林新 余天興 許俊平 陳麗芳 謝萬 包宇旺



【摘要】 目的 研究具有高表達miRNA-9-5p的骨髓間充質干細胞(bone mesenchymal stem cells,BMSCs)對呼吸機引起的肺損傷(ventilator-induced lung injury,VILI)大鼠的影響以及機制。方法 建立機械通氣的肺損傷模型,通過慢病毒轉染構建高miRNA-9-5p表達的BMSCs,評估BMSCs和高miRNA-9-5p表達的BMSCs對VILI大鼠的影響。通過蛋白質印跡和qRT-PCR方法檢測BMSCs和高表達miRNA-9-5p的BMSCs對VILI大鼠肺部的LC3、Atg5和Atg7表達的影響。結果 移植BMSCs可顯著降低VILI大鼠肺部損傷的嚴重程度以及支氣管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage,BAL)中的IL-1β和IL-2水平。移植高表達miRNA-9-5p的BMSCs能顯著降低VILI大鼠的肺部損傷嚴重程度和BAL液中的IL-1β和IL-2水平。與VILI大鼠相比,移植的BMSCs明顯增加了自噬相關蛋白的表達,包括Atg5和Atg7。與對照組相比,移植高表達miRNA-9-5p的BMSCs可顯著提高VILI大鼠的LC3Ⅱ/LC3Ⅰ比例以及Atg5和Atg7水平。結論 BMSCs可能通過上調miRNA-9-5p表達提高LC3Ⅱ/LC3Ⅰ比例、Atg5和Atg7介導的自噬水平,進而緩解VILI。
【關鍵詞】 BMSCs;VILI;miRNA-9-5p;自噬
文章編號:1672-1721(2024)16-0001-05? ? ?文獻標志碼:A? ? ?中國圖書分類號:R563
危重病人的機械通氣不可避免誘發病理性和生理性的VILI,其特點是肺血管通透性增加、炎癥細胞浸潤和血液凝固[1]。確定有效的促進肺損傷修復的保護性通氣策略,將推動機械通氣治療發展。BMSCs是具有自我復制能力的多功能、多潛能的細胞,可在培養基中增殖并多樣化形成骨細胞、軟骨細胞和脂肪細胞。BMSCs在體外具有強大的增殖能力。有研究表明,移植BMSCs可治療一些疾病,包括肺部損傷[2]。有文獻報道,BMSCs可加速大鼠VILI的恢復[3]。BMSCs恢復VILI的機制還需進一步探索。因此,本研究探討BMSCs和具有高表達miRNA-9-5p的BMSCs對VILI大鼠的影響及可能機制。
1 材料和方法
1.1 材料
(1)動物。SPF級雄性SD大鼠60只[常州卡文斯實驗動物有限公司,SCXK(豫)2005-0001],年齡6~8周。隨機分為5組,即正常組、VILI組、VILI+BMSC組、VILI+BMSC+LV-NC(NC)組和VILI+BMSC+LV-miRNA -9-5p(OE)組,每組12只。(2)BMSCs的分離和培養。從大鼠后肢解剖股骨和脛骨,切開末端暴露骨髓腔。將骨髓分散在DMEM中,以1 500 r/min離心5 min。將骨髓顆粒重新懸浮在含有10%胎牛血清的DMEM完全培養基中,在37 ℃、體積分數5%CO2條件下培養。24 h后更換培養基,培養貼壁的細胞,每2 d更換培養基。當細胞達到70%~80%匯合時,用質量分數0.25%的胰蛋白酶消化,傳代。取4代的BMSCs用于慢病毒感染。
1.2 方法
(1)慢病毒感染法構建高表達miRNA-9-5p的
BMSCs。陰性對照慢病毒(LV-NC)、攜帶miRNA-9-5p的慢病毒(LV-miRNA-9-5p)用于感染BMSCs。72 h觀察綠色熒光。得到穩定感染的BMSCs(OE)和BMSCs(NC),用于隨后的大鼠體內移植實驗。(2)肺部損傷模型的建立。為建立機械通氣的肺部損傷模型,5%水合氯醛麻醉后,大鼠被固定成仰臥位。使用小型動物呼吸機(DW3000,淮北正華生物儀器設備有限公司)通氣4 h,潮氣量為40 mL/kg。為防止過度通氣,呼吸頻率調整為15次/min。實驗得到了福建醫科大學實驗動物中心動物倫理委員會的批準。(3)標本的采集和處理。模型建立的第7天,抽取動脈血測量氧氣和二氧化碳的分壓。每組取6只大鼠的肺部進行稱重,在80 ℃的烘箱中干燥72 h,然后再次稱重,計算肺部濕/干(W/D)比率。