




摘要:通過高通量測序開發中國圓田螺多態性SSR標記,為田螺的種質利用及良種選育提供技術支撐。基于PacBio’s SMRT測序獲得中國圓田螺全長轉錄組數據,查找基因組微衛星(SSR)位點并分析其特征,共識別到8 058個SSR位點,1~6個核苷酸重復SSR均存在,其中二核苷酸重復SSR數量最多(4 647,57.67%),其次為三核苷酸重復SSR(1 274,15.81%)。在二核苷酸重復基元中以AC/GT的重復數最多,占總SSR位點數的34.82%。隨機選擇合成192對引物篩選獲得22對多態性SSR引物,并使用這些標記對廣西圓田螺群體進行遺傳多樣性分析。結果表明,有22個SSR標記擴增產物穩定,22個SSR標記共檢測到102個等位基因,平均等位基因數(Na)為4.636,觀測雜合度(Ho)和期望雜合度(He)均值分別為0.286和0.589,多態性信息含量(PIC)為0.247~0.844。在22個SSR位點中,高度多態性位點(PICgt;0.50)有13個,中度多態性位點(0.25lt;PIC≤0.50)有8個,說明中國圓田螺群體遺傳多樣性較豐富。利用PacBio’s SMRT測序技術開發中國圓田螺SSR標記不僅效率高,而且適用于中國圓田螺的資源評估。
關鍵詞:中國圓田螺;轉錄組;微衛星;多態性標記
中圖分類號:S932.4" " " " 文獻標志碼:A" " " " 文章編號:1674-3075(2025)02-0235-08
中國圓田螺(Cipangopaludina chinensis),隸屬于腹足綱(Gastropoda)、田螺科(Viviparidae)、圓田螺屬(Cipangopaludina),是我國養殖最廣的經濟淡水螺類(周康奇等,2021)。因其肉質鮮美,營養價值高,并具有一定的藥用價值,被消費者和養殖戶所喜愛,年消耗近百萬噸(陳李婷等,2019)。同時,田螺還是青魚、水蛭、中華絨毛蟹等重要經濟水產動物的天然餌料,在生態系統中發揮著重要的生態功能,具有重要的經濟價值和生態效益(Xiong et al,2017;Zhou et al,2022b)。近年來,我國田螺養殖均是未經過科學選育和評估的原生種群,長期采用“養繁一體”的養殖模式,導致近親繁殖嚴重,種質退化明顯,產量不穩定等問題逐漸突出。因此,加強田螺養殖過程中對群體多樣性的科學評估,對于田螺養殖產業可持續健康發展尤為重要。但目前國內外學者對中國圓田螺的研究主要集中在形態特征(葉苗等,2017;李哲等,2022)、營養成分(周康奇等,2021;羅輝等,2022)、生物活性(Xiong et al,2020;Zhao et al,2022;周康奇等,2023)和養殖技術(吳林,2020;楊軍等,2022)等方面,而對其微衛星標記的開發和遺傳多樣性的研究仍較為薄弱,因此,有必要對中國圓田螺開展群體遺傳學研究,以便為今后對該物種資源的挖掘利用和良種評估奠定基礎。
微衛星(microsatellite)又稱為簡單重復序列(simple sequence repeats,SSR),是指以1~6個核苷酸經多次重復單位組成的簡單多次串聯重復序列(陳鴻祿,2022)。其具有分布廣泛、共顯性遺傳、多態性高、檢測方便等特點(周康奇等,2020;常浩文等,2023),現已廣泛應用于方斑東風螺(Babylonia lutosa)(梁園等,2022)、梨形環棱螺(Bellamya purificata)(金武等,2022;Yuan et al,2024)和釘螺(Oncomelania hupensis)(丁煥,2018)等腹足類種群遺傳多樣性和遺傳結構方面的研究工作。然而,目前有關中國圓田螺SSR位點的開發與特征分析的相關報道仍較少。因此,本研究利用第三代PacBio’s SMRT測序技術獲取中國圓田螺全長轉錄組數據,開發中國圓田螺多態性SSR分子標記,并分析其特征和標記篩選,以期為田螺的種質資源保護利用、人工養殖和良種選育提供科學數據。
1" "材料與方法
1.1" "RNA提取
