丁 志 鄭江紅 鄧智明 楊松林
[摘要]目的:應用大鼠預構皮瓣模型,探討基因治療技術產生的血管內皮生長因子促進預構皮瓣血管新生和皮瓣存活的可能性,為臨床上尋找加速預構皮瓣成熟的新方法提供實驗依據。方法:20只SD大鼠每只腹部兩側各構建一個預構皮瓣,共構建40個皮瓣,每只大鼠兩側皮瓣按隨機原則進行不同的處理,分別歸于實驗組或對照組,每組各20個皮瓣。于大鼠腹部兩側各標記3cm×2cm矩形預構區,短邊平行于腹股溝韌帶,自尾側短邊中點向后縱向切開后肢皮膚,剝離出長約2cm的股動靜血管束,遠端結扎切斷。在兩側預構區域的中軸線上,于真皮與肉膜層間各制作一皮下隧道,實驗組的隧道壁皮下組織內注射攜帶有VEGF基因的腺病毒,同法向所有對照組的隧道壁軟組織內注射等量生理鹽水。將已剝離好的血管束向顱側翻轉置入相應皮下隧道內。所有已植入股血管的預購區域2周后均被制成以植入血管束為蒂的島狀皮瓣,從兩組中各取一個皮瓣進行免疫組化染色,觀察有無VEGF生成,其余島狀皮瓣均縫回原處。形成島狀皮瓣后第七天觀察皮瓣存活及血管新生情況。結果:實驗組與對照組的皮瓣平均存活率分別為(90.48±1.89)%、(69.75±2.36)%,其差異有統計學意義(P<0.01);血管放射顯影圖上,實驗組植入血管周圍見廣泛白色顯影,尤以血管兩端明顯,而對照組新生血管顯影僅局限于植入血管周圍;組織學切片顯示實驗組植入血管周圍新生血管豐富,以毛細血管為主,并見肉芽成份,對照組新生血管相對較少,兩組間新生小血管管腔大小則無明顯差異;免疫組化檢測顯示僅實驗組皮瓣中有VEGF表達。結論:腺病毒-VEGF基因重組體能通過促進預構皮瓣的血管新生,增加預構皮瓣的存活率。
[關鍵詞]血管內皮生長因子;預構皮瓣;基因治療;腺病毒
[中圖分類號]R622 Q813 [文獻標識碼]A [文章編號]1008-6455(2009)03-0332-04
Improve survival of prefabricated flap with adenovirus vectors encoding for VEGF in rats
DING Zhi,ZHENG Jiang-hong,DENG Zhi-ming,YANG Song-lin
(Department of Plastic Surgery, the Sixth People′s Hospital Affiliated to Shanghai Jiaotong University,
200233,Shanghai,China)
Abstract: Objective This study investigated the feasibility of local administration of adenovirus vectors encoding for VEGF to induce regional angiogenesis and improve the survival of prefabricated flap in rat prefabricated flap model, so as to provide experimental evidence for a new method with which we can accelerate maturation of prefabricated flap in clinics. Methods 40 prefabricated flaps were created on the left and right abdominal walls in 20 SD rats. Two prefabricated flaps in each rat were randomly allocated to experiment group or control group, and each group contains 20 flaps. In all animals, two 3cm×2cm rectangular skin flaps were designed obliquely on the abdominal wall so that the short side would lie parallel to inguinal ligament. Longitudinal incisions were made on both hind limbs starting from the midpoint of the short side down to the ankle. 2cm long femoral artery, vein were dissected as a bundle and ligated distally. A tunnel was created in the subcutaneous tissue between dermis and panniculus carnosus at the central axis of each planned skin flap. The subcutaneous tissue around the tunnel was injected with adenovirus vectors encoding for VEGF(Ad-VEGF) in experiment group, and with saline in equal amounts in control group. The prepared femoral vessel bundle was then turned over and passed through correspond tunnel. Two weeks later, abdominal island flap based solely on the implanted vessel was elevated. Select one flap from each group to observe the expression of VEGF. Other flaps were resutured into position. Flap viability and neovascularisation were evaluated on postoperative day 7 after the second surgical intervention. Results There was a significant increase in mean survival rate of prefabricated flaps in the Ad-VEGF group compared to the control group: Ad-VEGF, (90.48±1.89)%vs. saline, (69.75±2.36)(P<0.01). Microangiographic studies showed widespread neovascularisation around the pedicle-especially in the proximal and distal end-in experiment group, but new vessel formation is confined to the vicinity of the pedicle in control group; Histological examination done under high-power magnification(×100) revealed rich vascularity and mild inflammation surrounding the implanted vessel in experiment group, but small amount of new vessel was found in control group. The calibres of the new vessel from two groups were similar; Immunohistochemical stain showed that the VEGF was expressed in the survival tissue of the flap treated with Ad-VEGF, but it was not found in the control group. Conclusion Adenovirus-mediated VEGF gene therapy can increase the survival of prefabricated flaps through inducing regional angiogenesis.