采用改良方法[4]從其余大鼠身上獲得BAL,于-80 ℃冰箱保存,后續用于測定促炎癥細胞因子的含量。右上肺組織在室溫下用4%多聚甲醛緩沖液固定24 h,然后石蠟包埋并切片進行組織學評價。右下肺組織冷凍在液氮中,保存于-80 ℃冰箱,進行蛋白質印跡分析(western blot,WB)。(4)酶聯免疫吸附試驗(ELISA)。使用ELISA試劑盒IL-1β和IL-2(ABclonal Technology)測定促炎癥細胞因子的水平。(5)蘇木精-伊紅染色。石蠟切片在室溫下用二甲苯脫蠟2次。乙醇處理后用自來水清洗2 min。用蘇木精染色5 min,自來水清洗,在1%酸性酒精中分化,在1%氨水中變藍,伊紅染色1 min,并再次用自來水清洗。然后用乙醇進行脫水,在二甲苯中清洗2次,持續10 min,用中性膠固定。顯微鏡觀察。(6)RNA提取和定量實時PCR(qRT-PCR)分析。用RNA提取試劑盒(TransGen Biotech)從肺部分離出總RNA。根據反轉錄試劑盒(TransGen Biotech)的說明,以總RNA為模板,反轉錄成cDNA,作為qRT-PCR的模板。引物見表1。(7)WB法測定LC3、Atg7和Atg5的表達。從肺部切片中提取總蛋白,用BCA試劑盒定量檢測蛋白水平。20~30 μg的蛋白質使用SDS-PAGE電泳分離,然后轉移到聚偏氟乙烯(PVDF)膜上,在室溫下用牛血清白蛋白溶液封閉1 h。然后將PVDF膜與一抗在4 ℃下靜置孵育過夜。洗膜后,與相應的HRP結合的二抗進行孵育。使用ECL化學發光試劑盒顯影。使用Image J軟件定量分析。
1.3 統計分析
使用SPSS 25.0統計學軟件分析數據,計量資料以x±s表示,2組比較采用t檢驗,多組比較采用方差分析(ANOVA),P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 BMSCs對VILI大鼠的影響
圖1(a)中,與正常組相比,VILI組的肺部W/D比率明顯增加(P<0.05);正常組和VILI+BMSC組的的肺部W/D比率比較,差異無統計學意義(P>0.05)。圖1(b)中,VILI+BMSC組的氧分壓高于VILI組(P<0.05),但低于正常組(P<0.05)。圖1(c)中,VILI組BAL液中IL-1β和IL-2的水平明顯高于正常組(P<0.05),VILI+BMSC組IL-1β和IL-2的水平明顯低于VILI組(P<0.05),說明炎癥的發展受到了一定程度的抑制。大鼠肺組織的組織學評價結果見圖2。正常組沒有肺泡巨噬細胞浸潤,沒有明顯的病理變化。VILI組的肺組織有明顯的病理變化,肺泡間隔增厚,部分肺泡腔內有血性滲出。移植BMSCs后,肺組織的病理變化得到了改善。這些結果表明,BMSCs對VILI大鼠肺損傷有改善作用。
2.2 BMSCs對LC3、Atg5和Atg7介導的自噬的影響
WB法檢測LC3、Atg5和Atg7的蛋白表達,見圖3(a)。與正常/VILI組相比,VILI+BMSC組Atg5和Atg7蛋白的相對表達明顯增加(P<0.05),見圖3(b)。VILI組的LC3Ⅱ/LC3Ⅰ蛋白的比例明顯低于正常組和VILI+BMSC組,見圖3(c)。上述結果表明,BMSCs的移植可能會增加VILI大鼠的自噬。本研究通過qRT-PCR檢測了大鼠肺部LC3、Atg5和Atg7的mRNA水平。與蛋白質水平類似,與正常組和VILI組相比,VILI+BMSC組大鼠肺部LC3、Atg5和Atg7的水平都有所增加,見圖3(d)。本研究還檢測了miRNA-9-5p的mRNA表達,見圖3(e)。與正常組和VILI組相比,VILI+BMSC組miRNA-9-5p的mRNA表達明顯增加(P<0.05)。由此可見,LC3、Atg5和Atg7在大鼠肺部的表達與BMSCs的移植有關,高miRNA-9-5p表達的BMSCs可能對VILI大鼠有積極作用。
2.3 miRNA-9-5p高表達的BMSCs對VILI大鼠的影響
