體外腸道細胞模型及其在評價花青素吸收轉運中的研究進展

鐘 浩，徐 潔，陳 玲，劉曉鳳，關榮發,*

（1.浙江工業大學食品科學與工程學院，浙江 杭州 310014；2.海南省食品藥品檢驗所三亞分所，海南 三亞 572011）

花青素是一種膳食類黃酮，被廣泛應用于食品藥品中?；ㄇ嗨卦谖改c道會被降解，同時受pH值、糖苷鍵結構、消化酶、腸道微生物群等因素的影響[1-2]?；ㄇ嗨氐纳锢枚仁瞧浒l揮功能活性的基礎，即花青素通過消化道吸收轉運后進入血液的含量，但花青素不穩定且易被降解，這使得花青素的生物可及性和生物利用度非常有限。數十年來已有諸多研究通過體內體外模型探究功能活性成分在腸道的吸收利用，雖然動物模型可以模擬整個生物體的生理機能，但體內模型往往由于物種之間的差異而導致反應的變化不同，以及難以將結果外推到人類身上。近年來，細胞培養模型已廣泛應用于食品和藥學領域的生物利用度和毒理學研究[3-4]。因此利用模擬體外胃腸道消化和腸道細胞模型能夠較好地模擬人體對花青素的吸收利用。目前，細胞模型廣泛應用于不同食品生物活性物質的吸收轉運研究，基于此背景，本文綜述了二維和三維腸道細胞培養模型的研究進展，并探討了其在花青素吸收轉運相關研究中的應用。

1 腸上皮的結構與功能

腸道微環境主要由腸道微生物群與其生活的微環境構成，其中包括腸上皮細胞與覆蓋上皮細胞的若干黏膜屏障，如含有抗菌分子的黏液層。腸上皮主要由杯狀細胞、腸上皮細胞、腸內分泌細胞、增殖細胞、腸干細胞和潘氏細胞等組成[5]（圖1）。腸內分泌細胞可以釋放肽激素，這與組織修復、血管生成、腸細胞分化和極化有關[6]。杯狀細胞可產生黏液，作為抵御有害物質或微生物感染的保護層[7]。同樣地，位于隱窩基部的腸干細胞也可以分化為其他腸細胞，從而維持腸道的完整性[8]。腸上皮細胞可以產生黏膜屏障，以隔離腸道微生物群及腸道免疫細胞，維持腸道穩態。黏膜屏障主要包括化學屏障和物理屏障?；瘜W屏障由AMP和Reg3系列蛋白組成，這些蛋白受到腸道內部環境和免疫細胞細胞因子調節；物理屏障則主要包括覆蓋腸黏膜的黏液層、腸吸收細胞微絨毛上的糖萼和腸上皮細胞的細胞間連接。

圖1 腸上皮細胞圖Fig.1 Schematic of intestinal epithelial cells

2 體外腸道細胞模型

腸道是一個復雜的系統，存在著許多細胞間相互作用和微生物群，腸道細胞模型應盡可能考慮這些因素。常見的體外腸道模型包括二維細胞培養與三維模型。二維培養是指在平面或Transwell小室培養單細胞或多細胞的細胞模型（圖2，表1、2），常用的細胞系有Caco-2細胞、HT29細胞、T84細胞、IEC細胞等（表3）。常見的二維共培養是以Caco-2細胞為基礎，并結合其他細胞系共培養以向細胞模型添加特定功能，如黏液分泌和免疫反應。三維培養的細胞在細胞外基質（extracellular matrix，ECM）中或特定的器材中培養，它的目的是提供一種細胞微環境，從而使模型更加接近組織的生理和動態特性。

表1 Transwell小室常見的滲透膜種類Table 1 Common types of permeable membranes used in Transwell chambers

