
中圖分類號:G632 文獻標識碼:A
《普通高中生物學課程標準(2017年版2020年修訂)》在教學與評價中建議:加強和完善生物學實驗教學,應鼓勵學生參與設計實驗,讓學生在實驗活動中了解事物的本質.書中還指出,為幫助學生理解選擇性必修課程概念5的內容,促進學生生物學學科核心素養的提升,應開展下列教學活動:利用聚合酶鏈式反應(PCR)擴增DNA片段并完成電泳鑒定,或運用軟件進行虛擬PCR實驗.PCR和電泳兩個技術是生物科研中基礎實驗技術,應用廣泛,
1深度學習的內涵
深度學習是指在教師引領下,學生圍繞具有挑戰性的學習主題,全身心積極參與,體驗成功、獲得發展的有意義的學習過程.深度學習,不是把知識平移、傳輸給學生,而是在“活動與體驗”中進行的1.只有深度學習PCR和電泳,才能深刻理解科研文獻以及高三生物習題中的電泳圖和PCR相關內容.
2 實驗操作過程
2.1 前期準備工作
參與本實驗的是選修生物信息技術課的20名學生,實驗前將學生分為4個學習小組.各小組自主討論確定擴增的基因,自主設計引物,自主學習高壓蒸汽滅菌鍋、PCR儀、電泳儀等設備的操作,再進行基因片段的擴增及電泳鑒定.各組根據文獻以及教師的建議,最后選用自己的口腔上皮細胞,快速且簡便地提取DNA進行PCR實驗.4組學生通過利用NCBI網站下的PickPrimers小工具,在線設計引物,見表1.除了SRY基因沒有內含子,擴增的是全長基因;其余3個基因比較大,只是擴增基因的部分片段。
表1各小組擬擴增的基因和設計的相應引物

表1 (續表)

2.2 提取口腔上皮細胞DNA
參照徐小金《“DNA的簡易提取及片段的擴增\"實驗教學設計》中的方法提取口腔上皮細胞的DNA[2].(1)漱口,用咽拭子在口腔黏膜上刮10次,將咽拭子放在含有 500μL 生理鹽水的離心管中多次攪動,使口腔上皮細胞盡可能多地落入生理鹽水中.(2) 12 000rpm 離心 3min ,棄上清,瀝干.(3)加入 5×TBE 溶液 50μL 混勻后 60°C 水浴,處理 30min 后,取出備用
2.3 進行PCR
為減少試劑的浪費,減少學生的加樣次數,本實驗中對教材中的PCR反應體系進行整合,見表2.
表2PCR反應體系

擴增INS、EGFR、ACTB基因片段的PCR反應程序為: 98°C 預變性, 5min;95°C 變性,
:55°C 復性, 30sec : 72°C 延伸,
;最后延伸72°C,5min ;循環次數設定為30.擴增SRY基因的延伸時間改為50秒,其余參數不變.
2.4 瓊脂糖凝膠電泳與成像
稱取 1g 瓊脂糖,加到 50mL 的 1×TAE 緩沖液中,加熱至充分溶解,冷卻至 60°C 左右后,加入核酸熒光染料,混勻后制膠.凝固后輕拔梳子,取出凝膠置于盛有 1×TAE 電泳緩沖液的電泳槽內,(提示學生上樣孔靠近哪一極),并使電泳緩沖液沒過凝膠 0.5mm 左右.取 PCR 擴增后產物 10μL 與 2μL 的 6× Loading-Buffer上樣緩沖液吹打混勻,上樣.恒壓 8V/cm 條件下電泳 20min .電泳結束后,用凝膠成像儀拍照,觀察并分析電泳條帶,并在小組內和小組間進行交流討論
2.5 分析實驗結果
第一次擴增的電泳結果如圖1所示,其中SRY基因片段和EGFR基因片段沒有擴增成功,第2組擴增的胰島素基因片段條帶不夠亮,第4組擴增出來的條帶大小與預期不符,是非特異性條帶.
圖1第一次PCR的電泳結果

經過組內學生交流與老師的建議,調整PCR反應程序,再次擴增.其中第1、3組將復性溫度降低至53°C ,第2組將復性溫度調整為 54°C ,第4組將復性溫度提高至 57% .結果如圖2所示.