實驗材料為1個中國圓田螺個體(體重20.30 g,殼高46.05 mm,殼寬33.27 mm),采自廣西柳州里高鎮谷之韻稻螺養殖示范基地,采集腹足、腸、肝胰臟、鰓、性腺、食道、血液、唇8個組織樣品,液氮速凍后,置于-80 ℃冰箱中保存。通過Trizol法提取以上組織的總RNA,用Agilent 2100生物分析儀和瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA的完整性,用Nanodrop顯微分光光度計(Thermo Fisher)測定RNA的純度和濃度。
1.2" "文庫構建及RNA測序
利用PacBio’s SMRT測序技術進行中國圓田螺轉錄組測序。首先,用Oligo(dT)磁珠法富集mRNA,再將mRNA通過Clontech SMARTer PCR cDNA Synthesis Kit反轉錄為cDNA,利用PCR反應生成雙鏈cDNA,構建SMRTbell文庫。其次,通過PacBio Sequel II測序平臺對構建的文庫進行測序,獲得約57 G的原始轉錄數據,利用Minimap2將相似的FLNC reads進行層級聚類,獲取一致性序列后用Quiver算法進行校正,并用軟件cd-hit-v4.6.7去冗余。最后,共獲得26 312條Unigene序列,總長度為67 680 460 bp,平均長度為2 572 bp,N50的長度為2 904 bp,GC含量為42.59%(Zhou et al,2022a)。
1.3" "SSR位點搜索及引物設計
利用MISA軟件(http://pgrc.ipk-gatersleben.de/misa/ misa.html)對26 312條Unigene進行SSR位點搜索,搜索程序為單堿基重復次數≥10,二堿基重復次數≥6,三、 四、五、六堿基重復次數≥5,復合微衛星位點之間最大間隔堿基數為100 bp。用Primer 5(Version 2.4.0) 軟件對SSR位點前后的序列進行引物設計,使用M13通用接頭序列(TGTAAAACGACGGCCAGT)在上游引物5’方向進行修飾,并合成帶不同熒光基團的M13接頭序列。
1.4" "SSR位點驗證及多態性篩選
利用10個不同地理中國圓田螺群體對SSR位點進行驗證和多態性篩選,其中10個群體分別來自廣西境內珠江流域的那坡、融安、融水、大寺、興安、都安、梧州、全州、賀州和雙定,每個群體30個個體。從這10個中國圓田螺群體300個個體中,分別取20 mg新鮮腹足肌肉,采用磁珠法基因組DNA提取試劑盒(天根生化)提取基因組DNA,經紫外分析儀(BIO-RAD,Gel DocTM XR+)和1%凝膠瓊脂電泳檢測合格后,-20 ℃冰箱保存。PCR反應體系總體積為15 μL,包含2×Taq PCR Master Mix 7.5 μL,Mix primer 2.0 μL,DNA模板1 μL和ddH2O 4.5 μL。擴增程序為96 ℃預變性3 min;94 ℃變性30 s,62~52 ℃ Touch down梯度退火30 s,72 ℃延伸1 min,共30循環;72 ℃延伸10 min,4 ℃保存。取3.0 μL熒光PCR產物進行瓊脂糖凝膠電泳鑒定合格后,再經DNA測序儀ABI 3 730 xl進行熒光電泳檢測,并使用軟件GeneMarker V2.2.0對原始數據進行條帶分型。
1.5" "數據分析
使用GeneMarker軟件分析57對引物擴增結果,并使用GenAIex軟件對擴增出3個等位基因以上的位點進行平均等位基因數(Na),平均觀測雜合度(Ho),平均期望雜合度(He)計算。運用Cervus軟件計算各個位點的多態信息含量指數值(PIC)。
2" "結果與分析
2.1" "中國圓田螺SSR位點數量及分布
通過MISA軟件對中國圓田螺轉錄組的所有Unigene進行檢索,共在5 294條Unigene中找到8 058個SSR位點,其發生頻率(含有SSR的Unigene數量占總Unigene數量的比例)為20.12%,其中復合型SSR位點有1 606個,占總SSR位點的19.93%。SSR位點的出現頻率(SSR位點數量占總Unigene數量的比例)為30.62%,其中3 658條Unigene序列僅包含單個SSR位點,占比69.10%,此外,有1 636條Unigene序列包含1個以上SSR位點,占比30.90%(表1)。