為了探索miRNA-9-5p對VILI大鼠的影響,經qRT-PCR檢測成功建立高表達miRNA-9-5p的BMSCs,見圖4(a)。qRT-PCR檢測也顯示,用高表達miRNA-9-5p的BMSCs治療的大鼠肺組織中miRNA-9-5p的表達高于NC組,見圖4(b)。雖然NC組和OE組的肺部W/D比率比較,差異無統計學意義(P>0.05),但OE組的肺部W/D比率有下降趨勢,見圖4(c)。OE組的氧分壓高于NC組(P<0.05),見圖4(d)。OE組BAL液中IL-1β和IL-2的水平明顯低于NC組(P<0.05),見圖4(e)。OE組部分肺泡腔內的肺組織有明顯的病理變化,見圖5,表明高miRNA-9-5p表達的BMSCs可在一定程度上改善VILI大鼠肺泡腔內的肺泡間隔增厚。上述研究結果表明,高表達miRNA-9-5p的BMSCs可能有助于改善VILI大鼠的肺部損傷。
2.4 miRNA-9-5p高表達的BMSCs對由LC3、Atg5和Atg7介導的自噬的影響
OE組的LC3、Atg5和Atg7的mRNA、蛋白表達與NC組相比明顯升高(P<0.05),見圖6(a)、圖6(b)和圖6(d)。OE組的LC3Ⅱ/LC3Ⅰ的比例明顯高于NC組(P<0.05),見圖6(c)。由此可見,LC3、Atg5和Atg7在肺部的mRNA和蛋白質的表達與miRNA-9-5p的含量有關。BMSCs可能通過VILI大鼠的miRNA-9-5p的表達來調節LC3、Atg5和Atg7的表達,并介導自噬。
3 討論
VILI是指在治療過程中由機械通氣引起或加重的急性肺損傷,是呼吸支持患者不可避免的嚴重并發癥。據報道,BMSCs可以增強VILI大鼠肺損傷的恢復,然而其基本機制仍不清楚。本研究探討了miRNA-9-5p高表達的BMSCs對VILI大鼠的影響以及它們是否通過自噬發揮作用。結果發現,BMSCs可能通過上調miRNA-9-5p、增加LC3Ⅱ/LC3Ⅰ比率、Atg5和Atg7介導的自噬水平緩解VILI。這也是首次報道miRNA-9-5p高表達的BMSCs對VILI大鼠自噬的影響。
BMSCs已被廣泛用于創傷、炎癥損傷修復、抗感染和免疫調節等實驗,在肺損傷領域的基礎研究和臨床實踐中受到越來越多的關注[5]。有研究表明,BMSCs可以分化和修復受損的肺泡上皮細胞和毛細血管膜,降低其通透性,還可促進血管生成素-1的分泌,預防結構損傷、肺水腫[6]。本研究中,移植BMSCs后,大鼠肺部W/D比率降低,氧分壓明顯改善,IL-1β和IL-2水平降低,肺泡腔內出血滲出程度明顯減輕,提示移植BMSCs可明顯減輕VILI大鼠的肺部損傷。
自噬作為程序性細胞死亡,在體內發生氧化應激或內質網應激時可維持細胞的平衡。許多研究證實,自噬的激活可在一定程度上促進先天免疫反應和炎癥反應的發生。自噬反應由一系列的自噬相關蛋白介導。Atg5和Atg7是上游自噬信號的關鍵蛋白,可幫助細胞減輕壓力,抵抗細胞毒性,并促進細胞生存[7]。LC3Ⅱ是一種重要的自噬體膜標志蛋白,由細胞質LC3(LC3Ⅰ)轉化而來,LC3通過使用各種自噬相關蛋白來調節自噬反應[8]。本研究結果顯示,移植BMSCs后,VILI大鼠肺部Atg5和Atg7的水平以及LC3Ⅱ/LC3Ⅰ的比例明顯增加,表明移植BMSCs減輕VILI大鼠肺部損傷與自噬有關。
有研究報道,miRNA-9可以通過激活自噬來促進BMSCs分化為神經元細胞[9]。在許多病理狀態下,miRNA-9-5p是血管生成的一個重要調節因素。本研究中,移植高表達miRNA-9-5p的BMSCs組明顯減輕了VILI大鼠的肺部損傷,表明BMSCs可能通過上調miRNA-9-5p的表達緩解機械通氣引起的肺部損傷。與NC組相比,移植高表達miRNA-9-5p的BMSCs還能顯著提高VILI大鼠的Atg5和Atg7水平、LC3Ⅱ/LC3Ⅰ的比例。這些結果表明,BMSCs可能通過上調miRNA-9-5p表達、增加LC3、Atg5和Atg7介導的自噬減輕VILI引起的肺損傷。然而本研究不夠深入,未來還需要在動物和臨床上進行更深層次的研究。
綜上所述,移植BMSCs可明顯減輕呼吸機誘發的大鼠肺損傷,BMSCs可通過上調miRNA-9-5p表達、增加LC3、Atg5和Atg7介導的自噬緩解VILI。
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