表2 腸道吸收模型常見的細胞種類Table 2 Common cell types used in intestinal absorption models

表3 常見的腸道細胞及其特征Table 3 Common intestinal cells and their characteristics

圖2 常見的腸道細胞模型Fig.2 Common intestinal cell models

2.1 腸道吸收的單培養細胞模型

2.1.1 Caco-2細胞

Caco-2細胞系是Fogh等首次從人結腸腺癌中分離出來的細胞系，最初被運用于藥物的篩選及耐藥機制的研究[9]，是目前應用最為廣泛的體外藥物分子腸道吸收細胞模型[10]，其結構簡單、適應性強、同源性和重現性較好[11]。Caco-2細胞在長達21 d的培養過程中能夠自發分化，因此盡管Caco-2細胞起于結腸，但它分化后表現出成熟腸上皮細胞的形態學和功能學特征，具體表現為細胞單層的多種轉運體、受體和代謝酶，如細胞色素P4501A、谷胱甘肽S-轉移酶等。Shirai等[12]利用不同的轉運抑制劑鑒定瓊脂寡糖穿過Caco-2細胞單層的腸道轉運機制，結果表明瓊脂寡糖能以較為完整的形式以細胞旁途徑透過腸上皮。Caco-2細胞也被證明能夠通過產生炎癥標志物（如細胞因子）響應其他細胞因子（如白細胞介素-1β、腫瘤壞死因子-α和外源性刺激的反應（如脂多糖）[13]。然而，Caco-2細胞系有一定的局限性，包括形成與培養時間和傳代數相關的異質單層，這與培養條件、細胞系本身及傳代數是密切相關的[14]。目前，人們通過誘導方法獲得不同的Caco-2細胞系以降低其變異性，如Caco-2/TC7、Caco-2/15、Caco-2/AQ細胞等。TC7細胞來自Caco-2系的晚期傳代（198），通過保留其形態和功能特征使其分化速度快于親本系，它所形成的細胞單層也更均勻穩定。

2.1.2 HT29細胞

HT29細胞是一種人結腸腺癌細胞[9]，由于其成熟腸細胞的典型特征而越來越受到關注，其形態及黏附能力（可分泌黏液，主要由糖蛋白低聚物和相關單體組成[15]）同腸上皮細胞類似，因此該細胞模型被廣泛用于研究生物利用度、腸道吸收機制或細胞毒理學[16]。Anna等[17]在HT29細胞系中探究不同濃度MgO納米顆粒的細胞毒性和遺傳毒性發現，MgO納米顆粒在HT29細胞中無細胞毒性，不會誘導腸上皮細胞的凋亡。同Caco-2細胞不同，HT29細胞可以分化為杯狀細胞，這取決于細胞培養過程中的營養物質和培養條件，特別是葡萄糖[18-19]，故而該細胞系也可用于研究腸上皮細胞分化的體外模型。在標準培養條件下，這些細胞以非極化、未分化的單層形式生長。然而，改變培養條件或用不同的誘導劑處理會導致細胞分化和極化，主要表現為抗原的重新分配和頂端刷狀邊界膜的發展[16]。同樣地，HT29細胞可以在特定條件下被分化為不同的表型，如HT29-FU、HT29-18N2、HT29-MTX等，其中又以HT29-MTX更為穩定，它是利用高濃度的甲氨蝶呤誘導分化HT29而形成的[20]。同其他表型相比，HT29-MTX可以更好地模擬腸道細胞黏液層，因此它們大部分與Caco-2吸收細胞共培養，利用Caco-2細胞的緊密細胞結構以創建一個更適合的體外腸道模型模擬腸上皮細胞。

2.1.3 T84細胞

T84細胞系是由Murakami等于1980年分離得到的人結腸癌細胞系，在結構上與正常腸道細胞相似[21]，其于滲透支架上培養時會形成微絨毛結構和細胞緊密連接。同Caco-2細胞的自發分化不同，T84細胞只有在特定條件誘導下才可以分化，即在人重組轉化生長因子等誘導條件下[22]。目前，T84已被廣泛地用于研究細胞轉運過程及腸道炎癥的相關信號通路。Mehmood等[23]利用膽汁酸誘導的T84細胞研究益生菌對腸道健康的影響，通過流式細胞儀和乳酸脫氫酶活性檢測發現，益生菌可以顯著抑制細胞凋亡和氧化應激的效應，從而改善腸炎患者的不良性腹瀉。Cray等[24]在體外使用T84細胞模型和小鼠空腸評估阿霉素對緊密連接基因表達和蛋白質定位的影響，結果發現，阿霉素通過改變細胞緊密連接基因的表達和其動態松弛，增加了小分子（包括細菌產物）通過上皮細胞的旁細胞轉運。

