蛋白質提取分離分析及米氏常數測定的實踐及效果

中圖分類號 G642.1 文獻標識碼A 文章編號 1007-7731（2025）13-0118-04

DOI號10.16377/j.cnki.issn1007-7731.2025.13.030

Practice and effect of protein extraction， separation， analysis， and Michaelis constant determination

JIA Haoran HAN Peng ZHANG Yantao ZHANG Liquan （CollegeofLife Sciences，Inner Mongolia University，HohhotO1oO21， China）

AbstractProtein extraction，separation，analysis and determination of Michaelis constant are the comprehensive experimental coursecontents inthe teaching sylabusofbiochemistryexperiments.In thisexperimental practice， commercially available mung bean sprout stem segments were used as experimental materials.The total protein was extracted bygrinding method，andtheconcentrationand distributionof total protein were determinedby BCA method and SDS-PAGE electrophoresis.The Michaelis constant of acid phosphatase in total protein was determined using disodium p-nitrophenyl phosphate （PNPP-N ）as the substrate under acidic conditions[37 °C ，0.2 mol/L HAc-NaAc ^α bufr （pH=5.6）.The results showed that the total protein concentration of mung bean sprout stem segments was 4.374 mg/mL.Under acidic conditions，the K_m of acid phosphatase in the total protein was 5.552 5 mmol/L，and the V_m was 0.0743mmol/（L·min）.This practical exercise significantly enhancedstudents’operational understandingof fundamentalbiochemicaltechniques including protein extraction/purification，quantitative analysis，and determination of Michaelis constant.Furthermore，it provided hands-on experience with esential methodologies such asprotein isolationand SDS-PAGE electrophoresis， while efectively fostering scientific curiosityand research enthusiasm among participants.

Keywords Biochemistry; extraction and determination of protein; Michaelis constant; mung bean sprouts

蛋白質是高校生物化學課程的核心教學內容之一。其中，蛋白質的分離、濃度測定及分析鑒定等實驗課程，是生物技術專業本科生深入理解和掌握蛋白質基礎理論的重要實踐內容[。酶是一類具有高效催化功能的蛋白質，其反應動力學研究是生物化學的核心內容[2-3]。由于酶在生物體內含量較低，直接檢測困難，通常通過測定其活性來進行定量分析[4]。

米氏常數測定是生物化學實驗的經典內容，Michaelis等5應用動力學方法推導得到酶催化過程的動力學方程，反應速度 V=V_m[S]/（K_m+[S]）=V_m/（1+ K_m/[S]） ，其中 V_m 為酶促反應最大速度； K_m 為米氏常數；[S]為底物濃度。 K_m 反映了酶和底物親和力的大小，是酶促反應速度達到最大反應速度 50% 時的底物濃度[6-7]。磷酸酶是一種促使底物去磷酸化的酶，依據其反應條件可分為堿性磷酸酶（Alkalinephosphatase，EC3.1.3.1，ALP）和酸性磷酸酶（Acidphosphatase，EC3.1.3.2，AP）[8]。ALP廣泛存在于原核生物和哺乳動物組織，是一種底物專一性較低的磷酸單酯水解酶[9-10]。AP普遍存在于土壤和植物體內[1]，參與植物體磷營養的調節和逆境適應[12]。

在生物化學實驗課程的實踐學習中，依據教學大綱中“蛋白質粗液的提取”“蛋白質濃度測定及SDS-PAGE電泳檢測”以及“米氏常數測定\"等相關內容，以市售綠豆芽為實驗材料，經研磨法獲得蛋白質粗提物，利用BCA法測定蛋白濃度，通過SDS-PAGE電泳檢測，并在 0.2mol/LHAc-NaAc 緩沖液C $_ ＼mathrm { p H } 5 . 6 ＼$ 條件下，以對硝基苯磷酸二鈉（PNPP- ?Na₂ ）為底物8測定酸性磷酸酶的米氏常數，全面系統地學習了蛋白質化學的基本理論知識，同時了解了蛋白酶學的研究和發展歷程，掌握了離心分離、分光光度法測定物質濃度、SDS-PAGE電泳等基本實驗技能。

