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高粱抗旱性研究進展

2024-04-01 11:05:19王曉東李俊志竇爽肖繼兵辛宗緒吳宏生朱曉東
山東農業科學 2024年1期

王曉東 李俊志 竇爽 肖繼兵 辛宗緒 吳宏生 朱曉東

摘要:干旱是限制植物生產力和威脅糧食安全的重要因素之一。 高粱(Sorghum bicolor L. Moench)是全球主糧和飼料作物,因其具有較強的抗旱性和能夠在惡劣的環境條件下生存而廣泛種植于干旱半干旱地區,在作物抗旱領域中具有重要的研究價值。 深入解析干旱脅迫下高粱的形態和生理特性、鑒定和篩選抗旱品種、挖掘相關抗旱基因,對推動高粱抗旱育種進程、提高品種抗旱性、提高產量具有重要意義。 本文從干旱脅迫對高粱生長的影響、高粱對干旱脅迫的生理響應、高粱耐旱性鑒定方法和鑒定指標、高粱抗旱性分子生物學和提高高粱抗旱性方法5 個方面對高粱抗旱性研究進展進行綜述,并對高粱抗旱性研究方向進行展望,以期為進一步研究高粱抗旱的形態、生理特性及分子機制奠定基礎。

關鍵詞:高粱;干旱脅迫;生理響應;分子生物學;鑒定;抗旱性

中圖分類號:S514文獻標識號:A文章編號:1001-4942(2024)01-0164-10

干旱是限制作物生產發展的最重要因素之一,有發生范圍廣、頻次高、持續時間長等特點[1-2] 。 目前,世界上有三分之一以上總陸地面積的干旱和半干旱地區,我國現有干旱、半干旱和亞濕潤干旱區近300 萬km2,占國土總面積近四成[3] 。 其中,絕大部分是因為缺乏灌溉條件而以雨養農業為主,其作物產量占全國總產量的比重較小。 選育耐旱性強的作物品種是保證干旱地區高產穩產的重要舉措。 干旱可能會發生在作物生長發育的各個階段。 然而,在干旱和半干旱地區,

作物生長季開始和結束時發生干旱的可能性較高。 生長季節開始時的干旱脅迫嚴重影響植物的生長發育。 如果干旱發生在作物開花期或灌漿期,可能會導致產量嚴重下降或歉收[4] 。

高粱(Sorghum bicolor L. Moench)是禾本科一年生草本植物,主要種植于熱帶、亞熱帶和溫帶的干旱半干旱區,也是我國主要的雜糧作物之一,是重要的釀用、食用、飼用、帚用作物,同時也是全球僅次于水稻、玉米、小麥、大豆種植面積的第五大糧食作物。 高粱具有很強的抗旱、耐澇、耐鹽堿、耐瘠薄、耐高溫等抗逆特性[5] 。 高粱不同品種間抗旱能力存在較大差異。 近些年從多個方面開展了高粱抗旱性遺傳和抗旱品種選育相關研究[6-7] 。 本文綜述干旱脅迫對高粱生長的影響、高粱耐旱性鑒定方法和鑒定指標,以及高粱對干旱的生理響應,并從轉錄組分析、抗旱QTL 定位和全基因組關聯分析方面進行梳理和整合,并對高粱抗旱性的分子調控機制、鑒定體系及抗旱性品種選育進行展望,以期為后人開展相關研究提供理論參考。

1 干旱脅迫對高粱生長的影響

1.1 干旱脅迫對高粱種子萌發和幼苗生長的影響

水分缺乏使植物發育遲緩,干旱脅迫達到一定閾值時,會顯著抑制種子萌發和幼苗生長[8] 。王志恒等[9] 研究了高粱萌發階段受干旱脅迫的響應特性,發現隨著干旱脅迫程度的增加,高粱種子的發芽率、發芽勢等顯著降低,種子殘留干重逐漸增加,干物質轉移、轉化效率逐漸下降,根冠比逐漸增大,比根重逐漸減小。 長期干旱脅迫降低幼苗的苗高、葉長,幼苗地上部和根的鮮重不同程度的下降[10] 。

1.2 高粱萌發期及苗期的抗旱性研究

大多數農作物在種子萌發、幼苗形成和開花階段對干旱脅迫較為敏感,干旱脅迫下萌發期和苗期表現出耐旱性是作物生長發育的前提。 對高粱萌發期和苗期耐旱性的研究發現,高粱萌發期和苗期的耐旱性是不一致的。 張笑笑[11] 對73 份高粱品種進行萌發期和苗期耐旱性鑒定,初篩結果發現萌發期和苗期都抗旱的品種5 份,苗期抗旱品種10 份,田間和室內采用多重表型分析最終得到苗期抗旱品種1 份。 郝培彤等[12] 在20%PEG 干旱脅迫下評價21 份飼草高粱材料的耐旱性,篩選出萌發期耐旱和苗期耐旱材料各3 份,萌發期和苗期共同耐旱材料1 份。 由此可見,高粱品種萌發期和苗期耐旱性是不同的,萌發期耐旱品種苗期不一定耐旱,苗期耐旱品種萌發期也可能不耐旱。 針對高粱萌發期和苗期耐旱性,許多學者是分開進行研究的,而在大田干旱生產條件下,種子從萌發階段就已經受到干旱脅迫的影響。因此研究植物的耐旱性,應該從種子萌發到苗期進行不間斷的干旱脅迫處理,這樣可以更加全面地反映出植物在萌發期和苗期對干旱脅迫的各種反應。

1.3 干旱脅迫對高粱光合作用的影響

Zhang 等[13] 研究發現,在干旱脅迫處理后,高粱葉片葉綠素總含量及葉綠素a、葉綠素b 含量降低,且葉綠素a 的降低幅度顯著大于葉綠素b。干旱脅迫下葉綠素含量降低主要是由于葉綠素生物合成下降,從而導致葉綠素加速分解。