2.1.4 IEC細胞

IEC細胞系是由Quaroni等[25]首次從大鼠回腸隱窩細胞分離出來而建立的細胞株，這種細胞系具有隱窩細胞的高度分化特性，能夠分化為成熟的腸上皮細胞，形成偽單層，表現為微絨毛、緊密連接和類似于基底膜的無定形物質，很難在體外誘導其分化，但通過小鼠腸道間質的處理可令其分化為吸收細胞、杯狀細胞、內分泌細胞和潘氏細胞等[26]。該細胞系主要包括IEC-18、IEC-6、IEC-14細胞，其中IEC-18細胞系是最常見的腸屏障模型，主要用于研究營養素的吸收消化及其滲透性[27]，IEC-6細胞系已被廣泛用于研究細胞中的分子和遺傳機制。López-Posadas等[28]探究了類黃酮化合物對IEC-18細胞環氧合酶2表達的影響，結果發現黃酮類化合物對環氧合酶2表達的影響取決于IkappaB-α磷酸化和其他信號靶點的平衡。在丙烯醛誘導的IEC-6細胞中，靈芝多糖可顯著降低細胞氧化應激和細胞凋亡水平，并通過調節哺乳動物雷帕霉素靶蛋白信號通路降低細胞自噬水平，恢復丙烯醛抑制的TJ蛋白表達[29]。同Caco-2細胞相比，IEC細胞系能更好地揭示細胞旁途徑的轉運機制，特別是Caco-2細胞無法預測的親水性化合物，但是IEC細胞系具有極大的不穩定性，因為其缺乏許多載體與酶類，如細胞間緊密連接發育不良和輕微極化，并呈現出刷狀邊界酶的低表達[30]。

2.2 腸道吸收的共培養細胞模型

通過建立不同類型細胞的共培養模型，使研究細胞-細胞相互作用和研究這些相互作用對生長、分化和免疫反應的影響成為可能。目前，大多數涉及腸道細胞和免疫細胞的共培養模型主要是利用標準的Transwell小室，其中腸道細胞（接種于AP側）與免疫細胞（接種于BL側）并不直接接觸，而是使用倒置模型被接種在同一個隔間中，因此多用于研究免疫細胞向腸細胞的遷移。然而，共培養模型仍存在局限性，如缺乏細胞-細胞的相互作用、細胞-基質的相互作用，但其仍然是研究腸道炎癥、食品成分與腸道相互作用的有效工具。目前應用較多的主要是Caco-2細胞/HT29細胞和Caco-2細胞/靶細胞（肝細胞和免疫細胞）兩大類。

2.2.1 Caco-2細胞/HT29細胞

在Caco-2細胞和HT29細胞共培養的細胞模型中，由于黏液在藥物轉運中的作用，使得實驗結果可預測性更高[31]。同Caco-2細胞單層相比，Caco-2細胞與HT-29細胞共培養顯示出具有緊密連接的刷狀邊界膜與不規則微絨毛，此外，被動擴散化合物的滲透性更加接近于機體；相反，共培養模型P-糖蛋白（P-glycoprotein，P-gp）的表達水平較低，并且P-gps的數量與HT29細胞的比例呈反比關系。為了探究三甲基殼聚糖衍生物納米顆粒在體外和體內腸道吸收的特性和機制，Zhao Ying等[32]在Caco-2細胞和Caco-2細胞/HT29細胞共培養細胞模型中研究了該納米顆粒包封三七皂苷的攝取和轉運，發現其可以通過降低緊密連接增強藥物的細胞旁途徑轉運，并利用腸上皮細胞的滲透性增加藥物的腸道黏附。Cai Ye等[33]首次研究了自乳化藥物遞送系統在大鼠黏液、黏蛋白溶液、Caco-2細胞單層和Caco-2細胞/HT29細胞共培養單層系統中遞送親脂性醛肉桂醛的能力，結果發現共培養模型有著更高的藥物滲透性，自乳化藥物遞送系統的生物利用度更高。也有研究報道Raji B細胞可以在Caco-2細胞中誘導M細胞表型（較少的微絨毛結構和跨細胞活性的較大提升[34]），因而Antunes等開發了一種三重共培養模型[35]，即將Caco-2細胞和HT29細胞共培養后接種至Transwell的AP側，Raji B細胞接種至BL側建立正向模型，同時建立反向模型，即將Transwell小室倒置，然后將Caco-2細胞與HT29細胞接種至滲透膜上，再將Raji B細胞接種至AP側進行共培養。結果表明三重共培養可用于獲得更多與生理相關的腸道體外模型，以更好地評價和預測腸道吸收機制。

