到的螯合型表面活性劑，具有水溶性好、毒性小和易降解的特點［16］，OECD封閉瓶實驗表明，30 d LED3A的生物降解率為70.5%［17］.本研究小組已有的研究發現，LED3A的親水氨羧配位基團能夠有效螯合解吸土壤中的重金屬，形成穩定的可溶性LED3A-金屬配合物［18］，其疏水碳鏈可以通過溶解膜脂使植物細胞的滲透性增加［19］，而表面活性亦能夠輔助改善土壤重金屬的生物有效性［20］，上述作用均有利于植物對重金屬的吸收、積累和轉運［19，21］.因此，LED3A有望對土壤中的重金屬起到有效的活化作用，通過螯合誘導途徑強化植物修復重金屬污染土壤，并避免引起二次污染風險.目前，有關LED3A聯合豆科牧草修復重金屬污染土壤的相關研究報道較少.

基于此，文中以模擬Cd污染土壤為基質，以紫花苜蓿為供試植物，LED3A為強化試劑，進行盆栽實驗. 通過測定紫花苜蓿的生物量和生理指標、土壤及紫花苜蓿中Cd的含量、植株中Cd的形態和亞細胞分布情況，研究LED3A強化紫花苜蓿修復Cd污染土壤的效果，探討LED3A強化植物修復Cd污染土壤的效能及作用機制，為螯合型表面活性劑誘導植物修復Cd污染土壤提供一定的理論依據和技術參考.

1? 材料與方法

1.1? 實驗材料

1.1.1? 試劑與儀器? LED3A（482 g·mol-1）購自杭州生物科技有限公司；CdCl2·2.5H2O，HNO3，HCl和HF等均為分析純，購自國藥集團化學試劑有限公司.

TD6冷凍離心機，UV-1800紫外可見分光光度計，Varian 220FS火焰原子吸收分光光度計，GH-X09微波消解儀等.

1.1.2? 植物及土壤? 紫花苜蓿品種為“金黃后”，購自甘肅省農業科學院；土樣制備：土壤采自蘭州交通大學后山表層土（0～20 cm），基本理化性質為：

pH=7.8，有機質含量2.8 g·kg-1，陽離子交換容量（CEC）4.9 cmol·kg-1，銨態氮1.2 mg·kg-1，有效磷9.3 mg·kg-1，速效鉀48.9 mg·kg-1，土壤未受到Cd污染.將采集的土壤自然風干，剔除雜物后研磨過篩（2 mm）.然后在土壤中均勻混入CdCl2溶液，使土壤中Cd的濃度為15 mg·kg-1.

1.2? 實驗設計

1.2.1? 盆載實驗? 塑料盆（直徑14 cm，高度17 cm）中裝土1.5 kg，盆下帶托盤，溫室平衡（保持60%田間持水量）20 d后種植紫花苜蓿.實驗共設5個處理，以未污染原土作空白（CK）對照，其他處理均為Cd污染土壤，采用不同濃度的LED3A（0（LN），160.7（LL），321.3（LM）和642.7（LH）mg·kg-1）進行強化增效，每個處理設置3個重復.各處理在種植前施入400 mg·kg-1 磷酸二氫鉀和400 mg·kg-1尿素作為基肥，以保證紫花苜蓿生長.紫花苜蓿種子經0.1% KMnO4消毒及浸種處理后，每盆播種100粒，發芽后間苗至60株，室溫培養（日溫22±5 ℃，夜溫15±5 ℃），每2 d澆一次水.植物種植90 d后，依據各處理設置濃度分別施入100 mL的LED3A溶液（pH值為7.8），強化作用7 d后收割紫花苜蓿.將植株分為地下和地上部分，測量并記錄長度和鮮重，置于液氮中保存待測；收集土壤樣品，風干研磨后密封保存待測.