2.2" "中國圓田螺SSR重復類型及特征
中國圓田螺轉錄組SSR重復類型較為豐富,1~6個核苷酸重復SSR均存在,但對不同核苷酸重復類型,所含SSR位點數量存在一定差異(表2)。其中,二核苷酸重復序列數量最多(4 647,57.67%),其次是三核苷酸(1 274,15.81%)、四核苷酸(1 239,15.37%)和單核苷酸重復序列(816,10.13%),五核苷酸和六核苷酸重復序列所占比例很小,分別只有0.48%和0.53%(表2)。
在中國圓田螺SSR序列的重復單元中,單核苷酸重復單元以(A/T)n為主,其SSR位點數為673,占總SSR位點數的8.35%,在單核苷酸重復單元中占比82.48%;二核苷酸重復單元以(AC/GT)n為主,其SSR位點數為2 806,占總SSR位點數的34.82%,在二核苷酸重復單元中占比60.38%;三核苷酸重復單元以(ATC/ATG)n為主,其SSR位點數為357,占總SSR位點數的4.43%,在三核苷酸重復單元中占比28.02%;四核苷酸重復序列有3種重復單元,以(AGAT/ATCT)n為主,其SSR位點數為313,占總SSR位點數的3.88%,在四核苷酸重復單元中占比25.26%(圖1)。
在中國圓田螺轉錄組微衛星位點中,4~7次重復的微衛星位點數量最多。此外,除了單核苷酸重復單元以16~19次重復為主外,二、三、四、五和六核苷酸重復單元均以4~7次重復為主,且4~7次重復在二核苷酸重復單元上分布的微衛星位點數量最多(圖2)。
2.3" "中國圓田螺SSR位點篩選及群體遺傳多樣性分析
隨機挑選出均勻分布的192對引物,以10個不同地理中國圓田螺群體混合DNA為模板進行PCR擴增,經熒光毛細管電泳檢測其擴增結果(圖3),初步篩選57對可能存在多態性的引物,利用廣西10個中國圓田螺群體對這57對引物進行多態性驗證,最終篩選到22對SSR引物具有多態性和穩定性。
利用這22對多態性SSR引物檢測廣西中國圓田螺群體的遺傳多樣性,共獲得102個等位基因,等位基因數為3~10個,平均等位基因數為4.636;觀測雜合度為0~0.600,平均值為0.286;期望雜合度為0.265~0.860,平均值為0.589;各位點PIC為0.247~0.844,平均值為0.547,其中有13個位點的總體PIC大于0.50,屬于高度多態位點,8個位點的PIC為0.25~0.50,屬于中度多態性,只有CMS028位點的PIC小于0.25,屬于低度多態性(表3)。
3" "討論
3.1" "中國圓田螺轉錄組SSR分布
近年來,隨著高通量測序技術的不斷發展,利用轉錄組測序技術挖掘SSR多態性位點已較為常見,與傳統方法相比,該技術具有方便快捷、成本低和效率高等優點,是一種有效的分子標記開發方法。然而,目前尚未發現基于中國圓田螺全長轉錄數據開發SSR位點的相關研究。因此,本研究基于PacBio Sequel II測序平臺,獲得26 312條Unigene序列,在5 294條Unigene中找到8 058個SSR位點,其發生頻率為20.12%,高于泥東風螺(B. lutosa)(6.86%)(熊鋼等,2020)和黃口荔枝螺(Thais luteostoma)(6.45%)(李威等,2015),遠低于扁玉螺(Glossaulax didyma)(45.34%)(盧瑋筱等,2018),這說明了不同物種間其轉錄組中SSR位點的發生頻率不同。SSR位點的發生頻率存在差異,不僅與物種間的差異有關,還與組織、測序平臺、SSR位點的挖掘工具和搜索條件、以及數據庫的豐富程度等有關(Varshney et al,2005;Wei et al,2011;馬軍等,2020)。例如,張秀英等(2012)在櫛孔扇貝BES-SSR的開發中運用不同的檢索條件,最終得到的SSR數量不同,導致同一物種的SSR發生頻率不同。