2.2.2 Caco-2細胞/靶細胞

除了同HT29細胞共培養形成腸屏障模型外（黏液分泌、緊密連接蛋白、刷狀邊緣），Caco-2細胞也可以同其他細胞共培養用以研究食品功能成分的吸收表達，如肝細胞、免疫細胞等。這種共培養模型通常利用Transwell小室，將Caco-2細胞接種于Transwell小室AP側，靶細胞接種于BL側進行培養，從而達到間隔培養的效果。腸道免疫細胞是腸道細胞中數量第二多的細胞類型，也是最常見的共培養細胞之一，用于與腸道細胞系建立共培養模型的主要免疫細胞包括人外周血單個核細胞（PBMC）、人巨噬細胞系（THP-1）或小鼠來源的巨噬細胞系（RAW 264.7）等。已有許多研究利用Caco-2細胞與免疫細胞共培養研究食品天然產物的抗炎活性，但吸收轉運相關研究相對較少。由Caco-2細胞和RAW 264.7細胞構成的共培養模型曾被用于驗證糖原的免疫調節活性和樟樹籽仁乙醇提取物的腸道抗炎活性[36]。Zhang Hua等[37]利用Caco-2細胞單層和Caco-2、THP-1細胞共培養細胞模型探究花青素的生物利用度及抗炎作用。Laar等[38]曾利用Caco-2細胞與HepG2細胞共培養研究不同糖類對肝臟脂肪積累及基因表達的影響。也有實驗利用Caco-2細胞與EA.hy926融合細胞共培養以研究部分植物提取物的抗炎活性[39]。

2.3 腸道吸收的三維細胞模型

近年來，三維細胞模型的建立技術日趨成熟，它可以更真實地模擬天然組織的生理活性，通常應用于制藥領域，主要是藥物篩選的相關研究。隨著生物工程技術的進步，三維細胞模型可以使用不同的平臺進行設計，如三維支架、類器官、微流體模型等。最近，Richter等[40]曾使用Caco-2細胞和2D、3D鼠類器官研究英夫利昔單抗和與潑尼松龍對腸上皮屏障的影響。將細胞進行三維共培養能夠更好地模擬原生環境，從而使得藥物的滲透性更加接近于機體[36]。

2.3.1 三維支架

利用傳統的細胞單層模型和細胞共培養模型模擬機體腸道仍然是一個挑戰，而三維支架作為細胞增殖、分化和遷移的支持物能更好地作用于細胞[41]。三維支架是以部分生物材料與細胞一起構建基底細胞層，用于模擬組織的結構。這些生物材料要能夠確保營養成分的充分擴散，允許細胞黏附[42]，通常包括一些合成材料（聚二甲基硅氧烷）和細胞外材料（基質膠），其中聚二甲基硅氧烷和水凝膠應用最為廣泛。

三維結構的細胞模型非常接近天然腸上皮，這增加了實驗模型預測通過被動擴散和主動運輸攝入藥物的可能性，這無關所使用的支架材料是何種類型[43]。有研究表明，同二維Caco-2細胞模型相比，三維Caco-2細胞模型藥物滲透系數更高，藥物細胞旁途徑也顯示出更高的滲透率，這表明三維細胞結構有著與人體更為類似的腸道屏障功能，這可以增強對腸道動力學預測的準確性[44-45]。有報道表明，通過比較在水凝膠上培養的Caco-2細胞與2D單層培養的Caco-2細胞的吸收和代謝特性發現，3D模型中的細胞表現出更為類似機體的蛋白表達，代謝酶和堿性磷酸酶的比活性也得到了改善，證明了該3D模型更適用于藥物的吸收轉運研究[46]。部分三維支架使用純化的膠原蛋白為基礎，從而可以嵌入不同的細胞系，如免疫細胞等，這可以加強細胞間的相互作用。這些模型還探索成功支持Caco-2細胞和HT29-MTX細胞與顯著的基質細胞（即成纖維細胞和免疫活性巨噬細胞）共培養的能力。這一設置顯示了一個三維更大的吸收表面積，降低了跨膜電阻（trans-epithelial electrical resistance，TEER）值并促進黏性黏液層的形成。為了評估藥物吸收，Li Na等[47]用Caco-2細胞和HT29-MTX細胞接種在膠原基質上構建三維支架，并將THP-1細胞接種到Transwell小室BL側，其滲透性更低，但低吸收率藥物的攝取量也隨之增加。總之，這些結果表明基于三維支架的細胞模型有更加類似于腸道的天然特征和功能，也可以根據不同的實驗需求組合不同的細胞系，這在藥物篩選方面具有很大潛力[48]。

