






摘要:板栗內腐病是板栗采后貯藏期主要病害,引起栗仁腐爛霉變,給生產帶來巨大經濟損失。為明確板栗內腐病的致病菌及其生物學特性,采用組織分離法獲得菌株ZHZF21,通過形態學特征及ITS、TUB2、CAL 多基因序列分析對該菌株進行鑒定,以菌絲塊有傷接種法測定菌株ZHZF21的致病性,并對其生物學特性進行研究。結果表明,菌株ZHZF21的菌落呈墨綠色環狀同心圓圈,具備有性和無性繁殖階段。該菌株的序列與GenBank中編號為NDSTY31的果生炭疽菌(Colletotrichum fructicola)聚為一支。結合菌落形態特征及分子樹將ZHZF21初步鑒定為果生炭疽菌。將菌株ZHZF21接種栗果后產生褐色病斑,與自然發病癥狀一致。該菌株在5~35 ℃均可生長,最適生長溫度為25 ℃,致死溫度為45~50 ℃,最適pH為6;在全黑暗條件下生長最快,阿拉伯樹脂糖和酵母的利用率最高,乳糖的利用率最低,幾乎不能利用尿素。
關鍵詞:板栗;內腐病;病原菌鑒定;果生炭疽菌;生物學特性
doi:10.13304/j.nykjdb.2023.0871
中圖分類號:S664.2 文獻標志碼:A 文章編號:1008‐0864(2024)09‐0122‐07
板栗(Castanea mollissima Blume)起源于中國,屬于殼斗科、栗屬堅果類植物。板栗果實富含淀粉、膳食纖維、維生素C,且不含麩質,還具有一定的藥用價值[1]。據統計,2018年中國板栗的種植面積已擴大至34.1萬hm2,產量達196.5萬t,我國作為板栗出口第一大國,其產品遠銷日本、韓國、越南等國家[2]。近年來,板栗內腐病發生較為嚴重,造成板栗品質下降,嚴重影響板栗的出口貿易及經濟價值。華娟等[3]認為,湖北省羅田縣地區板栗的致病菌為栗疫菌(Cryphonectria parasitica)和擴展青霉(Penicillium expansum);朱祎一等[4]明確了層出鐮刀菌(Fusarium proliferatum)、皮落青霉(Penicillium crustosum)和鏈格孢菌(Alternariaalternata)為貴州省望謨縣冷藏期腐爛板栗的主要致腐菌;張娜娜等[5]通過鑒定發現,河北省遷西縣板栗內腐病的致病菌為3種鐮刀菌,分別為禾谷鐮刀菌(Fusarium graminearum)、層出鐮孢菌(Fusarium proliferatum)、木賊鐮刀菌(Fusariumequiseti)。由于板栗內腐病的致病菌復雜多樣,防治難度較大,因此鑒定病原菌及其生物學特性至關重要。本研究采用組織分離法從感病板栗仁上分離致病菌,通過形態學特征及ITS、TUB2、CAL 多基因序列分析對菌株進行鑒定,以菌絲塊有傷接種法測定分離菌株的致病性,并研究其生物學特性,旨在為明確板栗內腐病病原種類及病害的防控提供可靠的理論基礎。
1 材料與方法
1.1 試驗材料
2022年9月21日從河北省遵化市燕山板栗經銷處購入的燕山早豐健康栗果于冷庫(?2.5~2.5 ℃)貯存。
PDA培養基:馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、瓊脂粉12 g、蒸餾水1 000 mL。Czapek 培養基:蔗糖30 g、NaNO3 2 g、K2HPO4 1 g、MgSO4·7H2O 0.5 g、KCl 0.5 g、FeSO4·7H2O 0.01 g、瓊脂15 g、蒸餾水1 000 mL。