Key words: vascular endothelial growth factor; prefabricated flap; gene therapy; adenovirus
預構皮瓣應用中要解決的重要問題是知名血管植入預構區域后,建立新的血供系統所需時間較長。近年來,有報導一些多肽類生長因子如VEGF(Vascular endothelial growth factor, 血管內皮生長因子)、bFGF、TGF-β等[1-2]通過直接或間接刺激血管生成作用被用于促進預構皮瓣的再血管化進程,特別是VEGF能特異性地促血管內皮細胞分裂增殖、增加血管通透性,為血管內皮的遷移及基質形成創造條件,故備受研究者青睞。但生長因子蛋白半衰期短、療效不穩定、需反復應用、副作用多,本研究應用基因治療技術,將人VEGFcDNA 通過腺病毒載體,一次性注射于大鼠腹部預構皮瓣血管束周圍軟組織內,通過觀察VEGF 的表達情況及對預構皮瓣再血管化進程和成活的影響,探討腺病毒-VEGF基因重組體促進血管化和皮瓣成活的可能性。
1材料和方法
1.1 腺病毒-VEGF基因重組體的制備:重組復制缺陷型腺病毒pcDNA3/hVEGF165由中科院細胞所構建。將hVEGF165插入pcDNA3的EcoRI和HindIII多克隆位點,并轉化DH5進行擴增,凝膠電泳證實hVEGF165已插入pcDNA3多克隆位點,測序證實hVEGF165無突變。以標準的磷酸鈣共沉淀法(Promega, Inc.Kit)轉染20ug pcDNA3/hVEGF165到PA317細胞,通過G418的集落篩選,擴大培養,測定包裝細胞上清中病毒的滴度,計算3個梯度中的cfu(clone forming unit),取最高cfu的包裝細胞系集落,在32℃的條件下培養48h。瓊脂糖凝膠電泳結果顯示hVEGF16經過EcoI和HindIII雙酶切后產生2個分別約5.4kb和560bp的hVEGF165片段,經測序證實無突變,說明腺病毒-VEGF基因重組體構建成功。
1.2 動物模型的建立:雄性SD大鼠20只,每只體重0.3~0.4kg,每只腹部兩側各構建一個預構皮瓣,共構建40個皮瓣,每只大鼠兩側皮瓣按隨機原則進行不同的處理,分別歸于實驗組或對照組,每組各20個皮瓣。1%的氯胺酮腹腔內注射麻醉(1ml/100mg)、硫化鋇液脫毛及仰臥位固定后,于大鼠腹部兩側各標記3cm×2cm矩形預構區,短邊平行于腹股溝韌帶,自尾側短邊中點向后縱向切開后肢皮膚,在顯微鏡下仔細剝離出長約2cm的股動靜血管束,遠端結扎切斷。在兩側預構區域的中軸線上,用18G注射器針頭于真皮與肉膜層間各制作一長2cm、寬0.3cm的皮下隧道,使用1ml注射器向實驗組的隧道壁皮下組織內注射攜帶有VEGF基因的腺病毒,分4個點,每點注射0.1ml濃度為4×109cfu/L的pcDNA3/hVEGF165,同法向所有對照組的隧道壁軟組織內注射等量生理鹽水。將已剝離好的血管束向顱側翻轉置入相應預構區的皮下隧道內,血管束末端用縫線固定于附近皮膚以防回縮,6-0絲線縫合切口(圖1),動物返回籠中。所有預構區域2周后均沿前述腹部預構區標記線切開皮膚,于肉膜層下方剝離形成以植入股血管束為蒂的島狀皮瓣,從兩組中各選一個皮瓣進行免疫組化染色,觀察有無VEGF生成,其余島狀皮瓣均縫回原處(圖2)。
1.3 檢測指標