2.3.2 類器官模型

雖然細胞支架在許多結構和功能方面復制了原始組織，但它們具有一些局限性，如三維組織結構不完整、多細胞復雜性較低以及缺乏天然組織所顯示的物理力。腸道類器官是指能夠在體外生長的微型腸道模型，其可以重現天然腸道組織中的特征，即由微絨毛結構與隱窩組成的高度折疊的上皮結構[49]。類器官來源于從胚胎或成熟隱窩中分離出來的腸道干細胞（intestinal stem cells，ISC）的增殖。在特定的細胞培養條件下，ISC增殖并形成球狀（100～700 μm），促進其分化為腸上皮、間充質和管腔樣結構[50]，由于其來源稀少，且管腔形態封閉，導致成本高、操作難，目前用于食物成分吸收和利用的研究為數不多，主要用于研究腸道微生物群與臨床醫學等。Lee等[51]從小鼠小腸中分離出來ISC嵌入基質膠中加入生長因子進行培養，觀察到ISC特定標志物的表達和類器官的連續生長。

此外，由于類器官的形狀隨培養時間和環境的變化而變化，因此很難維持穩定狀態[52]，特定的結構也限制了其用于研究許多關鍵腸道功能（如腸屏障模型的吸收轉運）。但目前已有研究提出了解決方法，如顯微注射技術用于檢測食品成分的吸收轉運[53]，或通過機械作用破環其三維結構[54]。

2.3.3 微流體模型

三維流體動力學體外模型是很有前景的工具，其克服了影響靜態培養的限制，對腸道復雜的生理學重現性較好，再現了類似體內的動態微環境，同時具有較高的模擬速率和均一性[55]，但由于其體積的限制和模型標準不同其數據仍無法共享。微流體模型被定義為微型細胞培養平臺，旨在模擬人體組織/器官[56]。這項先進技術通過按需控制生物物理和生化因素，概括了復雜的宿主微環境的許多特征，從而實現關鍵生物過程和疾病狀態的重現。為了探究納米藥物對胃腸黏膜的黏附和滲透性，Elberskirch等[57]開發了一種基于HT29-MTX-E12細胞的新型方法產生具有微絨毛和表面黏液層的腫瘤球狀體，其將3D腫瘤球體與微流控芯片系統相結合以模擬腸道內的動態環境。

生物芯片是一種微流體裝置，其目的是在有限的區域內盡可能地使模型接近目標模擬組織。Volpe等[45]在微流控裝置中集成了一個模擬人類腸絨毛的膠原蛋白支架培養Caco-2細胞，這促進了腸上皮屏障的形成及細胞色素P4503A4活性的高表達[58]。器官芯片技術也已被用于開發人類結腸的體外模型[59]。Tsamandouras等[60]通過在由原代肝細胞和Kupffer細胞組成的肝臟微陣列上共培養分化的Caco-2細胞和HT29-MTX細胞單層，建立了一個腸-肝微流控模型系統。

2.3.4 三維共培養模型

隨著生物技術的不斷發展，細胞的培養模式已經從傳統的單一培養和Transwell小室上的二維共培養轉變到細胞外基質支持的三維共培養。三維支架的靜態培養和微流體結構的動態培養模型已被廣泛應用于研究功能食品成分的吸收轉運、抗氧化、抗炎及其免疫調節的影響[45]。Susewind等[61]利用膠原蛋白支架將THP-1細胞和人類樹突狀細胞（MUTZ-3）及Caco-2細胞共培養形成一種三維腸道模型用于測定炎癥環境中納米材料的安全性。Darling等[62]構建成纖維細胞和Caco-2細胞的三維共培養細胞模型，發現成纖維細胞可以產生細胞外源性基質為Caco-2細胞提供上皮支持，使得側膜及TEER值更接近于人體腸道以更好地研究藥物的滲透性。