儀器包括臺式鼓風干燥箱(TLD-240,上海實貝儀器設備廠)、超凈工作臺(SW-CJ-2F,上海博訊醫療生物儀器)、智能生化培養箱(ZGZ-450C,上海丙林電子科技有限公司)、Nikon生物顯微鏡(ECLIPSE SI,尼康精機有限公司)、高通量樣品研磨機(CK1000,北京托摩根生物科技有限公司)、高速冷凍微型離心機(D3024R,SCILOGEX)、PCR儀、電泳儀 (DYY-6C,北京市六一儀器廠)、UVP凝膠成像系統(BioSpectrum 600,Analytik Jena USLLC);試劑包括DNA Marker DL 2000(北京六合通經貿有限公司)、Master Mix、NuClean PlantGenomic DNA Kit(江蘇康為世紀生物科技股份有限公司)。
1.2 試驗方法
1.2.1 病原菌的分離及形態學鑒定
采用組織分離法[6]分離病原菌。用無菌刀片在發病栗仁的病健交接處切取大小為3 mm×3 mm的組織塊;75%乙醇消毒30 s,無菌水清洗30 s后,將其置于無菌吸水紙上吸干水分;隨后將組織塊轉移到PDA固體培養基上25 ℃恒溫培養2~3 d,待長出菌落后進行純化培養獲得菌株,將其命名為ZHZF21,4 ℃保存。將該菌株接種PDA 平板于25 ℃恒溫暗培養3 d后,在顯微鏡下觀察菌落生長情況和形態特征。
1.2.2 病原菌分子生物學鑒定
病原菌在PDA培養基上培養5~7 d,采用滅菌載玻片刮取菌絲,轉移到無菌的2 mL離心管中,放進2顆無菌鋼球,在研磨機里充分研磨。采用NuClean Plant GenomicDNA Kit提取病原菌DNA,按試劑盒說明書操作步驟進行。所用引物見表1[7]。PCR體系:模板DNA2 μL,Master Mix 25 μL,正反向引物(10 μmol·L?1)各2 μL,ddH2O 19 μL。PCR 程序:94 ℃預變性5 min;94 ℃ 變性30 s;55 ℃ 退火45 s;72 ℃延伸1 min,30個循環;最后72 ℃延伸10 min;4 ℃保存。PCR產物通過1%瓊脂糖凝膠電泳完成相應的擴增產物質量檢測。依據電泳結果委托上海生工完成測序。將獲得的序列在NCBI (http://www.ncbi.nlm.gov) 數據庫中進行BLAST比對分析,并提交至GenBank。根據GenBank中已報道的其他相關病原菌序列信息,通過Mega7軟件采用鄰接法構建系統發育樹,Bootstrap檢驗重復次數為1 500次。
1.2.3 致病性鑒定
采用菌絲塊有傷接種法[8],用75% 乙醇對健康栗仁進行表面消毒,再用無菌水沖洗干凈,將處理好的栗仁置于鋪有保濕濾紙的平皿中,用注射器針尖刺傷栗仁,將培養4 d的菌絲塊接種到栗仁傷口處,用保鮮膜包裹好,置于培養皿中25 ℃培養24 h后去除菌絲塊。以接種不含病原菌的PDA 培養基塊作為對照,每處理5個栗仁,3次重復。8 d后觀察栗仁是否感病及發病癥狀,并做好記錄,對接種后發病的栗果,再次分離病原菌,與接種病原菌進行比較。
1.3 板栗內腐病病原菌生物學特性的測定
1.3.1 溫度對病原菌菌絲生長的影響
用直徑7 mm打孔器在活化培養3 d的病原菌菌落邊緣打取菌餅,接種于PDA 平板中央,分別置于5、15、20、25、30和35 ℃恒溫暗培養,6 d后用十字交叉法測量菌落直徑,每處理接種3 個培養皿,重復3次。
1.3.2 pH對病原菌菌絲生長的影響
