楊哲 藍常貢
基金項目:廣西壯族自治區(qū)骨與關節(jié)退行性疾病生物醫(yī)用材料工程研究中心項目(桂發(fā)改高技函20211688);2020年廣西壯族自治區(qū)醫(yī)療衛(wèi)生重點學科和重點培育學科——急診醫(yī)學科(桂衛(wèi)科教發(fā)〔2021〕8號);右江民族醫(yī)學院附屬醫(yī)院2019年度第一批高層次人才科研項目(R20196326)
第一作者簡介:楊哲,男,住院醫(yī)師,醫(yī)學學士,在讀碩士研究生,研究方向:骨關節(jié)炎。E-mail:779602123@qq.com
通信作者:藍常貢。E-mail:landlong120@sina.com
[本文引用格式]楊哲,藍常貢.衰老細胞在骨關節(jié)炎中的作用及干預措施研究進展[J].右江醫(yī)學,2024,52(3):264-267.
【關鍵詞】? 骨關節(jié)炎;衰老軟骨細胞;衰老細胞裂解劑;衰老分泌相關蛋白抑制劑
中圖分類號:R684.3??? 文獻標志碼:A??? DOI:10.3969/j.issn.1003-1383.2024.03.013
骨關節(jié)炎(osteoarthritis,OA)是一種以關節(jié)內部軟骨和骨質破壞為主要特征的關節(jié)病,最終導致骨骼之間的接觸面磨損和骨骼間隙縮小。其長期發(fā)展會導致關節(jié)功能喪失,骨骼和關節(jié)周圍組織的改變,如骨質增生、關節(jié)畸形和骨折[1]。OA是全球高發(fā)疾病,其總體發(fā)病率在10%~15%之間。該病高齡易感,65歲以上人群的發(fā)病率為20%~30%。在發(fā)達國家,髖關節(jié)和膝關節(jié)是骨關節(jié)炎的好發(fā)部位,而在發(fā)展中國家,肩部和手部的關節(jié)則更為普遍[2]。OA的臨床治療主要是對癥治療,大部分患者需要進行人工關節(jié)置換緩解疼痛,恢復關節(jié)功能[3]。因此,迫切需要對OA發(fā)生發(fā)展的相關機制進行研究,以期從源頭上解決OA的防治難題。本文以衰老細胞(senescent cells, SNCs)在OA發(fā)生中的作用及干預策略的研究進展做一綜述。
1? 衰老軟骨細胞與OA
衰老是OA最重要的風險因素。高齡人群的軟骨細胞衰老比例會顯著增加,由此引發(fā)的軟骨退化及炎癥,又會加劇健康的軟骨細胞功能受損。這種以細胞周期停滯為特征的增殖活性喪失,還會引起心血管疾病、癌癥,以及運動系統(tǒng)疾病。作為SNCs的活性分泌因子,衰老分泌相關蛋白(SASP)也起到重要作用[4]。
“細胞衰老”概念最早由海夫里克于20世紀60年代提出,是指細胞在經(jīng)歷了一定數(shù)量的分裂之后,會發(fā)生一種不可逆轉的生長停滯現(xiàn)象[5]。細胞衰老后雖然增殖能力降低卻不會死亡,依然保持著代謝活性[6]。在此過程中,SNCs會持續(xù)釋放出一系列SASP,如基質金屬蛋白酶、促炎因子等[7],引起周圍正常細胞衰老[8]。積累的SNCs會損害所在組織,加速自然衰老過程。對軟骨細胞而言,它在機體內大多時間處于靜止期,但其增殖潛力強大,在軟骨受損時(通常在OA的早期階段)會從靜止期進入分裂期,以合成受損的關節(jié)軟骨。此外,在軟骨細胞體外培養(yǎng)時也會開啟細胞分裂[9]。受到損害刺激的軟骨細胞分裂時,更易出現(xiàn)細胞周期阻滯并誘發(fā)細胞衰老[10]。骨細胞的衰老也可能是造成OA的另一原因。骨-軟骨作為同一功能體在運動系統(tǒng)中發(fā)揮協(xié)同作用,其衰老后會破壞關節(jié)軟骨依附面和微環(huán)境[11]。SNCs的積累可能是OA發(fā)生的關鍵環(huán)節(jié)[12]。研究顯示,將很少量的SNCs注射到小鼠的膝關節(jié)中,會引發(fā)OA病理表現(xiàn),提示SNCs改變了關節(jié)微環(huán)境并引起了類OA病變[13]。總之,即使關節(jié)內的軟骨細胞在遇到損害時有一定的損傷修復能力,但是如果有害因素過于強大,細胞衰老就難以避免,這會給關節(jié)功能帶來負面影響。一方面,細胞衰老導致的增殖活性喪失會破壞軟骨更新能力。另一方面,已經(jīng)衰老的軟骨細胞還通過旁分泌衰老因子損害關節(jié)內的細胞微環(huán)境。