植物進行光合作用時,要保證充足的光照,然而光照過強,會造成葉片吸收的光能超出同化所需,進而造成光抑制或者光破壞[14] 。 因此植物會通過植物激素、外源物質等來減緩由于光能過多引起的光抑制,促進光合活性,避免PSⅡ系統受到破壞[15] 。 張姣等[16] 的研究表明,干旱脅迫下,高粱葉片的凈光合速率(Pn)、氣孔導度(Gs)、最大光化學效率(Fv/ Fm)、光化學淬滅系數(qP)、電子傳遞速率(ETR)出現不同程度的下降,初始熒光(Fo)與對照組相比有所升高,Zhang 等[13] 也得出相同的結論。 說明干旱脅迫會使光合相關酶活性喪失,導致光能過剩而產生積累,通過熱耗散等途徑消耗多余的光能,可以讓作物適應干旱脅迫環境。 干旱脅迫導致光合作用能力下降主要原因是非氣孔限制[17] 。 王祁等[18] 的研究還發現,在輕度干旱脅迫下,高粱葉片PSⅡ系統結構和功能損傷較小,然而在重度脅迫下,葉片PSⅡ系統遭到破壞,進而發生光抑制現象。 光合作用的強弱可以直接反映出植物抵御干旱脅迫的能力,保證葉綠素含量的穩定、保護光合相關酶活性,可抵御干旱脅迫對其光合作用的影響。

2 高粱對干旱脅迫的生理響應

2.1 有機滲透調節

干旱脅迫下,植物細胞通過調節可溶性物質的濃度來維持細胞內外滲透壓平衡,進而應對干旱脅迫帶來的影響。 參與滲透調節的物質可分為兩類,第一類是外界環境提供的無機離子,第二類是胞內合成的有機溶質。 第二類滲透調節物質主要包括甜菜堿、脯氨酸、糖和糖醇等有機化合物[19] 。 近些年來,可溶性蛋白、可溶性糖、脯氨酸等滲透調節物質被廣泛研究。

脯氨酸的積累可以使許多植物應對滲透脅迫反應,作為一種相容的滲透劑,其可以提高細胞或組織的保水能力,同時可以作為碳水化合物的來源;作為一種酶的保護劑,也可以減輕蛋白質變性,具有很強的抗氧化能力。 張玉霞等[20] 用聚乙二醇溶液模擬干旱脅迫,結果表明飼用高粱品種脯氨酸含量與對照組相比顯著升高。 王艷秋等[21] 研究發現,干旱脅迫下高粱葉片的脯氨酸含量顯著增加,且其顯著性較大,是高粱調節適應干旱脅迫的重要指標。 可見,脯氨酸在干旱脅迫下至關重要,但是也有不同觀點:董喜存等[22] 的研究發現,在不同程度干旱脅迫下,甜高粱品種葉片脯氨酸含量變化趨勢并不一致。 因此認為,單純測定脯氨酸含量不能準確反映抗旱性,可以將其作為一種抗旱脅迫下的保護性反應。

可溶性糖主要包括葡萄糖、蔗糖、果糖和半乳糖。 可溶性糖既可以為植物生長發育提供能量,并且具有信號功能,又是植物生長發育的重要調節因子[23] 。 何瑋等[24] 研究不同干旱脅迫下甜高粱葉片可溶性糖含量的變化時發現,輕度干旱脅迫下可溶性糖含量先下降然后突然升高,再下降之后突然升到最高;在重度干旱脅迫下,可溶性糖含量先下降,然后升到最高,再下降。 總體表明,在受到干旱脅迫時,高粱葉片可溶性糖含量整體呈升高趨勢。 Gill 等[25] 研究不同非生物脅迫下高粱可溶性糖含量變化的結果表明,干旱脅迫下總的可溶性糖含量呈升高趨勢且高于對照,其中果糖含量始終高于葡萄糖和蔗糖。 此外,在干旱脅迫下,可溶性糖還可以作為蛋白質滲透保護劑而發揮作用。

可溶性蛋白含量的變化可以直接反映植物滲透調節能力的大小,它不僅可以提高細胞的保水能力,而且可以有效地保護生物膜以及細胞的生命物質。 榮少英等[26] 研究不同高粱品種在不同干旱條件下可溶性蛋白的變化時發現,甜高粱、普通高粱和對照相比可溶性蛋白含量隨著干旱脅迫的加劇呈上升趨勢。 有研究[27-28] 表明,在逆境脅迫下,膜質過氧化產物丙二醛抑制蛋白質的生物合成;長時間重度干旱使植物體內分解代謝加劇,導致大量可溶性蛋白分解。

2.2 抗氧化防御系統

活性氧具有很強的氧化能力。 植物在進行有氧代謝的過程中會產生活性氧,低濃度的活性氧可以作為信號分子參與調控植物非生物脅迫反應[29-30] 。 抗氧化防御系統具有維持植物體內活性氧平衡的功能[31] 。 該系統包括兩大類,一類是非酶促抗氧化物質,其中最為重要的是水溶性抗壞血酸(Asc),其次是谷胱甘肽(GSH),還有脂溶性生育酚、類胡蘿卜素等;另一類是酶促抗氧化劑,包括超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)和過氧化氫酶(CAT)[32] 。 植物抗氧化調控系統中,提高酶活性和抗氧化物的表達量是作物抵御逆境脅迫的關鍵因素。

陳敏菊等[33] 研究發現,高粱幼苗葉片SOD和CAT 活性因干旱脅迫的強度不同而存在差異,土壤含水量在55% ~60%時SOD 活性逐漸升高,隨著干旱程度加劇,SOD 活性逐漸下降;CAT 活性在土壤含水量為40% ~60%時高于對照,隨著干旱加劇活性逐漸降低;POD 活性的變化規律和SOD 一致。 這表明輕度干旱脅迫可以提高高粱幼苗葉片抗氧化酶活性。 盧峰等[34] 研究高粱幼苗不同生長階段受到干旱脅迫時酶活性的變化情況表明,脅迫6、8、12、24 d 時SOD 活性顯著高于對照,干旱脅迫12 d 時酶活性達到峰值,POD 活性的變化和SOD 基本一致。 說明高粱幼苗在受到干旱脅迫時,通過提高葉片保護酶活性來抵御其危害。