用1 mol·L?1HCl和1 mol·L?1 NaOH將PDA培養基的pH分別調節至4、5、6、7、8和9,用直徑7 mm打孔器在活化培養3 d的病原菌菌落邊緣打取菌餅,分別接種在不同pH的PDA平板上,25 ℃恒溫培養6 d后,用十字交叉法測量菌落直徑,每處理接種3個培養皿,重復3次。
1.3.3 光照對病原菌菌絲生長的影響
用直徑7 mm打孔器在活化培養3 d的病原菌菌落邊緣打取菌餅,接種于PDA平板上,分別置于智能生化培養箱中24 h黑暗、24 h光照和12 h黑暗/12 h光照條件下,25 ℃恒溫培養,6 d后用十字交叉法測量菌落直徑;每處理接種3個培養皿,重復3次。
1.3.4 碳、氮源對病原菌菌絲生長的影響
選擇Czapek培養基為基礎培養基,以等質量的乳糖、木糖、葡萄糖、果糖、阿拉伯樹脂糖分別置換Czapek培養基中的蔗糖制備不同碳源的培養基;以相同含氮量的酵母、牛肉膏、硝酸鉀、硫酸銨和尿素置換Czapek培養基中的硝酸鈉制備不同氮源的培養基。用直徑7 mm打孔器在活化培養3 d的病原菌菌落邊緣打取菌餅,接種于含有不同碳、氮源的Czapek培養基上,25 ℃恒溫暗培養6 d后以十字法測量菌落直徑,每處理接種3個培養皿,重復3次。
1.3.5 病原菌的致死溫度的測定
將直徑為7 mm的果腐病菌菌餅轉入裝有等量無菌水的試管中,將各試管分別放入40、45、50、55和60 ℃恒溫水浴鍋中,水浴10 min,隨后用無菌吸水紙吸干水分轉移至PDA平板上,每處理接種3個培養皿,重復3次,培養48 h后觀察菌絲生長情況。
1.4 數據分析
采用DNAMAN 和MEGAX 軟件構建系統發育樹,采用SPSS 26軟件進行試驗數據的統計分析,應用Duncan 氏新復極差法進行差異顯著性檢驗。
2 結果與分析
2.1 板栗內腐病病原菌鑒定
菌株ZHZF21在PDA培養基上25 ℃恒溫培養6d,菌落直徑可達7.8 cm。菌株菌落呈墨綠色環狀同心圓圈(圖1A)。初期菌落呈白色,氣生菌絲濃密,呈現放射狀不斷擴展(圖1B);3 d時菌絲中央呈現淺粉色,外圈菌落邊緣乳白色;5 d時菌落中心菌絲上出現灰色的小顆點;10 d后菌落變為黑灰色。分生孢子盤上長有簇生的分生孢子梗,分生孢子梗上著生分生孢子,并伴有剛毛(圖1C);分生孢子呈無色透明、圓柱狀、兩端鈍圓、內含油滴,單細胞,孢子大小為(4.26~6.59) μm×(9.08~15.23) μm(圖1D)。培養15 d后,PDA培養基上產生橘黃色分生孢子堆(圖1E);培養20 d后可見有性態,PDA上有黑色凸起狀物,子囊殼為圓球形(圖1F),子囊呈柱狀簇生,有隔膜(圖1G)。單條子囊內有8個呈梭狀的子囊孢子,子囊孢子為單細胞,無色透明,長橢圓形(圖1H)。結合菌落形態,初步將菌株ZHZF21鑒定為果生炭疽菌(Colletotricham fructicola)。
對菌株ZHZF21進行分子鑒定,分別獲得579、493 和785 bp 的片段,將3 組序列在NCBI 進行blast,基因登錄號分別為ON509652、OQ436783 和ON513388。下載GenBank中同源性在95%以上的該模式菌株參考序列,用MEGAX軟件構建系統發育樹,結果(圖2)表明,菌株ZHZF21 與編號為NDSTY31的Colletotrichum fructicola 菌株聚為一支,且節點支持率為100%,由此表明,菌株ZHZF21為果生炭疽菌。
2.2 菌株ZHZF21 的致病性