3.2" "中國圓田螺SSR以二核苷酸重復類型為主
從SSR重復類型上看,中國圓田螺以二核苷酸重復為主,占比57.67%,這與已報道的扇貝“渤海紅”(Argopecten irradians “Bohaihong”)和墨西哥灣扇貝(A." irradians concentricus)(譚杰等,2018)研究結果相似;與文蛤(Meretrix meretrix)(以單核苷酸重復為主,33.89%)(田鎮等,2021)、蝦夷扇貝(Mizuhopecten yessoensis)(以三核苷酸重復為主,45.87%)(倪守勝等,2018)等相比存在差異。這一差異可能與物種間的特異性、位點突變頻率及選擇性進化機制等有關(于愛清等,2019)。從SSR重復基元上看,中國圓田螺以(AC/GT)n為主,占總SSR位點數的34.82%,這與朱穎等(2023)對中華圓田螺、銅銹環棱螺(Bellamya aeruginosa)、多棱角螺(Angulyagra polyzonata)和湄公螺(Mekongia rivularia)4種代表性貝類的研究結果相符,均以二核苷酸重復基元(AC/GT)n為主。從SSR重復次數上看,中國圓田螺4~7次重復的SSR位點數量最多,且主要分布在二核苷酸重復序列上,與細角螺(Hemifusus ternatanus)(李清薈等,2013)重復次數集中在7~30次略有不同。Thao等(2013)發現SSR的重復次數在12次以上,則表明具有多態性SSR位點的比例就越高。中國圓田螺的SSR重復次數集中在4~7次,略低于其他物種SSR重復次數,說明SSR重復次數可能受到物種差異、編碼區和非編碼區的選擇壓力所影響。此外,本研究篩選到的22個SSR位點,有18個為二核苷酸重復類型,其余4個為三核苷酸重復類型,不僅證實了Dreisigacker等(2004)發現的低級重復單元多態性高于高級重復單元多態性這一推論,而且說明了從二核苷酸重復類型中篩選到具有多態性SSR位點的概率更高。
3.3" "廣西中國圓田螺群體遺傳多樣性
多態信息含量PIC是評價遺傳多樣性的一個關鍵指標,本研究中各位點PIC為0.247~0.844,平均值為0.547。根據Botstein等(1980)的劃分依據:PICgt;0.50為高度多態性,0.25lt;PIC≤0.50為中度多態性,PIC≤0.25為低度多態性,表明本研究開發的微衛星標記具有高度多態性,能夠提供豐富的遺傳信息,且在中國圓田螺種群遺傳學研究中具有較高的實用性。雜合度是評估種群遺傳多樣性高低的重要指標之一,其中,觀測雜合度反映的是雜合子所占的比例,而期望雜合度反映的是隨機挑選2個等位基因出現雜合子的概率,因不易受樣本量的影響,所以能更好地反映種群遺傳多樣性水平(Appleyard amp; Ward,2006;Qin et al,2013)。本研究對基于轉錄組數據得到的微衛星引物進行篩選,并在廣西中國圓田螺群體中進行了遺傳多樣性分析,其平均等位基因數為4.636,平均觀測雜合度為0.286,平均期望雜合度為0.589,可看出觀測雜合度顯著低于期望雜合度,推測廣西中國圓田螺群體可能存在近親繁殖或雜合子缺失等問題。原因有以下2方面:(1)在田螺養殖群體中,長期采用“養繁一體”養殖模式,近親繁殖的情況極為普遍,使得養殖群體的雜合度遠低于野生群體(方軍等,2020);(2)在進行PCR擴增時,未擴增的雜合子被當作純合子,導致雜合子數量減少,而純合子的數量增加(Kang et al,2013);此外,非隨機交配、瓶頸效應和隨機遺傳漂變等也導致群體中的雜合子缺失(莊振俊等,2022)。綜上所述,本研究基于中國圓田螺全長轉錄組數據挖掘的多態性微衛星位點,在中國圓田螺的群體遺傳多樣性分析中取得較好的效果,具有一定的參考價值,證實了利用轉錄組數據開發SSR位點的可行性。
參考文獻
常浩文, 劉志峰, 孫志賓, 等, 2023. 大菱鲆飼料轉化率相關微衛星標記的篩選[J]. 水產學報, 47(06):133-143.