2.3 激素調節

植物激素參與干旱脅迫調節。 通過外源激素來提高作物的抗旱性是現階段重要的科學途徑之一[35-36] 。 細胞分裂素通過促進細胞分裂,延緩植物葉片中葉綠素的降解來提高植物的抗旱性[37] 。生長素可以正向調控四種抗氧化酶(SOD、CAT、POD、GR)活性來降低干旱脅迫對植株的抑制作用;同時生長素可以通過調節根生物量、增加根的分支來提高水分吸收效率進而提高抗旱性[38] 。

脫落酸(ABA)對植物在逆境脅迫下的應答起著關鍵作用,其參與氣孔的開關,保衛細胞的通道活動,調節轉錄鈣調蛋白的表達,誘導相關基因的表達[39] 。 植物在受到干旱脅迫時,也可以通過減少赤霉素的方式來適應脅迫環境[40] 。 關于干旱脅迫下植物激素調節機制,國內外對水稻、小麥等作物的報道較多,逆境脅迫下高粱中植物激素的作用機制還需進一步探討和研究。

高粱的抗旱性在生理上涉及到三個方面:第一是干旱脅迫下需要維持高的含水量,維持高粱水分平衡,通過增加脯氨酸、可溶性糖、可溶性蛋白質等物質含量提高滲透調節能力,維持細胞或者組織持水,進而維持膨壓;第二是干旱脅迫下保證其基本的生理功能,通過激素調節、酶活性提高等來維持高粱正常的生理功能;第三是干旱脅迫解除時高粱含水量和生理功能的恢復能力。 做好以上三點,可以有效地抵御干旱脅迫帶來的負面影響。

3 高粱耐旱性鑒定方法及鑒定指標

因為各個時期的耐旱機制不同,一般將高粱耐旱性鑒定分為萌發期、苗期和全生育期鑒定。萌發期是作物在干旱脅迫條件下能否完成生長周期的關鍵時期[41] ,對高粱群體結構和數量起著決定性作用。 高粱萌發期抗旱性鑒定多采用聚乙二醇(PEG)、葡萄糖溶液等模擬干旱脅迫環境進行,通過種子發芽率、萌發抗旱指數等反映高粱的抗旱性。 其中PEG-6000 是目前被廣泛應用的鑒定萌發期抗旱性較為理想的溶液。 陳冰嬬等[41]使用15 份保持系、18 份恢復系和8 份雜交種,通過PEG-6000 水溶液模擬干旱脅迫環境,篩選出1 份恢復系和1 份保持系萌發期抗旱性親本材料;通過抗旱性因子分析,認為萌發抗旱指數、根長和剩余干物質量可以作為高粱萌發期抗旱性篩選的鑒定指標。 候文慧等[42] 利用15%的聚乙二醇溶液進行干旱脅迫處理,采用隸屬函數分析方法對8 個飼用高粱萌發期抗旱性進行排序,得出SU9002 為抗旱性最強的材料,BJ0602 為抗旱性最為敏感的材料;并利用主成分和聚類分析方法,對萌發期5 個抗旱指標進行分析,結果表明,發芽指數和發芽率可以作為飼用高粱萌發期抗旱性評價的指標。 采用聚乙二醇等高滲溶液不僅方法簡單,而且排除了外界環境的干擾,可以獲得更加準確的數據,有效地縮短了鑒定周期,提高鑒定效率。

苗期是高粱整個生長發育階段的關鍵時期之一,其生長好與壞直接影響著最終的產量和品質,因此,苗期抗旱性鑒定尤為重要。 高粱苗期抗旱性鑒定方法可以分為三種。 第一種較為常見的是使用PEG-6000 溶液模擬干旱脅迫環境。 趙曉倩[43] 采用25% PEG-6000 對259 份高粱品種進行干旱脅迫處理,篩選出極抗旱品種14 份、極敏感品種33 份,并通過主成分分析方法對9 個指標進行分析,結果表明,苗高、成活率、根冠比、根長和根鮮重可以作為評價高粱苗期抗旱性的指標。第二種是干旱復水法,是指在干旱脅迫后進行復水處理,用復水后的恢復能力指標評價高粱抗旱性。 劉婷婷等[44] 利用盆栽控水法對8 個高粱品種幼苗進行干旱復水處理,通過研究生物量、水勢、滲透式、光合參數等生理指標的變化情況來分析不同高粱品種的抗旱能力以及干旱適應能力和旱后復水恢復能力的關系,分析鑒定出了一份抗旱性強的品種遼雜21 和旱后復水能力強的品種Moench. cv. Gadambalia。 干旱脅迫時維持較高的葉片凈光合速率和相對含水量有助于其提高干旱復水能力,因此,葉片凈光合速率和相對含水量可以作為篩選高粱苗期抗旱性的生理指標。 第三種是反復干旱法,是指通過高粱苗期連續兩次干旱脅迫控水,以材料存活率為評價指標的一種鑒定方法,適用于大批量的品種鑒定。 李舒凡[45] 通過反復干旱法,對200 份高粱品種進行苗期耐旱性鑒定,將葉片與根系的長勢作為抗旱性的評價指標,能夠從存活的質量上區別品種的抗旱性差異,進一步提高了篩選抗旱性品種的準確性。 對高粱苗期抗旱性的鑒定只能反映出營養生長階段的情況,需要結合生殖生長階段的抗旱性,對不同品種抗旱能力進行綜合評價。

作物全生育期抗旱性鑒定對于抗旱新品種的選育、抗旱機制的研究以及抗旱基因的挖掘有著重要意義,共有兩種鑒定方式。 一種是通過人工控制水分和環境,通過干旱棚、人工氣候箱等模擬干旱環境,研究各個生育期干旱脅迫對籽粒產量和品質的影響。 汪燦等[46] 通過在干旱棚內設置兩個處理對50 份酒用高粱材料進行成株期抗旱性鑒定,測定了成株期8 個農藝性狀,篩選出兩個成株期酒用高粱抗旱性強的品種粱豐141-3 和粱豐247-3;通過主成分、灰色關聯度分析,認為分蘗數、穗粒數和單株粒重可作為酒用糯高粱資源成株期抗旱性評價指標。 另一種是自然環境法,設置干旱和水地兩個處理,操作簡便,沒有設備的要求,測定的結果更具說服力,但受環境因素影響較大,需要多年的試驗數據進行支撐。 袁闖等[47] 采用自然環境法,設置灌水和干旱兩個處理,通過測定高粱成熟期株高、穗重、千粒重、產量等10 個性狀,對22 份不同品系的甜高粱進行成熟期耐旱性鑒定,篩選出3 份抗旱品種和2 份抗旱敏感性品種;通過主成分分析和逐步線性回歸分析,認為千粒重、單株粒重、穗粒數和穗莖粗可以作為甜高粱成熟期抗旱性的評價指標。 現階段,高粱各抗旱指標評價鑒定基本都是局限于某一個時期,因此,需要綜合高粱生長發育每個時期的指標來進行綜合分析,建立綜合指標評價體系,以提高高粱品種抗旱性鑒定的可靠性和真實性。