2? 衰老軟骨細胞的特征
2.1? 衰老相關β-半乳糖苷酶
β-半乳糖苷酶染色是檢測衰老細胞的常用技術之一,其顯色原理是β-半乳糖苷酶活性上調引起。實驗發(fā)現(xiàn),OA小鼠軟骨細胞SA-β-gal表達增高[14]。然而,SA-β-gal陽性并不絕對意味細胞衰老。比如,細胞的自噬通路對溶酶體酶活性有調控作用,一項研究顯示二甲雙胍能增強自噬并使衰老患者的T細胞線粒體功能正常化,逆轉陽性表達[15]。因此,SA-β-gal的陽性表達體現(xiàn)的可能是自噬水平變化;還有一些動物的視網(wǎng)膜神經(jīng)元在胚胎發(fā)育過程中開始分化時,也會被這種組織化學技術標記,可能與胚胎發(fā)育的程序性調控有關[16]。綜上所述,細胞衰老大多會出現(xiàn)SA-β-gal陽性表達,但陽性表達并不一定反映細胞衰老。
2.2? 細胞外囊泡
SNCs擁有的微環(huán)境塑造能還可能與細胞外囊泡(extracellular vesicle,EV)有關。EV是脂膜結合的小顆粒,以運輸?shù)鞍准癛NA為媒介來實現(xiàn)細胞之間的交流[17],在SNCs中EV分泌會增加[18]。實驗發(fā)現(xiàn),捕獲衰老相關microRNA的EV會出現(xiàn)衰老。而衰老相關EV在血清中的含量隨年齡增加而下降,但是該過程會伴隨B細胞和單核細胞的功能活化。這可能說明衰老相關EV導致了年齡相關的炎癥反應。研究表明,OA患者的軟骨組織中存在大量衰老的軟骨細胞及衰老相關EV[19]。深入研究發(fā)現(xiàn),OA患者的EV與正常的軟骨細胞一起培養(yǎng)后,后者出現(xiàn)了明顯的衰老和蛋白質聚糖含量下降。免疫熒光檢測發(fā)現(xiàn)囊泡會在6小時內進入軟骨細胞中。衰老相關EV和其他EV之間miR-140-3p(一種microRNA)降低,同時伴隨著軟骨損傷[20];而miR-34a-5p則會增加,該過程伴隨著SASP的表達升高[21]。隨著年齡的增長,SNCs可以明顯引起細胞微環(huán)境的變化,功能更加復雜的EV很可能是重要驅動因素,而不僅僅是SASP。
2.3? P16
P16是可以參與細胞周期負性調控的抗癌基因,在細胞衰老中可使細胞周期停滯[22]。在DNA損傷、活性氧或有害刺激等細胞壓力下能激活該基因,其好處是能抑制腫瘤的發(fā)生,壞處是可能引起細胞衰老[23-24]。研究表明,P16在軟骨中的表達水平與OA相關[25]。P16升高的軟骨細胞顯示出細胞外基質(extracellular matrix,ECM)減少,SASP(MMP13、MMP1)的分泌增多[26]。這表明軟骨細胞周期停滯后,P16是軟骨損傷的重要特征[27]。P16不但與OA相關,也是一種可靠的衰老基因,P16表達增加可能提示OA發(fā)病原因復雜。
3? 以SNCs為目標的OA防治策略
3.1? SNCs裂解劑(senolytics)
研究顯示,通過定向清除高表達P16基因的SNCs[28-29],干預組小鼠壽命獲得顯著延長,與衰老有關的病理變化也出現(xiàn)更晚。利用相似實驗技術,清除OA小鼠關節(jié)軟骨內的SNCs后,OA病理表現(xiàn)顯著緩解[12]。基因干預技術存在倫理風險,通過比較SNCs的特征篩選小分子藥物,或是抗衰老的有效策略。Bcl-2家族蛋白是調控細胞存亡的關鍵蛋白,包括兩種類型,一種是抗凋亡蛋白如Bcl-2、Bcl-XL等;另一種是促凋亡蛋白,如Bak、Bax等。前者作為SNCs對抗凋亡的關鍵因子,為藥物干預提供了SNCs作用靶點[30]。ABT-263(navitoclax)是一種泛Bcl-2家族抑制劑,通過靶向Bcl-2、Bcl-XL促進SNCs凋亡。實驗證明ABT-263能促進OA中的衰老軟骨細胞凋亡,維持軟骨細胞表型[31]。然而,ABT-263強大的血液系統(tǒng)抑制作用可能會成為臨床應用的阻礙。A-1331852和A-1155463作為選擇性更強的Bcl-XL抑制劑,其作用是否會更平衡尚有待探索。