CHANG H W, LIU Z F, SUN Z B, et al, 2023. Screening of microsatellite markers associated with feed conversion ratio in Scophthalmus maximus[J]. Journal of Fisheries of China, 47(06):133-143.
陳鴻祿, 2022. 基于線粒體基因和微衛星標記的大鱗副泥鰍群體遺傳學研究[D]. 武漢:華中農業大學.
陳李婷, 杜雪松, 文衍紅, 等, 2019. 廣西地區3種螺的含肉率及營養成分分析[J]. 肉類工業, (10):20-22.
丁煥, 2018. 應用微衛星位點研究安徽、江蘇地區湖北釘螺的群體遺傳結構[D]. 蘇州:蘇州大學.
方軍, 沈彥鵬, 張雷雷, 等, 2020. 基于轉錄組數據的青蛤微衛星標記開發與驗證[J]. 應用海洋學學報, 39(2):214-220.
FANG J, SHEN Y P, ZHANG L L, et al, 2020. Development and verification of SSR markers in Cyclina sinensis[J]. Journal of Applied Oceanography, 39(2):214-220.
金武, 曹靜越, 馬騁, 等, 2022. 梨形環棱螺11個地理種群遺傳多樣性和遺傳分化[J]. 淡水漁業, 52(2):16-21.
JIN W, CAO J Y, MA P, et al, 2022. Genetic diversity and genetic differentiation analysis of Bellamya purificata in eleven populations based on the microsatellite makers[J]. Freshwater Fisheries, 52(2):16-21.
李清薈, 陳曉姣, 黎中寶, 等, 2013. 細角螺微衛星DNA富集文庫構建及特征分析[J]. 海洋科學, 37(4):1-5.
LING Q H, CHEN X J, LI Z B, et al, 2013. Construction and Characterization of DNA Libraries enriched for Microsatellites repeat sequences in Hemifusus ternatanus[J]. Marine Sciences, 37(4):1-5.
李威, 趙姍, 焦海峰, 等, 2015. 黃口荔枝螺轉錄組數據的微衛星標記開發與分析[J]. 海洋科學, 39(11):61-67.
LI W, ZHAO S, JIAO H F, et al, 2015. Characterization and analysis of microsatellite markers in Thais luteostoma using next generation sequencing [J]. Marine Sciences, 39(11):61-67.
李哲, 吳勁松, 潘賢輝, 等, 2022. 中國圓田螺形態形狀對體質量的影響[J]. 河南農業科學, 51(7):154-162.
LI Z, WU J S, PAN X H, et al, 2022. Effects of Morphological Traits on Body Weight of Cipangopaludina chinensis[J]. Journal of Henan Agricultural Sciences, 51(7):154-162.
梁園, 付敬強, 沈銘輝, 等, 2022. 方斑東風螺3個選育世代遺傳多樣性和遺傳結構的微衛星分析[J]. 海洋科學, 46(10):85-93.
LIANG Y, FU J Q, SHEN M H, et al, 2022. Microsatellite analysis on genetic diversity and genetic structure of three successive selected generations of Babylonia areolate[J]. Marine Sciences, 46(10):85-93.
盧瑋筱, 陳永霞, 祁鵬志, 2018. 扁玉螺轉錄組SSR信息分析[J]. 浙江海洋大學學報(自然科學版), 37(3):215-220.
LU W X, CHEN Y X, QI P Z, 2018. Analysis of SSR Information in the Transcriptional Group of Neverita didyma[J]. Journal of Zhejiang Ocean University (Natural Science), 37(3):215-220.
羅輝, 陳李婷, 敬庭森, 等, 2022. 田螺科四種螺的肌肉主要營養成分[J]. 水產學報, 46(11):2177-2185.
LUO H, CHEN L T, JING T S, et al, 2022. Muscle nutrition analysis of four snail species of Viviparidae[J]. Journal of Fisheries of China, 46(11):2177-2185.
馬軍, 劉嘉鑫, 江智景, 等, 2020. 基于RNA-seq數據的密斑刺鲀SSR分子標記開發及鑒定[J]. 南方水產科學, 16(1):127-136.