3 腸道吸收模型在花青素中的應用

3.1 花青素的結構與功能

花青素是一類廣泛存在于彩色植物中的藍紅色水溶性黃酮類化合物，是一種天然色素，自然狀態下的花青素以糖苷形式存在，稱為花色苷。自然條件下花青素很少游離存在，而是常與糖類通過糖苷鍵形成花色苷?；ㄇ嗨胤肿又杏懈叨确肿庸曹楏w系，含酸性與堿性基團，花青素易溶于水、乙醇、甲醇、稀堿與稀酸等極性溶劑[63]。花青素具有抗氧化、抗衰老、抗炎、抗菌、保護視力等生理功能，還可以緩解心腦血管疾病、糖尿病、神經退行性疾病、胃腸道疾病等。隨著pH值的變化，花青素的顏色會從紅色變為不同的顏色，如紫色、橙色、無色和藍色[64]。自然界已知的花青素有20多種，以天竺葵色素、矢車菊色素、飛燕草色素、芍藥色素、牽?；ㄉ睾湾\葵色素最為常見（圖3），其中矢車菊色素是自然界中分布最廣泛的花青素。花青素的穩定性取決于其結構中b環、羥基或甲氧基的存在，它被認為是有用的功能性食品成分，并被廣泛應用于食品工業，自然界中常見的花青素結構如表4所示。然而，花青素在機體的生物利用度較低。絕大多數實驗表明，以花青素作為膳食補充劑，在機體中僅有很少的代謝產物在血漿和尿液中以微量水平被檢測到[65]。

表4 圖3結構的花青素種類Table 4 Types of anthocyanins with structure shown in Fig.3

圖3 6 種常見花青素的結構Fig.3 Structures of six common anthocyanins

3.2 花青素在腸道的代謝與吸收轉運

腸道是花青素主要的吸收代謝部位，其生物利用度受到許多因素的影響，如花青素的化學結構、花青素與食物基質的相互作用、其他膳食化合物的存在以及個體的遺傳學和生理學特性。

3.2.1 花青素在腸道中的代謝

在腸上皮細胞、肝臟和腎臟中，被機體吸收的花青素被單獨的代謝酶代謝為葡萄糖醛酸酯、硫酸鹽和甲基化代謝產物[66]。腸道微生物參與花青素代謝、維生素合成和碳水化合物分解代謝，同時伴隨著酶的作用，如α-L-鼠李糖苷酶、β-D-葡萄糖苷酶和β-D-葡萄糖醛酸酶?；ㄇ嗨卦谀c道降解主要經過兩個階段的反應，第一階段包括花青素的氧化、還原和水解。擬桿菌、腸球菌、梭狀芽孢桿菌等腸道菌群可以產生多種酶，特別是β-葡萄糖苷酶、α-半乳糖苷酶和α-鼠李糖苷酶等微生物酶類能夠使糖苷鍵裂解和花青素雜環分解并釋放花青素苷元。然而這些糖苷元在結腸中不穩定，并被快速降解為酚類化合物等，其中主要包括分別由尿苷二磷酸葡萄糖醛酸基轉移酶、硫轉移酶和鄰苯二酚-O-甲基轉移酶催化的葡萄糖醛酸化、硫酸化和甲基化，此即花青素降解的第二階段[67]。在花青素的降解過程中，通常伴隨著腸道微生物群的作用，如擬桿菌屬、雙歧桿菌屬、鏈球菌屬等，天竺葵色素、矢車菊色素、飛燕草色素、芍藥色素、牽?；ㄉ?、錦葵色素的主要降解產物分別為沒食子酸、香草酸、原兒茶酸、4-羥基苯甲酸和丁香酸[68]。花青素降解產生的其他代謝物包括鄰苯二酚、鄰苯三酚、間苯二酚、酪醇、3-(3′-羥基苯基)丙酸、二氫咖啡酸和3-(4′-羥基苯基)乳酸等[69]。