1.2.2? 測定指標與方法? 植物生理指標測定［22］：對植

物鮮樣，分別測定其地上部分光合色素含量、地下/地上部分丙二醛（MDA）含量、過氧化物酶（POD）及超氧化物歧化酶（SOD）活性.植物/土壤中Cd的測定：取烘干（105 ℃殺青15 min， 50 ℃烘干）植物樣品采用HNO3-HCl微波消解后測定植物中Cd含量；取土壤樣品采用HNO3-HCl-HF微波消解后測定土壤中Cd含量.植物中Cd的形態和亞細胞分布測定：通過連續浸提法［23］提取并測定鮮樣中Cd的不同化學形態，包括乙醇提取態（FE）、蒸餾水提取態（FW）、氯化鈉提取態（FNaCl）、醋酸提取態（FHAC）、鹽酸提取態（FHCl）和殘渣態（Fr）；利用差速離心法［23］測定Cd在細胞壁（G1）、細胞質（G2）和細胞器（G3）中的亞細胞分布情況.

1.3? 數據處理及分析

以富集系數（FBC）、轉運系數（FT）和積累量（UA）為指標評價紫花苜蓿對土壤中Cd的提取能力：

FBC=CCsoil，（1）

FT=CshootCroot，（2）

UA=C×M，（3）

其中，C為紫花苜蓿地下部分（Croot）或地上部分（Cshoot）中Cd的濃度，單位為mg·kg-1DW；Csoil為土壤中Cd的濃度，單位為mg·kg-1DW；M為紫花苜蓿地上或地下部分的生物量，單位為g·pot-1 DW.

采用Excel 2016和Origin 2018進行數據處理和繪圖，SPSS22進行單因素方差分析和顯著性差異檢驗（P<0.05）.圖表中數據為平均值±標準偏差；不同字母表示不同處理組之間存在顯著性差異（P<0.05）.

2? 結果與討論

2.1? LED3A對Cd脅迫下紫花苜蓿生長及光合色素含量的影響

從表1可以看出，Cd顯著抑制了紫花苜蓿的生長（P<0.05），與CK相比，LN處理的根長和株高分別降低了23.2%和17.8%，根與莖的鮮重分別降低了26.6%和35.5%.Cd的毒性效應在多種植物中存在［24］，不僅抑制植物的光合和呼吸作用，減少水分和養分的吸收，而且通過誘導和抑制酶，促進脂質過氧化以及擾亂代謝等途徑影響植物生長［6］.可見，LN中植物生長指標降低是由Cd脅迫所致.施加不同濃度LED3A的各處理中，紫花苜蓿的長度和鮮重較LN處理均有所增加，如表1所示.LL，LM和LH的植株長度（41.30～43.65 cm）高于LN（37.42 cm），鮮重（0.830～0.924 g·plant-1）也大于LN（0.681 g·plant-1）.Habiba等［25］也報道了類似的研究結果，與Cu脅迫相比，EDTA和Cu共存能顯著提高甘藍型油菜（Brassica napus L.）的生物量，EDTA與Cu2+形成的螯合物減輕Cu的毒性作用.在本研究中施加LED3A對紫花苜蓿生長狀況的改善，可能是由于LED3A促進了植物對養分的吸收［26］，或LED3A-Cd螯合物的形成緩解了Cd對植物的毒性.

葉綠素和類胡蘿卜素是植物的兩種主要光合色素，可以反映環境因子對植物生長狀態的影響［27］.表1各處理中紫花苜蓿光合色素含量的變化情況與其生長參數的改變相似.LN處理組數據顯示，Cd脅迫使得葉綠素a，b和類胡蘿卜素含量分別較CK組降低了21.6%，18.1%和18.4%，而添加了LED3A的各處理中，光合色素含量較無添加處理LN有所回升，尤以葉綠素a的提高最為明顯，葉綠素b和類胡蘿卜素含量與LN之間差異不顯著.LL，LM和LH的葉綠素a含量較LN分別增加了6.9%，9.6%和12.8%（P<0.05）.這是由于Cd2+可以取代葉綠素結合位上的Mg2+導致葉綠素分子降解，或者通過抑制參與葉綠素生物合成的酶活性來降低葉綠素濃度［28］，而螯合劑的應用可能增加植物地上部分Fe的濃度，影響葉綠素的結構，減輕Cd對光合色素的破壞作用［29］.結果表明，Cd顯著抑制了紫花苜蓿的光合作用，LED3A的添加使光合色素含量升高，抑制程度有所緩解，在高濃度時（642.7 mg·kg-1）表現更為明顯.