1實驗設計

1.1材料

以市售綠豆芽為實驗對象。試劑： 0.1mmol/L 溶液， 0.1mol/L （20 Na₂CO₃-NaHCO₃ 緩沖液（ Δ?∣pH 10.0）， 0.2mol/L HAc-NaAc緩沖液 （pH5.6） ，5.0 mmol/L PNPP- ?Na₂（pH 5.6 ），BCA protein assaykit（Beytime），蛋白標準品BSA（ 0.5mg/mL ），Tris-甘氨酸電泳緩沖液， 30% Arc， 4× SDS-PAGE分離膠緩沖液，4×SDS-PAGE濃縮膠緩沖液， 10% APS，TEMED， 20×TBS 緩沖液， 2×sDS 上樣緩沖液。儀器：試管，取液器，酶標儀，離心機，垂直電泳儀，研缽等。

1.2實驗方法

1.2.1 標準曲線繪制 取7支試管，分別記為0、1、2、3、4、5、6，然后依次加人 0.1mol/L （202 Na₂CO₃- NaHCO₃ 緩沖液 （pH10.0）5.0、4.8、4.6、4.2、3.8、3.4 3.0mL ，再分別加入 溶液 0.0.2，0.4 、0.8、1.2、1.6、2.0mL ，搖勻，室溫放置 10min 。分別吸取 0.2mL 混合液加于酶標板孔中，測定 0D₄₁₀ 值，實驗設3次重復。以濃度為橫坐標，OD值為縱坐標，利用Excel軟件繪制標準曲線。

1.2.2蛋白標準品BSA濃度標準曲線繪制 依照BCAproteinassaykit（Beytime）說明書配置BCA工作液，分別取蛋白標準品 BSA（0.5mg/mL）0.1.2，4.8，12， （2016.20μL 加入酶標板孔中，再用 1×TBS 緩沖液補足到20μL ，配制濃度分別為 0.0.025.0.050.0.100.0.200 0.300，0.400，0.500mg/mL 的標準品BSA。再向各孔加人 200μL BCA工作液，37℃放置 20min ，測定 OD₅₆₂ 值，實驗設3次重復。以濃度為橫坐標，OD值為縱坐標，利用Excel軟件繪制標準曲線。

1.2.3蛋白質粗液提取 取市售綠豆芽莖段約20g ，在研缽中徹底搗碎，室溫靜置 0.5h ，采用雙層紗布進行過濾，濾液 4000r/min 離心 10min ，用移液器吸取上清液于 Epp 管中，即為蛋白質粗提液， 4^°C 存放備用。

1.2.4蛋白質粗提液濃度測定 取 20μL 蛋白質粗提液于酶標板孔中，加入 200μL BCA工作液，37°C 放置 20min ，測定 OD₅₆₂ 值，實驗設3次重復。利用1.2.2標準曲線方程計算獲得蛋白濃度。

1.2.5SDS-PAGE電泳檢測 分別配置 10% 分離膠和 5% 的濃縮膠制備SDS-PAGE電泳凝膠。取1000μL 蛋白質粗酶液，冷凍干燥至粉末狀，用15μL 1× TBS緩沖液溶解，加入等體積 2×SDS 上樣緩沖液后，沸水浴 5min ，冷卻至室溫， 12 000r/min 離心 10min ，取 20μL 上清液點樣，經SDS-PAGE電泳分離、考馬斯亮藍染色后，利用凝膠成像系統進行拍照分析。

1.2.6酸性磷酸酶米氏常數測定 取7支試管，分別記為0、1、2、3、4、5、6，各加入 5.0mmol/L PNPP-Na₂ （ pH 5.6） 溶液 0，0.10，0.14，0.20，0.25，0.33， 0.50mL ，再用 0.20mol/LHAc-NaAc（pH 5.6） 緩沖液補足至 0.50mL，37^°C 預熱 2min ；依次向各試管中加入 37°C 預熱的蛋白質粗提液 0.50mL ，立即搖勻，37°C 精確反應 10min 后，立即加人 0.1mol/L Na₂CO₃-NaHCO₃ 緩沖液（ pH 10.0） 終止反應。分別吸取 200μL 上述反應液于酶標板孔中，測定 0D₄₁₀ 值，實驗設3次重復。利用1.2.1標準曲線方程計算獲得反應產物 pN_p 的濃度，結合反應時間求出反應速度 V ，以 1/V 為縱坐標，1/[S]為橫坐標作圖，求出 K_m 值和 V_m 值。