4 高粱抗旱性分子生物學研究

現階段,國內外對于高粱抗旱性鑒定、抗旱生理生化以及干旱對農藝性狀影響的研究已趨于完善,并且對于以基因為基礎的轉基因和分子標記技術也廣泛應用到抗旱性分子遺傳研究領域,通過轉錄組分析、QTL 定位和全基因組關聯分析(GWAS)構建分子遺傳圖譜,挖掘抗旱相關基因是高粱抗旱性分子遺傳研究的發展方向。

4.1 轉錄組分析

轉錄組分析對于研究未知基因功能和特定調節基因的作用機制起著關鍵作用[48] 。 近年來新一代的轉錄組測序技術(RNA-seq)應運而生,它可以研究作物在干旱脅迫下的基因表達模式、分析抗旱分子機制、確定候選基因并進行功能注釋[49] 。 Dugas 等[50] 通過滲透脅迫和脫落酸對高粱植物的轉錄組進行了分析,利用轉錄組測序技術揭示高粱的抗旱機制和基因篩選。 Zhang 等[51]使用轉錄組測序方法對干旱脅迫下高粱的葉和根進行轉錄組分析,鑒定出了差異表達基因,通過富集(GO) 分析出耐旱性相關轉錄因子。 王志恒等[52] 用PEG-6000 對甜高粱進行干旱脅迫,對高粱幼苗進行轉錄組測序分析并建立包含cDNA 的文庫, 對差異表達基因進行GO 富集分析和KEGG 分析,發現有兩個代謝通路與干旱脅迫響應相關,這兩個通路都屬于遺傳信息代謝通路。

表明甜高粱通過激活與干旱脅迫相關的蛋白表達和與碳水化合物相關的基因表達而增強滲透調節能力來響應干旱脅迫。 Xu 等[53] 對兩個抗旱性不同的高粱品種進行轉錄組分析,運用轉錄組測序技術確定了候選基因并進行了基因功能注釋,分析了代謝通路。 轉錄組測序技術促進了基因功能和表達水平的研究,通過分析干旱脅迫下基因的表達網絡和富集通路,挖掘相關的新基因,可為今后進一步揭示干旱脅迫調節機制提供理論支撐。

4.2 抗旱基因QTL 定位

植物的抗旱性是受多基因控制的數量性狀,遺傳復雜。 干旱對作物的影響程度變化較大,常規育種方法費時、費力,難以選育優質的抗旱品種。 隨著分子生物學的發展,QTL 分析被廣泛應用到分子遺傳領域。 趙輝[54] 利用籽粒高粱654和甜高粱LTR108 組成244 個RIL 群體,并構建了分子遺傳連鎖圖譜,利用QTL 定位分析耐旱性相關性狀,分別在1、4、6、7 染色體上檢測出3、1、1、3 個與抗旱系數相關的QTLs 位點,并且在LG-1、LG-6、LG-7 上定位到5 個影響株高的QTLs。Haussmann 等[55] 用IS9830 和N13 與E36-1 分別構建226 個RIL 群體,通過構建遺傳圖譜,發現標記分別位于10 個連鎖群和12 連鎖群中,利用復合區間作圖檢測到的3 個性狀的QTL 數量在5個到8 個之間,解釋了31%和42%的遺傳變異。Sakhi 等[56] 對107 份孕穗期的高粱材料進行干旱脅迫處理,使用10 條染色體上98 個SSR 標記位點的基因型數據對23 對性狀進行關聯分析,鑒定出9 個QTL 與8 個抗旱性狀相關。 持綠性是高粱干旱脅迫耐受性的一個組成部分。 Sukumaran等[57] 對Tx436(非持綠性)和00MN7645(持綠性)構建重組自交系進行遺傳定位,利用全基因組單標記掃描和復合區間影射互補方法,檢測到了15個與抗旱性狀相關的QTL;在1 號染色體上發現了籽粒產量QTL,解釋了8% ~16%的表型變異,在第2、6、9 號染色體上發現了開花時間QTL,解釋了6%~11%的表型變異,在3、4 號染色體上發現了持綠性QTL,解釋了8% ~24%的表型變異。有關高粱QTL 定位的研究可為后續高粱抗旱基因的精細定位、挖掘抗旱性相關基因和分析抗旱性機理奠定基礎。

4.3 全基因組關聯分析(GWAS)

GWAS 是對多個個體在全基因組范圍內進行遺傳標記多態性檢測,將基因型和表型進行關聯并應用到尋找遺傳圖譜和挖掘性狀相關候選基因的一種方法。 近年來,為解析高粱抗旱性的遺傳基礎,Xin 等[58] 研究354 份甜高粱在兩種不同干旱處理下的株高性狀,并將基于株高的平均生產力、干旱指數和脅迫耐受指數作為表型數據,結合甜高粱再測序獲得的6 186 個SNPs,使用三種不同的數量性狀遺傳模型進行GWAS 分析,結果表明,在GLM、MLM 和FarmCPU 下分別檢測到49、5個和25 個耐旱相關的遺傳位點,發現2 個耐干旱的候選基因,其中,Sb08g019720.1 基因與Athali ̄ana EFMTF 基因同源,而Sb01g037050.1 基因與玉米bZIPTF 基因同源。 高奇[59] 用401 份甜高粱材料進行干旱脅迫處理,并通過三個與干旱相關的性狀篩選出耐旱評價指標并作為表型數據,利用高粱全基因組SNP 標記,對三個性狀耐旱指數進行全基因組關聯分析,檢測到兩個株高性狀基因可能是耐旱候選基因。 趙曉倩[43] 對259 份高粱的7 個苗期耐旱性相關性狀進行全基因組關聯分析,檢測到102 個顯著的SNP 位點,篩選出7個抗旱候選基因。 通過全基因組關聯分析揭示耐旱候選基因可為后續基因功能驗證和高粱耐旱分子機制研究奠定基礎。