1.3.1 免疫組化檢測:血管束植入預構區域后2周,分別切取Ad-VEGF基因治療組和生理鹽水對照組中的一個預構皮瓣進行免疫組化檢測:組織切片經脫蠟、浸水處理后用H2O2處理(室溫,10min),應用羊血清封閉(37℃,30min),直接滴加濃度為1∶100的抗人VEGF一抗(小鼠來源單克隆抗體,Santa Cruz公司,美國),4℃孵浴12h,PBS清洗,滴加二抗(生物素標記為山羊抗鼠,DAKO公司,丹麥),DAB(DAKO公司,丹麥)染色,光鏡下放大100倍觀察有無棕黃色顆粒表達從而確定有無VEGF蛋白生成。
1.3.2 皮瓣存活率:形成島狀皮瓣后第七天,按前述方法麻醉動物,相同物距下數碼相機拍照后,將圖像輸入KS400 圖像分析系統,經圖像增強、分割、待測面積的二值化處理,精確測量皮瓣存活部分及壞死部分面積,根據公式:皮瓣存活率 = 皮瓣存活表面積/皮瓣總表面積×100%,算出兩組各19個皮瓣的存活率,再計算各組皮瓣存活率的均數。
1.3.3 放射顯影:島狀皮瓣拍照后,從兩組中各選取一個皮瓣,手術顯微鏡下解剖出蒂部股血管束,分別向兩側股動脈內灌注60%泛影葡胺約3ml,結扎蒂部的股動靜脈并切下皮瓣,放射科拍攝鉬靶X光片,獲得植入血管及新生血管的放射顯影圖。
1.3.4 組織學觀察:島狀皮瓣拍照后,從兩組中各選取一個皮瓣,切下其存活部分后立即浸入10%甲醛溶液中固定48h,經酒精梯度脫水二甲苯透明后石蠟包埋,萊卡切片機切成4μm薄片,蘇木精-伊紅染色封片,光鏡下放大100倍觀察植入的血管束周圍新生的小血管情況。
1.4 統計分析:數據表示為x±s,用SPSS 11.0 版統計軟件對數據進行統計,兩兩之間的比較采用t檢驗,P<0.05示差異有統計學意義。
2結果
2.1大體觀察及皮瓣存活率:制成島狀皮瓣后,多數皮瓣邊緣出現程度不等的青紫腫脹,繼而顏色發黑干性壞死,有的破潰形成形狀各異的創面,一般5~7天后壞死范圍穩定,成活與壞死界限分明,皮瓣成活區質地均柔軟(圖3),兩個實驗組皮瓣局部可見皮下小血腫。VEGF基因治療組與生理鹽水對照組皮瓣平均存活率分別為(90.48±1.89)%、(69.75±2.36)%,兩組存活率差異有統計學意義(P<0.01)(表1)。

2.2血管新生情況:血管放射顯影顯示,實驗組植入血管周圍見廣泛白色顯影,尤以血管兩端明顯,而對照組新生血管顯影僅局限于植入血管周圍(圖4);HE染色組織學切片顯示實驗組植入血管周圍新生血管豐富,以毛細血管為主,并見肉芽成份,對照組新生血管相對較少,兩組間新生小血管管腔大小則無明顯差異(圖5)。

2.3免疫組織化學檢查:光鏡下放大100倍觀察來自兩組的免疫組化染色切片,VEGF基因治療組見到大量棕黃色顆粒表達,彌漫分布于新生小血管周圍,對照組切片上未看到棕黃色顆粒(圖6)。

3討論
植入血管與皮膚、皮下組織間建立起新的血液循環是預構皮瓣成功的關鍵,新血管系統形成的速度、數量和范圍直接決定著預構皮瓣的成熟時間和成活范圍,因此如何促進植入血管束多形成新生小血管并與皮瓣的小血管之間建立有效的吻合成為當前預構皮瓣的研究熱點。研究發現,一些多肽類生長因子能通過促進血管新生,從而促進缺血皮瓣的成活,1993年Iwasawa M[3]用TGF-β、 2000年Li QF[4]用VEGF來促進預構皮瓣的成熟,也取得了預期效果。研究顯示,VEGF是迄今發現的作用最強的血管形成因子,能特異性地與血管內皮細胞表面的相應受體結合,通過啟動有絲分裂原活化蛋白激酶來誘導內皮細胞增殖[5],其家族中VEGF165在體內分布最廣,表達水平最高。由于VEGF在體內的半衰期很短,一般不超過6min,必須反復使用才能發揮其血管生成作用,極為不便,不但增加感染機會,而且蛋白價格昂貴,這些情況限制了臨床應用前景。