MA J, LIU J X, JIANG Z J, et al, 2020. Development and identification of SSR markers based on RNA-seq data of Diodon hystrix[J]. South China Fisheries Science, 16(1):127-136.
倪守勝, 楊鈺, 柳淑芳, 等, 2018. 基于高通量測序的蝦夷扇貝基因組微衛星特征分析[J]. 漁業科學進展, 39(1):107-113.
NI S S, YANG Y, LIU S F, et al, 2018. Microsatellite Analysis of Patinopecten yessoensis Using Next-Generation Sequencing Method[J]. Progress in Fishery Sciences, 39(1):107-113.
譚杰, 姚高友, 劉志剛, 等, 2018. 扇貝“渤海紅”與墨西哥灣扇貝轉錄組SSR信息分析及unigene功能注釋[J]. 基因組學與應用生物學, 37(12):5242-5250.
TAN J, YAO G Y, LIU Z G, et al, 2018. SSR information analysis and unigene functional annotation of transcriptome from Argopecten irradians “Bohaihong” and A. concentricus[J]. Genomics and Applied Biology, 37(12):5242-5250.
田鎮, 陳愛華, 吳楊平, 等, 2021. 文蛤轉錄組中微衛星位點生物信息分析[J]. 海洋漁業, 43(2):160-167.
TIAN Z, CHEN A H, WU Y P, et al, 2018. Bioinformatics analysis of microsatellite sites in the RNA-sequencing of Meretrix meretrix[J]. Marine Fisheries, 43(2):160-167.
吳林, 2020. 稻螺綜合種養技術[J]. 漁業致富指南, 544(16):39-41.
熊鋼, 王曉清, 王佩, 等, 2020. 泥東風螺EST-SSR開發及其群體遺傳多樣性分析[J]. 漁業科學進展, 41(4):117-124.
XIONG G, WANG X Q, WANG P, et al, 2020. Development and genetic diversity analysis of Babylonia lutosa with EST-SSR markers[J]. Progress in Fishery Sciences, 41(4): 117-124
楊軍, 蔣明, 文衍紅, 等, 2022. 利用配合飼料養殖中國圓田螺初探[J]. 科學養魚, 399(11):68-69.
YANG J, JIANG M, WEN Y H, et al, 2022. Preliminary Study on Breeding of Cipangopaludina chinensis Using Compound Feed [J]. Scientific Fish Farming, 399(11):68-69.
葉苗, 樊天騏, 陳煉, 等, 2017. 兩種福壽螺與中國圓田螺齒舌的形態學特征比較[J]. 動物學雜志, 52(1):97-107.
YE M, FAN T Q, CHEN L, et al, 2017. Comparative Study on Morphology of Radula of Pomacea canaliculata, P. maculata and Cipangopaludina chinensis[J]. Chinese Journal of Zoology, 52(1):97-107.
于愛清, 施永海, 徐嘉波, 等, 2019. 長江刀鱭選育群體轉錄組EST-SSR的分布特征分析[J]. 漁業科學進展, 40(5):101-109.
YU A Q, SHI Y G, XU J B, et al, 2019. Characteristic analysis of microsatellites in selected Coilia ectenes using a transcriptome dataset[J]. Progress in Fishery Sciences, 40(5): 101-109.
張秀英, 張曉軍, 趙翠, 等, 2012. 櫛孔扇貝BES-SSR的開發及遺傳多樣性分析[J]. 水產學報, 36(6):815-824.
ZHANG X Y, ZHANG X J, ZHAO C, et al, 2012. The development of BAC-end sequence-based microsatellite markers and analysis on population genetic diversity in Zhikong scallop (Chlamys farreri) [J]. Journal of Fisheries of China, 36(6):815-824.
周康奇, 林勇, 龐海峰, 等, 2021. 中國圓田螺肌肉營養成分及消化酶活力比較分析[J]. 淡水漁業, 51(6):106-112.
ZHOU K Q, LIN Y, PANG H F, et al, 2021. Comparison analysis of muscles nutrient composition and digestive enzyme in Cipangopaludina chinensis[J]. Freshwater Fisheries, 51(6):106-112.