5 提高高粱抗旱性的方法

5.1 傳統育種方法

傳統的育種方法包括雜交育種、回交育種、系統選育、混合選育等,其中較為常見的是雜交育種。 楊偉等[60] 通過母本不育系7501A 和父本恢復系RHMC386 進行組配雜交,選育出優質抗旱高粱新品種潞雜9 號。 楊婷婷等[61] 研究發現,以不育系SX605A 為母本、以恢復系SX870 為父本雜交育成高粱品種晉雜31號。 其選育過程中,親本都是通過雜交再連續多代自交得到的穩定品種,都具有很強的抗旱性,通過該方法可以提高選育品種的抗旱性。 李繼洪等[62] 同樣用不育系親凡A 為母本、以恢復系蘇丹草黑殼3 號為父本雜交選育出抗性強的品種吉草3 號。 由此可見,選育抗旱性強的不育系和恢復系是提高高粱雜交種耐旱性的重要途徑。

5.2 施加外源物質

通過對高粱施加外源營養元素、生長調節劑以及進行種子引發等都可以提高其抗旱性。Ahmed 等[63] 發現硅營養對高粱的生長和生理參數有顯著影響,通過在干旱脅迫條件下對高粱進行施加硅營養處理,可以提高耐旱基因型品種(系)的葉片水勢、葉面積指數、蒸騰速率和SPAD值,同時在硅處理下凈同化和相對生長量表現出最大值。 張瑞棟等[64] 分別用聚乙二醇(PEG)、KCl、CaCl2 和水楊酸(SA)對高粱種子進行引發處理,顯示其可以促進干旱脅迫下種子萌發率,促進胚根和胚芽的伸長。 其原因可能是引發處理提高了胚芽內抗氧化酶活性,同時促進糖代謝,增加脯氨酸含量,解決了干旱脅迫下發芽率低、胚根胚芽生長受抑制的問題,進而提高高粱萌發期的抗旱性。 Tounekti 等[65] 的研究也得到一致的結果。Kamali 等[66] 研究發現,使用固氮菌和叢枝菌根真菌(AMF)的高粱比不使用的受干旱脅迫程度較輕,固氮菌和叢枝菌根真菌可以減少高粱電解質滲漏和丙二醛含量,通過提高花青素、類胡蘿卜素、黃酮、生長素(IAA)等物質含量和抗氧化酶活性來緩解干旱脅迫的影響。 Kamali 等[67] 同時也發現細菌和叢枝菌根真菌也可以通過增加光合色素、可溶性蛋白等物質含量提高高粱滲透調節能力,繼而應對干旱脅迫環境。 Shehab 等[68] 研究發現,脫落酸(ABA)和茉莉酸甲酯(MeJA)可以減輕干旱脅迫引起的負面效應,降低干旱脅迫下高粱中氰化氫(HCN) 的含量。 植物生長調節劑(PGRs)改善高粱抗旱性歸因于可溶性蛋白、丙二醛、活性氧、過氧化氫等的積累減少,光合參數的改善以及抗氧化酶活性的變化,進而提高其抗旱能力,特別在甜高粱中尤為明顯。

5.3 轉基因方法

植物抗旱性是受多基因控制的數量性狀,其中包括參與調控植物活性氧、可溶性糖、抗氧化酶、葉綠素和ABA 信號轉導等生理生化過程的基因。 這些基因通過提高植物滲透調節物質含量、抗氧化酶活性及光合作用能力來增強植物耐旱性。 國內外研究了大量抗旱基因,也通過擬南芥和水稻等確定了許多與耐旱性相關的基因。 已經被克隆出來的耐旱基因有:提高植物滲透調節和抗氧化防御能力的基因SbNAC9[69] 、OsDIS1[70] 、WRKY20[71] 、GmGolS2 - 1[72] 、SiNCED3[73] 、Os ̄MYB105[74] 、RACK1[75] ,調控ABA 信號傳導的基因OsOFP19[76] 、AHF[77] 、BG1[78] 、MYB48[79] ,調節光合作用的基因OsMIR1423[80] 、SNAC1[81] 、MKKK18[82] , 還有一些耐旱候選基因Sb08g019720. 1、Sb01g037050. 1[55] 和SiZAT12、SiPFK2[83] 等。 我們可以通過轉基因的方式將這些已知的目的基因導入到高粱中去,得到優質的抗旱品種,以加速提高高粱抗旱能力。

6 展望

6.1 高粱抗旱性的分子調控機制

干旱脅迫下,高粱會發生不同程度的生理生化變化,而這些變化會受到許多抗旱性相關基因的表達和調控,包括信號的轉導到轉錄和翻譯水平上調控基因的表達。 目前,已經明確了許多抗旱性相關基因的調控機制,但是對于基因間相互作用的相關報道較少。 在今后的工作中,應當將重心轉移到高粱抗旱的分子調控機制研究上,通過基因工程方法,明確抗旱基因上下游調控機制以及多基因互作效應;研究轉錄因子在高粱抗旱信號轉導過程中作用的同時,明確各轉錄因子之間的相互作用,進而明確其抗旱的分子機制,最終利用基因組編輯技術改良高粱耐旱性。

6.2 高粱抗旱性鑒定體系

現階段,高粱抗旱性鑒定體系主要包括抗旱鑒定指標、抗旱鑒定方法和高粱抗旱性評價。 然而目前高粱抗旱性鑒定和評價方法還不夠系統:例如,萌發期進行抗旱性鑒定時,會受到種子發芽力的影響;苗期進行抗旱性鑒定時,其鑒定的指標與產量沒有明顯的關聯,導致鑒定結果說服力不足;全生育期進行抗旱性鑒定時,會受到外界環境因素的干擾,導致需要多年的重復試驗才可能獲得認可,試驗準確度低、周期長。 因此,可以將高粱各個生長時期相結合,并配合不同的試驗地點、試驗材料和不同的鑒定指標進行綜合鑒定;同時,可以將室內室外試驗相結合,以獲得較為科學、準確的數據;也可以結合不同品種在不同區域的生長特點,以及該區域旱災發生的時間,提出適合本地區的一套系統的、完善的抗旱性鑒定技術規程。這樣不僅可以提高高粱抗旱性品種的選擇效率,同時還可以為后人提供可靠的抗旱性優良的高粱品種。