2.2? LED3A對紫花苜蓿POD，SOD活性和MDA含量的影響

重金屬等環境脅迫可誘導植物細胞產生過量的活性氧（ROS），ROS通過攻擊胞內核酸、蛋白質和色素等，導致膜脂過氧化反應生成MDA［30］.同時，植物體內也會產生對氧化脅迫的應激反應，即增強抗氧化防御系統酶活性（如POD和SOD）以清除過多的ROS，維持自身的穩定狀態［31］.

由圖1（a）和（b）可知，有/無LED3A添加的處理中，紫花苜蓿地下/地上部分POD和SOD活性均高于無污染的CK組，與無添加處理LN相比，LED3A對地下POD活性無顯著影響，可促使地上POD活性提高23.9%～34.8%.SOD對氧化脅迫的響應比POD更為敏感，活性變化幅度更寬.隨LED3A濃度增加，地下和地上部分SOD均呈現快速上升后趨于穩定的狀況，較LN處理分別提高了19.0%～54.2%和55.4%～93.3%，其中以LM處理的增幅最大.植物中抗氧化酶的激活是具有重金屬高累積能力的植物生存的有力工具［25］，

Cd的存在促使紫花苜蓿提高抗氧化酶活性以耐受脅迫，LED3A與Cd共存亦會激發植物的抗氧化保護作用，通過不斷調節酶活性來增強抗性.有研究報道，Cu脅迫情況下EDTA的存在會提高甘藍型油菜幼苗體內SOD，POD和CAT等抗氧化酶活性，進而緩解氧化脅迫［25］.通常當環境脅迫誘導產生的ROS超過酶的清除能力時，二者之間的動態平衡會被打破，酶活性會迅速下降，植物細胞將受到損害.文中各處理的POD和SOD始終保持著較高的活性，表明在Cd和LED3A存在下，紫花苜蓿細胞仍處于穩定狀態，植物生長狀況良好.

圖1（c）中，LN處理植物地下/地上部分MDA含量較CK分別增加了21.0%和20.3%，表明紫花苜蓿根部和莖葉細胞內膜系統受到的氧化損害程度相近，MDA對Cd的脅迫響應較為明顯.添加LED3A的各處理中，MDA含量較無添加處理LN有不同程度的降低，其中LL的地下/地上部分MDA最低，分別為8.42和5.46 nmol·g-1.Xu等［32］的研究指出，與Cd污染處理相比，添加EDTA和有機酸后，水稻（Oryza sativa L.）中MDA含量降低.檸檬酸強化植物修復Cr污染土壤的研究同樣發現，“檸檬酸+Cr”可降低甘藍型油菜的MDA含量和電解質滲漏［33］.LED3A可以緩解Cd誘導引起的植物氧化應激，一方面是由于抗氧化酶活性的增加清除了過多的ROS，使膜脂過氧化水平有所恢復，MDA含量隨之下降；另一方面是LED3A-Cd絡合物被直接吸收，使植株內Cd含量明顯提升，并以植物螯合肽的形式存在，從而降低了高活性Cd的形態占比，減輕了其毒性效應［19］.低、中LED3A施加量下（LL，LM）紫花苜蓿體內MDA含量降低較多，細胞膜脂過氧化傷害相應減弱，與植物抗氧化酶保護和絡合態重金屬的吸收均有一定關系，應該為兩種作用的綜合體現.而高施加量處理（LH）中地下/地上部分MDA積累再度增多，細胞膜脂過氧化程度有所加重，應該與LED3A濃度對細胞膜滲透性的提高有關，但其值仍低于LN處理.

2.3? LED3A對紫花苜蓿中Cd的亞細胞分布及化學形態影響

重金屬在植物中的亞細胞分布和化學形態可以反映重金屬的遷移能力及其植物毒性［34］.結合圖2（a）和（b）可以看出，無LED3A添加情況下（LN），植株地下和地上部分的Cd主要（50.0%和45.9%）分布在細胞壁G1中，其次是細胞質G2（44.1%和39.3%），細胞器G3的占比很低（5.9%和14.8%）.這是由于植物細胞壁有許多負電荷位點可以與Cd2+結合，細胞壁的離子交換位點飽和后，金屬被轉運到細胞質并儲存在液泡中［35］.施加LED3A的各處理中，Cd（地下和地上）在G1，G2和G3各亞細胞組分中的含量較LN處理均有顯著提高（P<0.05）.