板栗內腐病為果實病害,發病時病斑為褐色,向栗果內部侵染,果皮褪色,著生黑色小點,為病菌的分生孢子器(圖3A);將菌株ZHZF21的菌餅接種于板栗果仁8 d后,栗仁表面紅褐色,切開病斑剖面,病斑向栗仁中心侵染,栗仁內部病斑直徑6.7~8.5 mm;濕度大時,病斑擴展速度較快,腐爛變色,有霉爛味(圖3B),發病率100%。對照組栗果未發病(圖3C)。對發病部位再次進行病原菌的分離,根據形態學特征和分子鑒定與原接種菌株一致。
2.3 菌株ZHZF21 的生物學特性
2.3.1 溫度、pH 和光照條件對菌絲生長的影響
由圖4可知,菌株ZHZF21在5~35 ℃下都能生長菌絲,在25 ℃條件下菌落直徑最大,為78.06 mm;而在5和35 ℃條件下,菌落幾乎不生長。不同pH下培養6 d,菌株在pH 為6 時菌落生長最快,菌落直徑達78.22 mm;當pH 為4時菌落生長最慢,為25.04 mm,推斷該菌株在弱酸性至弱堿性的條件下生長較快。在不同光照條件培養6 d,菌株在24 h黑暗條件下生長最快,菌落直徑達78.84 mm;在24 h光照條件下生長相對較差;在12 h光照的條件下生長最慢,菌落直徑為70.52 mm。
2.3.2 碳源和氮源對菌絲生長的影響
由圖5可知,不同碳源培養基表現為阿拉伯樹脂糖gt;乳糖gt;葡萄糖gt;果糖gt;木糖gt;蔗糖,即對阿拉伯樹脂糖的利用率最好,菌落培養6 d可達70.34 mm;不同氮源培養基表現為酵母gt;牛肉膏gt;硝酸鈉gt;硝酸鉀硫酸銨gt;尿素,即在酵母培養基上生長最好,菌落直徑可達73.13 mm,在尿素培養基上幾乎不生長,菌落直徑僅不到5 mm。
2.3.3 病原菌的致死溫度
由圖6 可知,菌株ZHZF21在40~45 ℃下培養6 d仍可繼續生長,而在50 ℃條件下未見菌絲生長。由此推斷,菌株ZHZF21菌絲生長的致死溫度為45~50 ℃。
3 討論
本研究在形態學特征觀察的基礎上,結合ITS、TUB2 和CAL 基因的系統發育分析,將引起板栗內腐病的病原菌鑒定為果生炭疽菌(C.fructicola)。果生炭疽菌隸屬于膠孢炭疽菌復合種(Colletotrichum gloeosporiodes species complex),最初報道的是泰國的咖啡果生炭疽病,其模式種被指定為MFLU090228,該菌株現保存為ICMP18581[9]。果生炭疽菌不僅可侵染板栗,還可侵染多種經濟作物,如核桃、桑樹、芒果、油茶、柑橘、蘋果、臭椿炭,涉及廣西、廣東、貴州、湖南、四川、陜西、河南等多個省(自治區、直轄市)[10-16]。由此可見,果生炭疽菌在我國分布十分廣泛。
本研究從患病的板栗果仁上分離獲得致病菌,將其命名為ZHZF21,其最適生長溫度為25 ℃,與周嬡婷等[17]結果一致;致死溫度為45~50 ℃,與任立超等[18]的結果一致,但與其最適生長溫度和pH結果存在差異,這可能與不同地區的生存環境和不同植物寄主有關[19];菌株ZHZF21在全黑暗的條件下生長最快;在不同碳源的培養基上,其菌絲生長表現為阿拉伯樹脂糖gt;乳糖gt;葡萄糖gt;果糖gt;木糖gt;蔗糖;在不同氮源的培養基上,菌絲生長表現為酵母gt;牛肉膏gt;硝酸鈉gt;硝酸鉀硫酸銨gt;尿素,其中在尿素培養基上幾乎不生長,這與宋麗麗等[20]的研究結果一致,由此推斷,可用尿素來抑制果生炭疽菌的發生。
近年來板栗內腐病的發生逐年加重,嚴重影響了板栗的產量和品質。本研究明確了板栗內腐病的致病菌為果生炭疽菌,并對其生物特性進行了系統分析,對于病害防控具有重要指導意義。
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