6.3 高粱抗旱性品種選育

培育抗旱性高粱品種是減少干旱脅迫造成減產的首要選擇,可以耐旱性高粱雜種優勢利用為基礎,通過耐旱性高粱種質的發掘與創新利用,結合第二代和第三代雜交的育種技術,大面積選育優質穩產的高粱耐旱新品種。 從分子水平上看,可將抗旱性QTL 位點和分子標記進行分解,對抗旱性基因進行精細定位,尋找與目的基因緊密連鎖的分子標記。 在應用過程中,可以通過常規育種和QTL 定位相結合的方法,選用優良的高粱抗旱品種來進行標記篩選,極大提高基因定位的效率,促進分子標記輔助育種和常規育種相結合,加速優良抗旱高粱品種的選育步伐;還可以通過人工智能決策系統設計最佳的育種方案,進而定向、高效改良和培育抗旱性新品種。

參 考 文 獻:

[1] 屈春艷. 水旱條件下小麥產量性狀和抗旱性的全基因組關聯分析[D]. 泰安:山東農業大學,2018.

[2] Chandra P,Wunnava A,Verma P, et al. Strategies to mitigatethe adverse effect of drought stress on crop plants—influencesof soil bacteria: a review [ J]. Pedosphere, 2021,31 ( 3):496-509.

[3] 李瑞雪,孫任潔,汪泰初,等. 植物抗旱性鑒定評價方法及抗旱機制研究進展[J]. 生物技術通報,2017,33(7): 40-48.

[4]Essien M A, Pistorius E. A review on physiological contriv ̄ances of drought tolerance in sorghum, genetic basis and breed ̄ing methods[J].Global Journal of Plant Breeding and Genet ̄ics, 2016,3(8): 248-259.

[5] 宋迎輝,朱燦燦,代書桃,等. 高粱GATA 基因家族的全基因組鑒定及表達分析[J]. 山東農業科學,2022,54(8):14-23.

[6] 王玉斌,平俊愛,牛皓,等. 粒用高粱種質中后期抗旱性鑒定篩選與分類指標評價[J]. 中國農業科學,2019,52(22):4039-4052.

[7] 王玉斌,牛皓,呂鑫,等. 旱敏感型與耐旱型高粱材料對干旱脅迫反應的轉錄組差異分析[J]. 分子植物育種,2022,20(20): 6656-6667.

[8] 梁佳,馬依努吾斯曼,方志剛. 外源生長物質對干旱脅迫條件下甜高粱種子萌發的影響[J]. 草地學報,2021,29(3): 610-617.

[9] 王志恒,魏玉清,鄒芳,等. PEG-6000 和鹽堿脅迫對甜高粱種子萌發影響研究[J]. 種子,2019,38(5): 39-43.

[10] 馮曉東,王悅,王曉潔,等. 聚乙二醇模擬干旱對甜高粱幼苗生長及抗旱性的影響[J]. 延安大學學報(自然科學版),2015,34(1): 33-36.

[11] 張笑笑. 基于多重表型分析的高粱萌發期和苗期抗旱性比較研究[D]. 綿陽:西南科技大學,2019.

[12] 郝培彤,李玉龍,欒瑞濤,等. 21 份引進BMR 飼草高粱萌發期苗期耐旱耐鹽性評價[J]. 草業科學,2018,35(5): 1199-1207.

[13] Zhang F, Zhu K, Wang Y Q, et al. Changes in photosyntheticand chlorophyll fluorescence characteristics of sorghum underdrought and waterlogging stress[J]. Photosynthetica, 2019,57(4): 1156-1164.

[14] 周娜娜,馮素萍,高新生,等. 植物光合作用的光抑制研究進展[J]. 中國農學通報,2019,35(15): 116-123.

[15] Fatma M, Iqbal N,Sehar Z, et al. Methyl jasmonate protectsthe PS Ⅱ system by maintaining the stability of chloroplast D1protein and accelerating enzymatic antioxidants in heat ̄stressedwheat plants[J]. Antioxidants,2021,10(8): 1216.

[16] 張姣,吳奇,周宇飛,等. 苗期和灌漿期干旱-復水對高粱光合特性和物質生產的影響[J]. 作物雜志,2018(3): 148-154.

[17] 邵瑞鑫,李蕾蕾,鄭會芳,等. 外源一氧化氮對干旱脅迫下玉米幼苗光合作用的影響[J]. 中國農業科學,2016,49(2): 251-259.

[18] 王祁,陳昆,石紅梅,等. 干旱脅迫對甜高粱光合特性、葉綠素熒光、SPAD 及根系活力的影響[ J]. 天津農業科學,2020,26(12): 18-22.

[19] Kishor P B K,Sreenivasulu N. Is proline accumulation per secorrelated with stress tolerance or is proline homeostasis a morecritical issue? [ J]. Plant, Cell & Environment, 2014, 37(2): 300-311.

[20] 張玉霞,李珍,朱愛民,等. 不同飼用高粱品種苗期抗旱生理特性研究[J]. 內蒙古民族大學學報(自然科學版),2020,35(1): 69-74.

[21] 王艷秋,張飛,朱凱,等. 抗旱型高粱開花前期和后期應對水分虧缺的生理調節研究[J]. 山西農業大學學報(自然科學版),2020,40(3): 37-44.

[22] 董喜存,李巖,李文建,等. 聚乙二醇模擬干旱對甜高粱幼苗丙二醛、脯氨酸含量的影響[J]. 云南農業大學學報(自然科學版),2010,25(5): 726-730,736.

[23] 王嘉佳,唐中華. 可溶性糖對植物生長發育調控作用的研究進展[J]. 植物學研究,2014,3(3): 71-76.

[24] 何瑋,張麗. 干旱脅迫對大力士甜高粱幼苗生理生化指標的影響研究[J]. 草業與畜牧,2016(3): 22-27.