在第二次PCR中,第1、2、4小組擴增出目的基因片段,只是條帶較弱.第3小組第二次PCR仍未擴增到EGFR基因片段,所以和教師一起反思分析.我們利用Bioedit軟件將上游引物EGFRF和下游引物EGFRR序列分別與EGFR基因全長序列及其mRNA序列比對,結果如圖3、圖4所示,從中可看出未擴增出EGFR基因片段的原因是:該小組所用引物是以mRNA序列進行設計的(兩引物間大小正是 354bp ),而實際PCR的模板是人口腔上皮細胞的基因組DNA,兩引物間長度有 8572bp ,所以擴增不出來。

第4小組也對第一次PCR出現非特異性條帶進行序列比對的分析,比對結果如圖5所示.通過比對發現上游引物ACTBF設計在ACTB基因的內含子位置.而內含子保守性相對較低,第一次擴增時,復性溫度可能偏低,上游引物結合到非模板位置,因此出現了非特異性條帶.而再次擴增時,提高了復性溫度,上游引物結合到設計的模板鏈的位置,擴增出了目的基因片段.

3 教學小結
3.1 成功經驗
本次實驗由學生自主確定目的基因并設計引物,這能讓學生深度掌握PCR的核心內容,而不是加一下試劑走過場而已.學生通過全流程參與各個環節,深度理解DNA熱變性、引物的本質與方向、瓊脂糖凝膠的配制、核酸染料與指示劑的區別與作用、載樣緩沖液的作用與使用、DNA成像的原理和DNA在凝膠中遷移等微觀層面的知識等.本實驗的深度學習,還可以讓學生感受PCR與成像的神奇之處.在平時關于PCR的習題中,也能更得心應手.高考中關于PCR與電泳的習題,痛點大多集中于引物方面與電泳圖分析方面.所以學生通過體驗引物的設計和電泳結果的分析,可深度掌握PCR的內容.
為強化教學引導效果,在將凝膠放人電泳槽的過程中,教師可讓學生來操作.未接觸過瓊脂糖凝膠電泳的學生會不知所措,隨意放置凝膠.此時教師及時引導學生要注意電泳槽的“ + ”極和“-”極,并提問:在電泳液中DNA帶什么電?學生馬上恍然大悟:DNA帶負電,上樣孔應朝向“-”極一側
通過PCR擴增和瓊脂糖凝膠電泳的實際操作,學生可以感受分子生物學實驗的嚴謹,規范掌握微量移液器、電泳等操作.多數小組成功擴增出目的DNA片段,通過電泳與成像觀察到預期條帶,直觀理解實驗應用.對于一開始未達到的實驗預期進行分析并進一步改進,可以促進學生科學思維、科學探究等核心素養的發展,培養學生質疑的精神.分組學習模式也可以提高學生的配合與責任意識.雖然第3組最終沒有擴增出目的基因片段,但通過分析找到了原因,這使他們對引物設計等的學習可能會更加深刻.
3.2 反思與不足
在操作層面上最大的問題是微量移液器的使用,教師應在課前讓學生充分練習微量移液器.可以課前先模擬PCR反應體系的添加,特別是1微升左右試劑的添加,再或者可以把引物進行稀釋,這樣引物的添加就容易操作些.在上樣環節,也要提前模擬練習,以提高實驗教學的效率.還有一點遺憾的是,為了確保結果分析的嚴謹性,應將電泳條帶送去測序,以判斷擴增的序列是否為目的片段,以確定第4組出現的非特異性條帶是否符合預期推測
參考文獻:
[1]郭華.深度學習及其意義[J].課程·教材·教法,2016(11) :59.
[2]徐小金.“DNA的簡易提取及片段的擴增”實驗教學設計[J].生物學教學,2023,48(6):56-57.
[責任編輯:孫美齊]