周康奇, 潘賢輝, 黃姻, 等, 2020. 基于RNA-seq技術的奧利亞羅非魚轉錄組SSR位點信息分析[J]. 河南農業科學, 49(11):147-152.
ZHOU K Q, PAN X H, HUANG Y, et al, 2020. Analysis of SSR Site Information in Transcriptome of Oreochromis aurea Based on RNA-seq[J]. Journal of Henan Agricultural Sciences, 49(11):147-152.
周康奇, 韋孜娜, 李哲, 等, 2023. 不同低溫時間無水保活對中國圓田螺存活、營養組成、消化酶活性及抗氧化指標的影響[J]. 水產學報, 48(6):194-204.
ZHOU K Q, WEI Z N, LI Z, et al, 2023. Effects of different times of low temperature anhydrous preservation on survival, nutritional composition, enzyme activities and antioxidant indexes of Cipangopaludina chinensis[J]. Journal of Fisheries of China, 48(6):194-204.
朱穎, 陳瑜, 唐俊, 等, 2023. 田螺科4種代表性貝類基因組調研及SSR特征分析[J]. 江蘇農業科學, 51(6):40-47.
ZHU Y, CHEN Y, TANG J, et al, 2023. Genome investigation and SSR characteristics analysis of four representative shellfishes in Viviparidae [J]. Jiangsu Agricultural Sciences, 51(6):40-47.
莊振俊, 唐美君, 張冬冬, 等, 2022. 中華絨螯蟹“長蕩湖1號”連續3個世代的遺傳多樣性分析[J]. 水生生物學報, 47(9):1523-1533.
ZHUANG Z J, TANG M J, ZHANG D D, et al, 2022. Genetic Diversity of Three Consecutive Generations of Eriocheir Sinensis 'Changdang Lake 1' [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 47(9):1523-1533.
APPLEYARD S A, WARD R D, 2006. Genetic diversity and effective population size in mass selection lines of Pacific oyster (Crassostrea gigas) [J]. Aquaculture, 254:148-159.
BOTSTEIN D, WHITE R L, SKOLNICK M, et al, 1980. Construction of a genetic linkage map in man using restriction fragment length polymorphisms[J]. American Journal of Human Genetics, 32(3):314.
DREISIGACKER S, ZHANG P, WARBURTON M L, et al, 2004. SSR and pedigree analyses of genetic diversity among CIMMYT wheat lines targeted to different Megaenvironments[J]. Crop Science, 44(2):381-388.
KANG J H, KIM Y K, PARK J Y, et al, 2013. Development of microsatellite markers for a hard-shelled mussel, Mytilus coruscus, and cross-species transfer[J]. Genetics and Molecular Research: GMR, 12(3):4009-4017.
QIN Y, SHI G, SUN Y, 2013. Evaluation of genetic diversity in Pampus argenteus using SSR markers[J]. Genetics and Molecular Research, 12(4):5833-41.
THAO D V, YAMASHITA M, WATANABE A, et al, 2013. Development of tetranucleotide microsatellite markers in Pinus kesiya Royle ex Gordon[J]. Conservation Genetics Resources, 5(2):405-407.
VARSHNEY R K, GRANER A, SORRELLS M E, 2005. Genic microsatellite markers in plants: features and applications[J]. Trends in Biotechnology, 23(1):48-55.
WEI W L, QI X Q, WANG L H, et al, 2011. Characterization of the sesame (Sesamum indicum L.) global transcriptome using Illumina paired-end sequencing and development of EST-SSR markers[J]. BMC Genomics, 12(1):451.
XIONG Q P, HUANG S, CHEN J H, et al, 2017. A novel green method for deproteinization of polysaccharide from Cipangopaludina chinensis by freeze-thaw treatment[J]. Journal of Cleaner Production, 142:3409-3418.
XIONG Q P, LI H L, ZHOU L, et al, 2020. A sulfated polysaccharide from the edible flesh of Cipangopaludina chinensis inhibits angiogenesis to enhance atherosclerotic plaque stability[J]. Journal of Functional Foods:66.
Yuan C, Li Z, Zhou K, et al, 2024. Genetic diversity and population structure of Bellamya purificata in Guangxi[J]. Plos one, 19(6):e0305197.