[25] Gill P K, Sharma A D, Singh P, et al. Changes in germina ̄tion, growth and soluble sugar contents of Sorghum bicolor(L.) Moench seeds under various abiotic stresses[J]. PlantGrowth Regulation, 2003,40(2): 157-162.

[26] 榮少英,郭蜀光,張彤. 干旱脅迫對甜高粱幼苗滲透調節物質的影響[J]. 河南農業科學,2011,40(4): 56-59.

[27] 劉俊羽,楊帆,毛爽,等. 植物脂質應答逆境脅迫生理功能的研究進展[J]. 生物工程學報,2021,37(8): 2658-2667.

[28] 何凌仙子,賈志清,劉濤,等. 植物適應逆境脅迫研究進展[J]. 世界林業研究,2018,31(2): 13-18.

[29] Mirza H,Khursheda P,Kirti B, et al. Biostimulants for the reg ̄ulation of reactive oxygen species metabolism in plants underabiotic stress[J]. Cells, 2021,10(10): 2537.

[30] 白英俊,李國瑞,黃鳳蘭,等. 活性氧與植物抗氧化系統研究進展[J]. 安徽農業科學,2017,45(36): 1-3.

[31] 張俊霞,劉曉鵬,向極釬. 植物抗氧化系統對逆境脅迫的動態響應[J]. 湖北民族學院學報(自然科學版),2015,33(4): 435-439.

[32] Dumanovic' J,Nepovimova E,Natic' M, et al. The significance ofreactive oxygen species and antioxidant defense system inplants: aconcise overview [ J]. Frontiers in Plant Science,2021,11: 552969.

[33] 陳敏菊,孟彥,孟憲政. 干旱脅迫對甜高粱幼苗光合色素、保護酶活性及活性氧代謝的影響[ J]. 天津農業科學,2021,27(9): 1-4.

[34] 盧峰,張飛,段有厚. 干旱脅迫對高粱苗期物質生產及生理特性的影響[J]. 作物雜志,2015(2): 149-153.

[35] Elahi N N, Raza S,Rizwan M S, et al. Foliar application ofgibberellin alleviates adverse impacts of drought stress and im ̄proves growth, physiological and biochemical attributes of cano ̄la (Brassica napus L.)[J]. Sustainability, 2022,15(1): 78.

[36] 項洪濤,李琬,何寧,等. 外源脫落酸(ABA)調節植物抗旱機制的研究進展[J]. 東北農業科學,2022,47(5): 37-41.

[37] 李蘇濤,陳思齊,李妍,等. 3 種植物生長調節劑對不同干旱脅迫下巨菌草光合指標的影響[J]. 草業科學,2021,38(12): 2406-2420.

[38] Shi H T, Chen L, Ye T T, et al. Modulation of auxin contentin Arabidopsis confers improved drought stress resistance[J].Plant Physiology and Biochemistry, 2014,82: 209-217.

[39] 李園園,陳永忠,羅秀云,等. 作物響應干旱脅迫應答的分子機制[J]. 化學與生物工程,2015,32(12): 3-8.

[40] 蔣超,盧天成,李毅丹,等. 赤霉素在非生物脅迫中的作用[J]. 生物技術通報,2016,32(5): 11-15.

[41] 陳冰嬬,徐寧,李淑杰,等. 高粱親本系萌發期抗旱性鑒定[J]. 中國農業大學學報,2018,23(8): 17-29.

[42] 候文慧,張玉霞,陳衛東,等. 飼用高粱品種種子萌發期抗旱性篩選[J]. 內蒙古民族大學學報(自然科學版),2021,36(1): 67-72.

[43] 趙曉倩. 高粱苗期抗旱種質資源鑒選和全基因組關聯分析[D]. 長春:吉林農業大學,2022.

[44] 劉婷婷,陳道鉗,王仕穩,等. 不同品種高粱幼苗在干旱復水過程中的生理生態響應[J]. 草業學報,2018,27(6):100-110.

[45] 李舒凡. 高粱苗期抗旱性鑒定方法與指標的再探討[J]. 作物品種資源,1999(3): 44-45.

[46] 汪燦,周棱波,張國兵,等. 酒用糯高粱資源成株期抗旱性鑒定及抗旱指標篩選[J]. 中國農業科學,2017,50(8):1388-1402.

[47] 袁闖,許興,毛桂蓮,等. 甜高粱成熟期抗旱性指標篩選與評價方法[J]. 干旱地區農業研究,2020,38(1): 280-289.

[48] Abdel ̄Ghany S E, Ullah F, Ben ̄Hur A, et al. Transcriptomeanalysis of drought ̄resistant and drought ̄sensitive sorghum(Sorghum bicolor ) genotypes in response to PEG ̄induceddrought stress[J]. International Journal of Molecular Sciences,2020,21(3): 772.

[49] 江佰陽,白文斌,張建華,等. 高粱抗旱性鑒定方法及分子生物學研究進展[J]. 生物技術通報,2021,37(4): 260-272.

[50] Dugas D V, Monaco M K, Olsen A, et al. Functional annota ̄tion of the transcriptome of Sorghum bicolor in response to os ̄motic stress and abscisic acid[J]. BMC Genomics, 2011,12:514.

[51] Zhang D F, Zeng T R, Liu X Y, et al. Transcriptomic profilingof sorghum leaves and roots responsive to drought stress at theseedling stage[J]. Journal of Integrative Agriculture, 2018,18(9): 1980-1995.

[52] 王志恒,玉清,趙延蓉,等. 基于轉錄組學比較研究甜高粱幼苗響應干旱和鹽脅迫的生理特征[J]. 草業學報,2022, 31(3): 71-84.

[53] Xu D X,Ni Y,Zhang X F,et al. Multiomic analyses of twosorghum cultivars reveals the change of membrane lipids in theirresponses to water deficit[J]. Plant Physiology and Biochemis ̄try,2022,176: 44-56.

[54] 趙輝. 高粱的抗旱性比較及抗旱相關性狀的QTL 定位[D].杭州:浙江師范大學,2014.

[55] Haussmann B I G,Mahalakshmi V, Reddy B V S, et al. QTLmapping of stay ̄green in two sorghum recombinant inbred popu ̄lations[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2002,106(1):133-142.