LED3A添加量為321.3 mg·kg-1（LM）時，對Cd在亞細胞組分間轉移的誘導效應最為明顯，促使了更多的Cd由細胞壁向細胞內轉移.對比LM與LN中Cd的亞細胞分布變化發現：首先，添加LED3A后，細胞壁和細胞質仍為Cd的主要分布場所，地下部分G1和G2中的Cd含量分別提高了25.9%和43.3%，地上部分則分別提高了45.4%和68.8%（圖2（a）），說明紫花苜蓿細胞壁的固持作用和液泡區隔化對其耐Cd行為均發揮了功效;其次，LED3A促使Cd由G1向G2發生轉移，LM

中地下/地上部分的Cd在G1，G2中的含量及占比幾乎相等，與LN中以G1分布為主有所不同.液泡為細胞質的動態組成部分，約占細胞總體積的90%，植物液泡多被認為是Cd的強富集位點［35］，可以推測LED3A與Cd共存時，液泡區隔成為紫花苜蓿耐受的主要機制.此外，由于LM處理的根部Cd濃度較大，地下部分G3中Cd的占比也提高了141.6%（圖2（a），（b）），這與Mehrab等［12］發現施用NTA后，Cd在玉米（Zea mays L.）葉片細胞器中的分布增加結果相似.

圖3（a）顯示了不同處理下紫花苜蓿體內Cd的6種化學形態含量，施加LED3A的情況下，氯化鈉、醋酸、鹽酸提取態和殘渣態（FNaCl，FHCl，FHAc和Fr）Cd的含量，在地下/地上部分均有不同程度的增加，水提取態（FW）Cd含量變化不明顯，僅在根中乙醇提取態（FE）Cd含量有所下降，這是由于FE形態Cd在植物體內遷移活性最強［34］，使其由地下轉移至地上造成.圖3（b）為不同處理下Cd的各形態占比情況，可以看出，添加LED3A提高了植株地下/地上部Cd的FHAc，FHCl和Fr 3種形態

的累計占比，相應地FE，Fw和FNaCl 3種形態占比下降.LL，LM和LH處理中，紫花苜蓿地下部分Cd的（FHCl+FHAc+Fr）形態比例較LN處理提高了11.7%～13.5%，而（FE+Fw+FNaCl）形態比例降低了15.2%～17.3%.據文獻報道，FNaCl形態為果膠/蛋白質螯合Cd，可表征細胞壁（G1）中果膠和蛋白質對Cd的固持作用；FHAc，FHCl和Fr可分別代表不溶的Cd-磷酸鹽、草酸Cd及殘渣Cd，與細胞質（G2）液泡中有機酸的絡合作用密切相關［36］.有關紫花苜蓿Cd的亞細胞分布討論中提出，LED3A可以促進Cd由G1向G2轉移，而植物體內（FE+Fw+FNaCl）形態組分向（FHCl+FHAc+Fr）形態組分的轉化也會隨之發生.由于FHAc，FHCl和Fr形態的Cd活性較弱［34］，意味著發生轉化后Cd對植物細胞和組織的傷害可能減小.綜上討論表明，LED3A降低了紫花苜蓿地下和地上部分高活性Cd形態的占比，減輕了Cd的植物毒性.