ZHAO K M, LIU Z H, ZHANG J, et al, 2022. Property of arylsulfatase and β-glucuronidase extracted from digestive tracts of Cipangopaludina chinensis and their cleavage performance on conjugated natural estrogens[J]. Environ Sci Pollut Res Int, 29(42):64244-64251.
ZHOU K Q, CHEN Z, DU X S, et al, 2022a. SMRT Sequencing Reveals Candidate Genes and Pathways with Medicinal Value in Cipangopaludina chinensis[J]. Front Genet, 13:881952.
ZHOU K Q, QIN J Q, PANG H F, et al, 2022b. Comparison of the composition and function of gut microbes between adult and juvenile Cipangopaludina chinensis in the rice snail system[J]. PeerJ, 10:e13042.
(責任編輯" "鄭金秀" "崔莎莎)
Feature Analysis and Marker Development of Microsatellites for Cipangopaludina Chinensis Based on Full-length Transcriptome Data
WEI Xiaokai1,2, ZHOU Kangqi2, ZOU Xinxi1,2, LIN Yong2, YE Hua1, LUO Hui1, QIN Junqi2,CHEN Zhong2, HUANG Yin2, DU Xuesong2, ZHANG Caiqun2, PAN Xianhui2
(1. Southwest University, Chongqing" "402460, P.R. China;
2. Guangxi Key Laboratory of Aquatic Genetic Breeding and Healthy Aquaculture,Guangxi Aquatic Breeding Base, Guangxi Academy of Fishery Sciences, Nanning" "530021, P.R. China)
Abstract:In this study, we developed polymorphic SSR markers for Cipangopaludina chinensis using high throughput sequencing and then screened the genomic microsatellite loci and analyzed their features. The aim of the study was to provide technical support for field snail germplasm utilization and breeding. The study was based on the full-length transcriptome data for C. chinensis, which was obtained through PacBio's SMRT sequencing. A total of 8 058 SSR loci were identified and 1-6 nucleotide SSR repetition types were observed. Of these, dinucleotide repeat SSRs were the most common with 4 647 SSR loci (57.67%), followed by trinucleotide repeat SSRs with 1 274 SSR loci (15.81%). The AC/GT motif was the primary repeat unit among dinucleotide motifs, accounting for 34.82% of the total SSR loci. Then, 192 pairs of primers were synthesized randomly to screen the polymorphic SSR primers using 10 different geographical populations of C. chinensis. A total of 22 pairs of polymorphic SSR primers were obtained, and the polymorphic SSR markers were used to analyze the genetic diversity of C. chinensis populations in different geographic regions of Guangxi Province. The amplification products of the 22 SSR markers were steady and 102 alleles were detected across all markers, with an average number of alleles (Na) of 4.636. The average observed heterozygosity (Ho) and expected heterozygosity (He) of the alleles were 0.286 and 0.589, respectively. The polymorphic information content (PIC) ranged from 0.247 to 0.844, with the average value of 0.547. Among the 22 SSR loci, 13 were determined as highly polymorphic loci (PIC gt; 0.50), and 8 were moderately polymorphic loci (0.25 lt; PIC ≤ 0.50), indicating high genetic diversity within the C. chinensis population. In conclusion, PacBio SMRT sequencing technology was an efficient means of developing SSR markers for C. chinensis, and the markers proved suitable for evaluating the C. chinensis resource.
Key words: Cipangopaludina chinensis;transcriptome;microsatellite;polymorphic marker
基金項目:國家重點研發計劃項目(2022YFD2400700);廣西創新驅動發展專項資金項目(AA17204080-5);廣西特色淡水魚產業創新團隊項目(nycytxgxcxtd-2021-08);廣西自然科學基金項目(2020GXNSFBA297067);廣西科技基地與人才項目(AD21220010)。
作者簡介:韋小凱,1999年生,女,碩士研究生,主要從事水產動物遺傳育種研究。E-mail:2194742964@qq.com
共同第一作者:周康奇,1990年生,女,助理研究員,主要從事水產遺傳育種與資源增殖研究。E-mail:2472797247@qq.com
通信作者:潘賢輝。E-mail:panxhfisher@126.com