P53是具有多種功能的腫瘤抑制基因,也是一個senolytic靶點。它除了能與下游基因P21共同實現(xiàn)細胞周期阻滯外[32],還對細胞凋亡具有調控作用。有研究表明,F(xiàn)OXO4(FOXO4基因編碼的蛋白)可以通過與P53的相互作用來防止衰老纖維細胞死亡[33]。研究者設計一種肽(FOXO4-DRI)來模擬FOXO4和P53的連接,阻止它們的相互作用,以誘導衰老成纖維細胞凋亡。除此之外,F(xiàn)OXO4-DRI也被證明可以通過選擇性誘導衰老性腺間質細胞凋亡,緩解老年雄性小鼠與年齡相關性腺功能減退癥[34]。基于P53基因的另一個靶點是E3連接酶(MDM2),E3連接酶是P53的負調節(jié)因子。UBX0101是MDM2/P53相互作用的抑制劑,在骨關節(jié)炎小鼠模型中誘導衰老軟骨細胞凋亡,并成功改善骨關節(jié)炎的軟骨退化現(xiàn)象[12]。但關節(jié)內注射UBX0101治療骨關節(jié)炎的2期臨床試驗未達到期望效果。
總之,目前senolytics療法的臨床前試驗的預期結果不盡相同,有好有壞。這種通過使SNCs凋亡而達到“去舊存新”,改善微環(huán)境的策略可能是最有效的抗衰老實現(xiàn)路徑。
3.2? SASP抑制劑(senomorphics)
由于SASP因子與衰老相關病變的關系,阻斷SASP因子是另一種治療手段[35]。白細胞介素6(IL-6)是一種重要衰老因子,與類風濕關節(jié)炎(RA)發(fā)生發(fā)展密切相關,其受體抑制劑托珠單抗(Tocilizumab)對RA療效顯著。RA與OA的病理表現(xiàn)相似,Tocilizumab對手部OA的臨床試驗正在進行。MMPs是功能復雜的膠原蛋白水解酶類,能促進細胞外基質的降解,也是一種SASP因子。該家族成員MMP13可以降解關節(jié)軟骨中的Ⅱ型膠原蛋白。OA患者來源的軟骨細胞中MMP13的表達高于正常人。此外,使用轉基因小鼠過表達MMP13也誘導了OA樣關節(jié)病,提示MMP13是OA發(fā)病機制的重要因素。而敲除編碼MMP13基因的軟骨細胞后,降低了半月板韌帶損傷(MLI)誘導的OA病理變化。據(jù)此,人們設計了MMP13抑制劑CL82198處理MLI小鼠,證實CL82198可減輕OA,上調Ⅱ型膠原含量。研究發(fā)現(xiàn),OA患者關節(jié)液中白細胞介素1β(IL-1β)水平增高[36]。這種炎癥趨化因子可以激活cGAS-STING信號通路,誘導軟骨細胞衰老[37]。據(jù)報道,紫檀芪通過抑制 PI3K/AKT/NF-κB信號通路緩解由IL-1β誘導的軟骨細胞衰老[38]。抗氧化劑NAC處理也可緩解IL-1β誘發(fā)的軟骨細胞的衰老相關表型的增加[39]。
目前來看,senomorphics作為可以選擇性抑制特定SASP因子的干預策略是另一種對抗衰老的實現(xiàn)方法。值得注意的是,單純抑制SASP因子不能解決SNCs可能是這種方法的不足之處。
4? 結論與展望
OA的發(fā)生機理復雜,目前尚無明確具體的細胞類型決定其發(fā)生發(fā)展。對于SNCs清除可能產生的不良作用也存在爭議[40]。盡管這些永久進入周期停滯的細胞在OA的發(fā)生發(fā)展中起著重要作用,但如果提前清除SNCs和阻斷其旁分泌通路,或許會影響OA的早期修復。出于這個原因,有關senolytics和senomorphics的研究,應該在不同的OA病理發(fā)展時期,進行組合使用或許有更好的效果。總的來說,未來的方向應進一步明確SNCs的特質及代謝特點與OA的關系,并設計基于這些機制的療法以消除或減緩OA的發(fā)生,為關節(jié)軟骨修復和OA治療提供新思路。
參? 考? 文? 獻
[1] ??ZHOU F, CHU L Y, LIU X Q, et al. Subchondral trabecular microstructure and articular cartilage damage variations between osteoarthritis and osteoporotic osteoarthritis:a cross-sectional cohort study[J]. Front Med,2021,8:617200.