2.4? LED3A對紫花苜蓿吸收和積累Cd的影響

表2列出了不同濃度LED3A處理下，紫花苜蓿植株內Cd的含量與積累量.可以看出，施用LED3A可顯著促進紫花苜蓿對Cd的吸收和累積（P<0.05）.相較于LN處理，LL，LM和LH處理中地下/地上部Cd濃度和積累量均隨LED3A濃度增大呈現先增大后減小的趨勢.三個濃度LED3A強化作用下，紫花苜蓿體內Cd含量分別提高了（地下+地上）21.5%，29.4%和23.9%，總Cd累積量分別提高了59.1%，69.1%和44.4%.LM處理效果最佳，其地下/地上部Cd含量分別為80.35和34.33 mg·kg-1，是LN處理的1.26和1.37倍；而地下、地上和總Cd積累量達到311.2，295.6和606.8 μg·pot-1，是相應LN處理的1.65，1.73和1.69倍.LED3A增強植物修復的作用機制分析如下：其一，LED3A增加了土壤中有效態重金屬含量，使其向根部擴散并被直接吸收，增強植物提取效果［21］；其二，LED3A的表面活性可以調節細胞膜滲透性，協同促進根系對Cd的吸收積累，并通過植物蒸騰向地上轉運儲存［19］；其三，螯合劑激活植物細胞質膜上的ATP酶，引起重金屬轉運的離子通道發生變化，從而促進根系吸收，增加重金屬在植物地上部的積累［37］.高濃度LH處理下，LED3A強化效果較中濃度LM處理有所降低，可能是隨LED3A濃度增加，其疏水基彼此聚集并與土壤有機質作用，致使Cd重新吸附在土壤顆粒上［38］.因此，在LED3A強化植物修復過程中，適宜的試劑用量能夠有效提高紫花苜蓿對污染土壤中Cd的提取效率.

2.5? LED3A對紫花苜蓿富集和轉運Cd的影響

紫花苜蓿對重金屬的富集及轉運能力分別可以用FBC和FT值來表示.FBC值越大，植物對土壤中Cd的富集能力越強，修復污染土壤的效率越高;FT值越大，植物越容易將重金屬從根系向地上部分遷移［2］.由圖4（a）可知，采用LED3A強化紫花苜蓿修復Cd污染土壤，植株地下/地上部分Cd的富集系數FBC，root/FBC，shoot均明顯提高（P<0.05），二者的變化規律與植株相應部分Cd含量變化趨勢一致（表2）.LL，LM和LH處理中，FBC，root值分別為5.28，5.67和5.42，是LN處理

的1.20，1.29和1.23倍；FBC，shoot值分別為2.16，

2.36和2.25，是LN處理的1.25，1.36和1.30倍.與未添加LED3A的植物修復情況相比，LED3A在一定程度上促進了Cd由地下部向地上部轉運（P<0.05）.

圖4（b）表明，FT值從0.38（LN）增至0.42左右，提高了約10.5%，但LL，LM和LH處理間無顯著差異（P>0.05）.整體來說，各處理中均出現FBC，root高于FBC，shoot，而FT值小于1的現象，表明Cd在紫花苜蓿根系中的富集高于地上部，可能是由于根部吸收速率大于向地上轉運的速率，使大部分Cd積累于根部所致.LED3A誘導植物從土壤中提取的Cd，半數以上被固定在根部細胞壁或分隔在液泡中，其余部分進入到根中輸送水分和營養物質的木質部，隨后轉移到地上部分［39］.根據文獻［40］報道，高生物提取因子（FBC，shoot>1）有利于紫花苜蓿對土壤中Cd的提取，而高FBC，root、低FT更有利于紫花苜蓿的穩定生長.根系Cd濃度高于地上部可能是植株在耐Cd與生長之間平衡調節的結果.

3? 結論

1）Cd脅迫下，紫花苜蓿的生長和光合色素含量均降低.LED3A處理改善了紫花苜蓿的生長狀況及地上部分葉綠素含量，提高了抗氧化酶POD和SOD活性，降低了MDA含量，從而緩解了紫花苜蓿植株由于Cd誘導產生的氧化應激.

2）細胞壁固持與液泡區隔化是紫花苜蓿應對Cd脅迫的重要耐受機制，添加LED3A促使Cd從細胞壁向細胞質轉移，提升了紫花苜蓿地下/地上部分活性較弱的Cd形態（FHCl+FHAc+Fr）占比，減輕了Cd對紫花苜蓿的毒害作用.

3）LED3A對紫花苜蓿吸收、積累和轉運Cd具有顯著的增效作用.321.3 mg·kg-1LED3A強化修復效果最佳，植株中Cd的總含量和積累量較無強化處理分別提高了29.4%和69.1%，FBC，root，FBC，shoot和FT相應增加了28.6%，36.4%和10.5%.

4）LED3A可提高紫花苜蓿對Cd的耐受性，誘導強化紫花苜蓿提取富集土壤中的重金屬污染物，是一種頗具應用前景的植物修復強化試劑.

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（責任編輯? 陸泉芳）