3.2.2 花青素在腸道的吸收轉運

花青素在人體內的生物利用度是指其通過血液進入機體的含量，也就是通常所說的花青素在機體內的吸收、代謝、生物轉化和排泄，但花青素的生物利用度較低，只有5%～10%的攝入量被機體吸收[70]。普遍認為腸道菌群不僅可以提高膳食酚類物質的生物利用度，也可以增強其抗氧化等生物活性[71]。花青素受益于結腸微生物群的降解，這有助于提高花青素的生物利用度，并可能直接提高其抗氧化活性[72]、抑制血管緊張素轉換酶以降低血壓水平、促進糖脂代謝、降低血脂水平和抑制炎癥反應[73]。

在評估花青素在人體的生物利用度時，花青素的吸收轉運是一個很重要的部分。過去的研究表明花青素在腸道的轉運方式主要是被動擴散和主動外排，其中鈉依賴性葡萄糖轉運蛋白1（sodium-glucose cotransporter 1，SGLT1）和葡萄糖轉運蛋白2（glucose transporter type 2，GLUT2）是主要的轉運載體。Herrera-Balandrano等[74]通過模擬體外消化和Caco-2細胞單層模型探究兔眼藍莓花青素提取物的吸收率和穩定性，結果發現兔眼藍莓花青素的吸收以主動運輸為主，而且較低濃度的錦葵色素有著更高的吸收轉運效率，這可能是因為錦葵色素有更強的疏水性，且較高濃度的花青素會使轉運蛋白飽和并降低其轉運效率。Zou Tangbin等[75]利用根皮苷（SGLT1的抑制劑）、根皮素（GLUT2的抑制劑）和Caco-2細胞探究SGLT1和GLUT2在矢車菊素吸收中的作用，結果表明，根皮苷和根皮素顯著抑制了矢車菊素的吸收，這說明SGLT1和GLUT2可能是矢車菊素生物利用度的限制步驟。此外，通過納米載體對花青素進行包封，可以提高其生物利用度和吸收轉運率。Xu Xiankang等[76]通過制備遞送二十二碳六烯酸和花青素的新型脂質體，并結合Caco-2細胞模型與體外消化法評估了這些脂質體的消化和吸收情況，發現磷脂和膽鹽的存在使花青素和二十二碳六烯酸相互作用形成膠束。因此，它們的轉運途徑從依賴轉運蛋白的被動擴散轉變為網格蛋白介導的內吞作用，這說明經脂質體包封顯著改善了花青素的滲透性和吸收率。

花青素在腸道中的吸收和代謝總結見圖4。

圖4 花青素在腸道中的吸收和代謝Fig.4 Absorption and metabolism of anthocyanins in the intestine

3.3 腸道吸收細胞模型在花青素中的應用

目前已應用于花青素腸道吸收研究的體外細胞模型主要包括Caco-2單層細胞模型和Caco-2/靶細胞共培養模型兩種，見表5。

表5 體外腸道吸收細胞模型在花青素中的應用Table 5 Application of in vitro intestinal absorption cell models to anthocyanins

3.3.1 Caco-2單層細胞模型在花青素中的應用

Caco-2單層細胞模型是研究花青素吸收最常用的細胞模型。Xu Yang等[77]利用SD大鼠和Caco-2單層細胞模型探究花青素的生物利用度和吸收轉運，結果表明天竺葵素-3-O-蕓香糖苷的生物利用度是天竺葵素-3-O-葡萄糖苷的3 倍，這說明花青素的生物利用度與花青素分子間糖苷鍵的種類有關，被動擴散和主動外排參與了花青素的吸收。Cahyana等[78]通過Caco-2細胞模型探究影響花青素在細胞內攝取的因素，結果發現花青素的攝取呈濃度依賴性，并受其結構、環境pH值及葡萄糖的影響，而且隨著pH值的降低，花青素的攝取率反而升高，其中有葡萄糖轉運蛋白的參與。此外，由于花青素存在不穩定性，其在加工儲存中發生的氧化、聚合等反應可能會對花青素在細胞中的吸收轉運存在一定的影響。通過Caco-2單層細胞模型運輸不同結構的花青素的吸收轉運，Liu Yang等[79]發現單一的糖苷標準品的攝取率高于多種混合糖苷標準品，同時花青素的攝取呈現時間依賴性和濃度依賴性，而且SGLT1和GLUT2在其中起著關鍵作用且SGLT1的影響更顯著。同樣地，Pacheco-Palencia等[80]通過對巴西莓果實中的單體花青素和聚合花青素進行細胞轉運發現，聚合花青素的存在反而使得單體花青素在細胞中的轉運量降低了40%左右。