后來有人曾利用凝膠態的聚乙烯乙醇作為緩釋劑,試圖延長VEGF作用時間,發現并未提高VEGF的療效[6]。近年來,日漸成熟的基因重組和轉染等生物技術為VEGF保持其在局部的持續存在和作用提供了新穎的途徑:將VEGF基因插入到某種載體形成基因重組體,再轉染作用部位細胞,將VEGF基因帶入轉染細胞的細胞核內,使得轉染細胞成為 VEGF 的“緩釋庫”,較長時間內不斷產生VEGF蛋白,充分發揮其生物學效應。目前該基因治療技術已被報道用來改善缺血皮瓣的血供[7]以及提高自體顆粒脂肪移植成活率[8],也有學者用于治療臨床上一些缺血性疾病[9],取得了一定的療效。我們在此基礎上設想應用此項技術促進預構皮瓣再血管化和增加皮瓣成活率,以便縮短預構成熟時間。研究結果顯示,注射基因重組體后兩周時的實驗組標本切片免疫組化染色可見大量棕黃色顆粒,證實pcDNA3/hVEGF165已進入血管束周圍細胞內并持久表達了VEGF蛋白,證明基因治療技術同樣能保持VEGF在預構皮瓣中的持久存在。在HE染色組織切片及血管放射顯影的光鏡檢查中,實驗組標本的新生小血管較對照組的豐富,說明Ad-VEGF基因治療組在局部VEGF的持續刺激下,誘導形成了大量的新生小血管,有利于預構皮瓣的存活,表現為治療組島狀皮瓣存活率高于對照組,這些結果說明應用基因治療技術產生VEGF促進預構皮瓣成熟是可行的。
本研究采用腺病毒作為VEGF基因的載體,是因為其轉導效率高,而且腺病毒一般不與轉染細胞的染色體整合,故比較安全[10]。在HE染色組織切片上,治療組見到明顯炎性肉芽成份,這與以前的有關研究報導相符合,可能與腺病毒導致的宿主免疫反應[11]有關。研究中發現治療組一些皮瓣內出現小血腫,可能是VEGF增加了局部血管通透性所致,所以尋找合宜的劑量和用藥濃度以最大程度的發揮其促血管生成作用而盡量避免副作用是今后研究的問題之一。
建立合理的實驗模型是研究預構皮瓣再血管化的前提,以往的預構皮瓣實驗研究中,多是先掀起隨意型皮瓣,然后將血管載體固定于皮瓣肉面,其缺點是手術創傷大,易引起嚴重纖維化影響預構皮瓣的質地;此外,掀起皮瓣還會因手術創傷觸發內源性血管生長因子產生[12],干擾對外源性VEGF發揮促進血管新生作用的觀察。本研究在一期手術中,并未掀起皮瓣,只是在預構區域形成一包容血管束的皮下隧道,這無疑最大程度地減少了內源性VEGF的產生,而且手術創傷小,保證了皮瓣質地柔軟,操作也簡便,有臨床推廣價值。以往有研究認為,VEGF在非缺血組織中生物活性低[13],本研究預構區血液循環良好,VEGF同樣顯示了良好的促進血管新生作用,這也許和腺病毒誘發的炎癥反應有關。在剝離股血管束時,我們保留了少許管周組織,以防止損傷血管束內動、靜脈之間的微細血管通道[14],保證移位的血管束早期不致栓塞,但如果管周組織保留過多,一部分管周組織會因為早期缺血發生纖維化,從而妨礙血管束新生小血管。血管束植入動物肉膜層與真皮層之間,是因為肉膜層內小血管網及真皮下血管網均較豐富,便于新生血管與其吻接溝通,同時制作島狀皮瓣時也提供了解剖標志。
總之,本研究證明基因治療方法能夠保持VEGF在預構皮瓣中的持久存在,從而促進預構皮瓣血管新生和皮瓣成活,未見明顯并發癥,為臨床上加速預構皮瓣成熟提供了新的途徑。但腺病毒作為目的基因載體,是否會使人體基因發生突變,是否會導致病毒感染,以及如何提高基因轉染效率,尋找恰當的給藥途徑、用藥劑量與濃度等問題尚需要繼續研究。
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[收稿日期]2008-12-29[修回日期]2009-02-06
編輯/張惠娟