[56] Sakhi S,Shehzad T,Rehman S, et al. Mapping the QTLs un ̄derlying drought stress at developmental stage of sorghum (Sor ̄ghum bicolor (L.) Moench) by association analysis[J]. Eu ̄phytica, 2013,193(3): 433-450.

[57] Sukumaran S, Li X, Li X R, et al. QTL mapping for grainyield, flowering time, and stay ̄green traits in sorghum withgenotyping ̄by ̄sequencing markers[J]. Crop Science, 2016,56(4): 1429-1442.

[58] Xin Y, Gao L N, Hu W M, et al. Genome ̄wide associationstudy based on plant height and drought ̄tolerance indices re ̄veals two candidate drought ̄tolerance genes in sweet sorghum[J]. Sustainability, 2022,14(21): 14339.

[59] 高奇. 甜高粱耐旱相關性狀全基因組關聯分析[D]. 阿拉爾:塔里木大學,2021.

[60] 楊偉,劉勇,郝艷芳,等. 優質抗旱宜機械化高粱新品種潞雜9 號的選育[J]. 中國種業,2021(12): 109-110.

[61] 楊婷婷,平俊愛,張福耀,等. 高粱雜交種晉雜31 號選育報告[J]. 現代農業科技,2015(18): 47-48.

[62] 李繼洪,李淑杰,胡喜連,等. 飼草高粱雜交種吉草3 號的選育及栽培技術[J]. 畜牧與飼料科學,2012,33(5/6): 70-71.

[63] Ahmed M, Asif M, Hassan F. Augmenting drought tolerance insorghum by silicon nutrition[J]. Acta Physiologiae Plantarum,2014,36(2): 473-483.

[64] 張瑞棟,梁曉紅,劉靜,等. 種子引發對干旱脅迫下高粱種子發芽及生理特性的影響[J]. 作物雜志,2022(6): 234-240.

[65] Tounekti T,Mahdhi M, Al ̄Faifi Z, et al. Priming improvesgermination and seed reserve utilization, growth, antioxidantresponses and membrane stability at early seedling stage of Sau ̄di sorghum varieties under drought stress[J]. Notulae Botani ̄cae Horti Agrobotanici Cluj ̄Napoca, 2020,48(2): 938-953.

[66] Kamali S, Mehraban A. Nitroxin and arbuscular mycorrhizalfungi alleviate negative effects of drought stress on Sorghum bi ̄color yield through improving physiological and biochemicalcharacteristics[J].Plant Signaling & Behavior, 2020,15(11):1813998.

[67] Kamali S, Mehraban A. Effects of Nitroxin and arbuscular my ̄corrhizal fungi on the agro ̄physiological traits and grain yield ofsorghum (Sorghum bicolor L.) under drought stress conditions[J]. PLoS ONE, 2020,15(12): e0243824.

[68] Shehab A A, Yao L H, Wei L L, et al. The increased hydrocy ̄anic acid in drought ̄stressed sorghums could be alleviated byplant growth regulators[J]. Crop and Pasture Science, 2020,71(5): 459-468.

[69] Jin X Y, Zheng Y C, Wang J Y, et al. SbNAC9 improvesdrought tolerance by enhancing scavenging ability of reactiveoxygen species and activating stress ̄responsive genes of sor ̄ghum[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2023,24(3): 2401.

[70] 楊茂,林宇豐,戴陽朔,等. OsDIS1 通過抗氧化途徑負調控水稻耐旱性[J]. 生物技術通報,2023,39(2): 88-95.

[71] Li D N,GuoB X,Huang C X, et al. Functional Study of Amor ̄phafruticosa WRKY20 gene in response to drought stress[J].International Journal of Molecular Sciences,2023,24 ( 15):12231.

[72] Qiu S,Zhang J,He J Q, et al. Overexpression of GmGolS2-1,a soybean galactinol synthase gene, enhances transgenic tobac ̄co drought tolerance[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Cul ̄ture,2020,143(3): 507-516.

[73] 王艷珂,黎飛飛,陳二影,等. 谷子NCED3 基因克隆及生物信息學和表達模式分析[J]. 山東農業科學,2022,54(9):1-7.

[74] 彭運鵬. 水稻耐旱性調控網絡節點基因OsMYB105 的克隆及其功能研究[D]. 武漢:華中農業大學,2022.

[75] Fennell H W W,Ullah H, van Wignen A J, et al. Arabidopsisthaliana and Oryza sativa receptor for activated C kinase 1(RACK1) mediated signaling pathwayshows hypersensitivity tooxidative stress[J].Plant Gene,2021,27: 100299.

[76] 盧琳. OsOFP19 過表達轉基因水稻農藝性狀與干旱響應的鑒定與分析[D]. 長春:吉林大學,2022.

[77] 周鐵. 擬南芥F-box 基因AHF 調節ABA 響應的研究[D].長春:吉林大學,2021.

[78] 黃瑩琳,張志,張洪亮,等. AhBG1 轉基因擬南芥的ABA 敏感性和抗旱性研究[J]. 華南師范大學學報(自然科學版),2021,53(1): 56-62.

[79] Wang Y,Wang Q Q,Liu M L, et al. Overexpression of a maizeMYB48 gene confers drought tolerance in transgenic arabidopsisplants[J]. Journal of Plant Biology,2017,60(6): 612-621.

[80] 劉莉. OsMIR1423 在調控水稻干旱脅迫響應中的功能分析[D]. 成都:電子科技大學,2022.

[81] Liu G Z,Li X L,Jin S X, et al. Overexpression of rice NACgene SNAC1 improves drought and salt tolerance by enhancingroot development and reducing transpiration rate in transgeniccotton[J]. PLoS ONE,2017,9(1): e86895.

[82] 趙冰兵. 玉米ZmMKKK18 基因的抗旱生物學功能鑒定[D]. 太原:山西大學,2019.

[83] Loni F, Ismaili A,Nakhoda B, et al. The genomic regions andcandidate genes associated with drought tolerance and yield ̄re ̄lated traits in foxtail millet: an integrative meta ̄analysis ap ̄proach[J]. Plant Growth Regulation,2023,101(1): 169 -185.

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