[2] ??王歡,孫賀,張耀南,等.中國40歲以上人群原發(fā)性膝骨關節(jié)炎各間室患病狀況調查[J].中華骨與關節(jié)外科雜志,2019,12(7):528-532.
[3] ??中華醫(yī)學會骨科學分會關節(jié)外科學組.骨關節(jié)炎診療指南(2018年版)[J].中華骨科雜志,2018,38(12):705-715.
[4] ??ZHANG D W, ZHANG G, LI Z Y, et al. Activation of the cannabinoid receptor 1 by ACEA suppresses senescence in human primary chondrocytes through sirt1 activation[J]. Exp Biol Med, 2018, 243(5):437-443.
[5] ??HAYFLICK L, MOORHEAD P S. The serial cultivation of human diploid cell strains[J]. Exp Cell Res, 1961, 25:585-621.
[6] ??CAI Y S, ZHOU H H, ZHU Y H, et al. Elimination of senescent cells by β-galactosidase-targeted prodrug attenuates inflammation and restores physical function in aged mice[J]. Cell Res, 2020, 30(7): 574-589.
[7] ??BASISTY N, KALE A, JEON O H,et al. A proteomic atlas of senescence-associated secretomes for aging biomarker development[J]. PLoS Biol, 2020, 18(1):e3000599.
[8] ??YUN J N, HANSEN S, MORRIS O, et al. Senescent cells perturb intestinal stem cell differentiation through Ptk7 induced noncanonical Wnt and YAP signaling[J]. Nat Commun, 2023, 14(1):156.
[9] ??楊帆,劉保一,劉家河,等.體外培養(yǎng)SD大鼠關節(jié)軟骨細胞原代至第3代的形態(tài)學特點[J].中國組織工程研究,2021,25(14):2161-2165.
[10] ??OGRODNIK M, SALMONOWICZ H, JURK D, et al. Expansion and cell-cycle arrest:common denominators of cellular senescence[J]. Trends Biochem Sci, 2019, 44(12):996-1008.
[11] ??VAN DEN BOSCH M H J.Osteoarthritis year in review 2020:biology[J]. Osteoarthritis Cartilage, 2021, 29(2):143-150.
[12] ??JEON O H, KIM C, LABERGE R M, et al. Local clearance of senescent cells attenuates the development of post-traumatic osteoarthritis and creates a pro-regenerative environment[J]. Nat Med, 2017, 23(6):775-781.
[13] ??XU M, BRADLEY E W, WEIVODA M M, et al. Transplanted senescent cells induce an osteoarthritis-like condition in mice[J]. J Gerontol A Biol Sci Med Sci, 2017, 72(6):780-785.
[14] ??POUDEL S B, DIXIT M,YILDIRIM G,et al. Sexual dimorphic impact of adult-onset somatopause on life span and age-induced osteoarthritis[J]. Aging Cell, 2021, 20(8):e13427.
[15] ??BHARATH L P, AGRAWAL M, MCCAMBRIDGE G, et al. Metformin enhances autophagy and normalizes mitochondrial function to alleviate aging-associated inflammation[J]. Cell Metab, 2020, 32(1):44-55.e6.
[16] ??DE MERA-RODRGUEZ J A, LVAREZ-HERNN G, GAN Y, et al. Is senescence-associated β-galactosidase a reliable in vivo marker of cellular senescence during embryonic development?[J]. Front Cell Dev Biol, 2021, 9:623175.
[17] ??KALLURI R, LEBLEU V S. The biology, function, and biomedical applications of exosomes[J]. Science, 2020, 367(6478):eaau6977.
[18] ??HA D H, KIM H K, LEE J, et al. Mesenchymal stem/stromal cell-derived exosomes for immunomodulatory therapeutics and skin regeneration[J]. Cells, 2020, 9(5):1157.
[19] ??JEON O H, WILSON D R, CLEMENT C C, et al. Senescence cell-associated extracellular vesicles serve as osteoarthritis disease and therapeutic markers[J]. JCI Insight, 2019, 4(7):e125019.
[20] ??LI X H, ZHEN Z L, TANG G D, et al. MiR-29a and miR-140 protect chondrocytes against the anti-proliferation and cell matrix signaling changes by IL-1β[J]. Mol Cells, 2016, 39(2):103-110.
[21] ??MANAKANATAS C, GHADGE S K, AGIC A, et al. Endothelial and systemic upregulation of miR-34a-5p fine-tunes senescence in progeria[J]. Aging,2 022, 14(1):195-224.