2結果與分析

2.1 標準曲線繪制

由圖1可知， 標準曲線方程為 y=11.062x+0.0444，其中 R²=0.992 1 。蛋白標準品BSA的標準曲線方程為 y=0.5857x+0.2234 ，其中 R²=0.9578 。

（A）（B）分別為 標準曲線和蛋白標準品BSA標準曲線。

2.2 蛋白質粗提液濃度測定

濃度測定進行3次重復，分別獲得 0D₅₆₂ 值為2.646、2.794、2.916、 ，其平均值為 2.785 。利用標準曲線方程 y=0.5857x+0.2234 ，計算得到的蛋白質粗提液濃度為 4.374mg/mL 。

2.3 SDS-PAGE電泳檢測

由圖2可知，利用研磨法成功獲得了實驗材料綠豆芽莖段中的總蛋白。

1/V_m=13.416 因此，獲得本實驗中酸性磷酸酶的 0.0743mmol/（L·min）， K_m=5.5525mmol/L

2.4酸性磷酸酶米氏常數測定

依據反應前各試管PNPP- ?Na₂ 的加入量，計算獲得反應前各試管中PNPP- ?Na₂ 濃度的 1/[S] ，如表1所示。反應結束后，測定獲得 0D₄₁₀ 值，代入標準方程 y= 11.062x+0.044 4 分別計算獲得各反應終點時PNPP-Na₂ 的濃度（表1）。根據公式 V=x/t （ Ω_t=10min， ，計算獲得 1/V 由圖3可知，利用1/V-1/[S]雙倒數法作圖獲得曲線方程為 y=74.492x+13.416 ，即 K_m/V_m=74.492。

3實踐效果

蛋白質提取分離、鑒定及米氏常數測定是生物化學實驗教學大綱中的必修內容[13]。蛋白質的定量和定性分析技術是蛋白質化學中的基本技術之一，BCA法和SDS-PAGE電泳是定量測定蛋白濃度的常用方法。學生通過課前預習基礎理論；課中在教師指導下進行實驗操作；課后通過撰寫實驗報告深化理解，成功利用BCA法測定了實驗材料綠豆芽莖段總蛋白的含量，并在冷凍濃縮后通過SDS-PAGE電泳測定了總蛋白的分布特征。通過課程實踐學習，深刻理解了蛋白質提取鑒定和酶學中米氏常數的基本概念，BCA測定蛋白濃度以及SDS-PAGE電泳的原理。其次，掌握了離心分離、SDS-PAGE電泳、酶標儀使用等基本實驗技能。

米氏常數是蛋白酶與底物親和性的表征[6-7]，其受多種因素的影響。本文以PNPP- ?Na₂ 為底物，在酸性條件下測定了綠豆芽莖段總蛋白中酸性磷酸酶的米氏常數。在實驗數據處理的過程中，學生深人理解了酶促反應動力學的特點，掌握了米氏常數反映酶與底物親和性的方法原理，以及底物濃度對酶促反應速率的影響。該實驗過程不僅夯實了其基礎理論知識，同時訓練了實驗技能和科研思維。通過本次實驗實踐，了解到團隊協作是科研工作的關鍵要素，小組成員通過優勢互補和分工合作，顯著提升了實驗效率和質量。將課堂所學應用于解決實驗過程中的實際問題，加深了學生對理論知識的理解，培養了其科學思維能力，激發了其科研熱情。

綜上，本文通過生物化學實驗蛋白質提取分離分析及米氏常數測定的實踐實驗，成功利用BCA法測定了綠豆芽莖段總蛋白的含量，通過SDS-PAGE電泳分析了總蛋白的含量分布，同時測定了綠豆芽莖段總蛋白中酸性磷酸酶的米氏常數值。本次實驗課程系統性地強化了蛋白質提取分離、定量分析及米氏常數測定等基礎理論知識的實踐認知。通過將抽象復雜的理論概念轉化為具體的實驗操作，加深了對專業知識的理解；通過儀器設備的實際操作深人掌握了其工作原理，激發了學生對科學研究的興趣和熱情。

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