3.3.2 共培養細胞模型在花青素中的應用

基于Caco-2細胞的共培養模型能更為準確地重建腸道結構和微環境，已被應用于研究花青素等功能活性物質的吸收利用。Zhang Hua等[37]通過構建Caco-2細胞單層模型和Caco-2、THP-1共培養細胞模型探究紫胡蘿卜和馬鈴薯中的花青素的生物利用度和抗炎作用，結果發現花青素在Caco-2細胞單層的吸收主要是通過主動轉運機制進行的，而紫薯花青素比胡蘿卜花青素有著更高的轉運效率。Yang Mengyu等[81]通過構建Caco-2細胞和RAW246.7細胞共培養炎癥細胞模型探究矢車菊素-3-葡萄糖苷（cyanidin-3-O-glucoside，C3G）及C3G納米脂質體的吸收轉運及抗炎機制，發現C3G和C3G納米脂質體的攝取主要是基于載體蛋白（網格蛋白）介導的巨胞飲作用和內吞作用，而且通過脂質體包埋C3G可以提高其在細胞中的攝取率，這說明脂質體可以在一定程度提高C3G的生物利用度。

3.3.3 三維模型在花青素中的應用

目前腸道三維細胞模型在花青素上的應用較少，特別是有關花青素吸收轉運的研究。有個別研究利用其他三維細胞模型探究花青素的生物活性。Osvaldt等[82]評估了花青素納米粒子在2D和3D成纖維細胞中的吸收活性和吸收狀況，結果表明兩種細胞模型均顯示花青素的吸收與時間呈正相關，此外納米藥物也降低了三維細胞中花青素的細胞毒性，這說明藥物的納米化是提高其穩定性的一個有益選擇。Wang Junkang等[83]利用3D Caco-2球體探究了花青素與TiO2納米顆粒的相互作用，結果發現二者作用后攝入率同Caco-2球體中ABC轉運蛋白的表達呈反比。此外，也有部分研究利用三維細胞模型探究類黃酮的生物活性。Hu Die等[84]分別利用二維和三維的Colon26細胞和HepG2細胞研究槲皮素納米藥物的轉染效率和細胞毒性，結果發現槲皮素在三維細胞中顯示出最高的轉染效率，其細胞活性增加。相似地，有研究通過比較分析槲皮素在HT29細胞和3D人腸組織及健康志愿者腸II期的代謝產物發現，HT29細胞是產生II期代謝產物的關鍵細胞，但利用3D腸組織更能預測黃酮類化合物在機體的腸道II期代謝狀況[85]。

4 結語

腸道細胞模型在評估食品功能活性成分的吸收轉運中發揮著重要的作用。盡管體外模型已日趨成熟，但模擬復雜的腸道微生態仍存在著許多局限。從簡單的細胞單層模型到細胞共培養模型再到三維模型，這都說明在體外的腸道模型作為一種模擬機體腸道的工具極為重要。同二維細胞模型相比，三維模型能更為準確地表達細胞形態與細胞生物學功能之間的關系，同時對內源性和外源性刺激（如溫度、pH值、營養吸收、遷移、分化等變化）的反應更接近于體內反應。此外，腸道菌群也參與食品功能活性成分的吸收轉運，因此構建腸道菌群與腸道上皮相互作用的功能性腸道模型亦是研究功能活性成分吸收轉運的新趨勢。

作為一種膳食類黃酮，花青素在維持機體功能和疾病預防等方面都起著重要的作用。然而，目前應用于研究花青素吸收轉運的體外腸道模型較少，主要是Caco-2單層細胞模型，但以Caco-2細胞單層研究腸道和功能活性成分或藥物之間的相互作用，這存在著一定的局限性。體外腸道細胞模型應更加接近于腸道結構及腸道微生態環境，這將對研究功能活性成分的吸收轉運及其機制更有參考意義。