[22] ??DIEKMAN B O, SESSIONS G A, COLLINS J A, et al. Expression of p16INK4a is a biomarker of chondrocyte aging but does not cause osteoarthritis[J]. Aging Cell, 2018, 17(4):e12771.
[23] ??SARGEN M R, PFEIFFER R M, ELDER D E, et al. The impact of longitudinal surveillance on tumor thickness for melanoma-prone families with and without pathogenic germline variants of CDKN2A and CDK4[J]. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev, 2021, 30(4):676-681.
[24] ??BADHEEB M, ABDELRAHIM A, ESMAIL A, et al. Pancreatic tumorigenesis:precursors,genetic risk factors and screening[J]. Curr Oncol,2022, 29(11):8693-8719.
[25] ??SESSIONS G A, COPP M E, LIU J Y, et al. Controlled induction and targeted elimination of p16 INK4a-expressing chondrocytes in cartilage explant culture[J]. FASEB J, 2019, 33(11):12364-12373.
[26] ??RIM Y A, NAM Y, JU J H. The role of chondrocyte hypertrophy and senescence in osteoarthritis initiation and progression[J]. Int J Mol Sci, 2020, 21(7):2358.
[27] ??JIN J L, TAO J G, GU X, et al. P16 INK4a deletion ameliorated renal tubulointerstitial injury in a stress-induced premature senescence model of bmi-1 deficiency[J]. Sci Rep, 2017, 7(1):7502.
[28] ??BAKER D J, CHILDS B G, DURIK M, et al. Naturally occurring p16Ink4a-positive cells shorten healthy lifespan[J]. Nature, 2016, 530:184-189.
[29] ??PATIL P, DONG Q, WANG D, et al. Systemic clearance of p16INK4a-positive senescent cells mitigates age-associated intervertebral disc degeneration[J]. Aging Cell, 2019, 18(3):e12927.
[30] ??BASU A. The interplay between apoptosis and cellular senescence:Bcl-2 family proteins as targets for cancer therapy[J]. Pharmacol Ther, 2022, 230:107943.
[31] ??楊昊.Navitoclax(ABT263)改善骨關節(jié)炎中炎癥微環(huán)境和減輕軟骨破壞的研究[D].重慶:中國人民解放軍陸軍軍醫(yī)大學,2020.
[32] ??MIJIT M, CARACCIOLO V, MELILLO A, et al. Role of p53 in the regulation of cellular senescence[J]. Biomolecules, 2020, 10(3):420.
[33] ??BAAR M P, BRANDT R M C, PUTAVET D A, et al. Targeted apoptosis of senescent cells restores tissue homeostasis in response to chemotoxicity and aging[J]. Cell, 2017, 169(1):132-147.e16.
[34] ??ZHANG C, XIE Y, CHEN H C, et al. FOXO4-DRI alleviates age-related testosterone secretion insufficiency by targeting senescent Leydig cells in aged mice[J]. Aging, 2020, 12(2):1272-1284.
[35] ??LAGOUMTZI S M, CHONDROGIANNI N. Senolytics and senomorphics:natural and synthetic therapeutics in the treatment of aging and chronic diseases[J]. Free Radic Biol Med, 2021, 171:169-190.
[36] ??馬小梅,符培亮,朱維健.膝關節(jié)液中白細胞介素1β、白細胞介素6、白細胞介素8及腫瘤壞死因子α表達與組織病理學的相關性研究[J].第二軍醫(yī)大學學報,2020,41(9): 1046-1051.
[37] ??AARREBERG L D, ESSER-NOBIS K, DRISCOLL C, et al. Interleukin-1β induces mtDNA release to activate innate immune signaling via cGAS-STING[J]. Mol Cell, 2019, 74(4):801-815.e6.
[38] ??王瑜.紫檀芪通過抑制PI3K/AKT/NF-κB信號通路抗軟骨細胞衰老治療OA的機制研究[D].沈陽:中國醫(yī)科大學,2022.
[39] ??徐偉,廖冬發(fā),吳畏,等.IL-1β通過誘導氧化應激促進軟骨表層細胞衰老[J].免疫學雜志,2022,38(2):164-169.
[40] ??VOSKAMP C, KOEVOET W J L M, VAN OSCH G J V M, et al. Senescence during early differentiation reduced the chondrogenic differentiation capacity of mesenchymal progenitor cells[J]. Front Bioeng Biotechnol, 2023, 11:1241338.
(收稿日期:2023-09-05? 修回日期:2023-10-31)
(編輯:王琳葵? 潘明志)