999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

昆蟲孤雌生殖起源的遺傳機制和進化意義

2011-02-18 22:41:46王成業
Zoological Research 2011年6期
關鍵詞:機制差異研究

王成業

(中國林業科學研究院資源昆蟲研究所, 云南 昆明 650224)

昆蟲孤雌生殖起源的遺傳機制和進化意義

王成業*

(中國林業科學研究院資源昆蟲研究所,云南 昆明650224)

孤雌生殖在昆蟲綱中有很高的發生比例, 昆蟲的孤雌生殖能力是造成農林災害的一個重要而常被忽視的因素。孤雌生殖物種的存在和維持在進化生物學領域是個令人困惑的話題。在一些物種中孤雌生殖的細胞學機制得到了研究和解釋, 但是對于從兩性生殖轉換到孤雌生殖的遺傳機制卻知之甚少。了解孤雌生殖起源的遺傳機制和進化意義對于預防農林蟲害有著重要的意義。因此,該文就近年來對昆蟲孤雌生殖起源的遺傳和進化意義的研究做以綜述, 并就可能的利用前景進行簡單討論。

昆蟲; 孤雌生殖; 遺傳機制; 自然選擇

雌性個體產下的卵不經雄性受精就能發育成完整新個體的生殖方式稱為孤雌生殖(parthenogenesis)。這種生殖方式可見于一些植物、昆蟲、蜥蜴和魚類等(Pearcy et al, 2006; Hu & Wang, 2008)。其中以昆蟲最為常見(Beekman et al, 2002; Pearcy et al, 2006; Le Trionnaire et al, 2009; Lorenzo-Carballa & Cordero-Rivera, 2009)。農田里的昆蟲的高概率孤雌生殖現象的發生(Hoffmann et al, 2008)是造成農林災害的一個重要卻常被忽視的因素。例如蚜蟲對農作物的危害其實主要就是來源于其孤雌生殖世代所引起的群體迅速增長(Kanbe & Akimoto, 2009)。許多害蟲的迅速傳播也和孤雌生殖關系很大, 如中華稻蝗和中華飛蝗的雌蝗不經交配亦能產卵, 孵化的后代均為雌性, 可繼續進行孤雌生殖(Zhu & Jiang, 1991; Zhang et al, 2010)。分布在我國的棉蝗也能進行孤雌生殖(Zhang et al, 1995);這是造成蝗蟲猖獗的一個重要因素。另外, 具有孤雌生殖能力的昆蟲, 只要有一頭雌蟲傳播到某地,就能獨立完成繁殖建立種群, 導致這種害蟲的傳播擴散非常難以控制。在中國危害水稻的稻水象甲就全部都是以孤雌生殖的方式繁殖和傳播的(Zhang et al, 2006)。

自然界絕大多數生物采取的都是兩性生殖的方式, 研究孤雌生殖的物種有助于探討有性生殖與無性生殖之間的利弊關系。理論上講, 孤雌生殖的物種會進入進化的死胡同, 但事實并非如此, 許多孤雌生殖的物種都能成功地保持, 并且其遺傳多樣性(甚至其基因重組率)并未大幅度降低, 仍以一定的速度在進化(Oldroyd et al, 2008), 其中的機制目前尚未被揭示。從遺傳和進化生物學的角度去了解孤雌生殖的起源和進化, 有助于理解這種生殖方式的形成過程及其在歷史和地理上形成的原因; 同時,對于開發新的措施防治孤雌生殖昆蟲的擴散,從而保護農林生產也具有特別的意義。

1 孤雌生殖昆蟲的起源及細胞學機制概述

孤雌生殖不等同于無性繁殖。從定義上來講,孤雌生殖是從未受精的卵發育成一個新的幼體, 而卵是兩性生殖中進化出的雌配子, 那么可以推知,孤雌生殖是從兩性生殖中產生和衍化出的一種特殊生殖方式。目前對孤雌生殖機制的研究和一些系統地理學的證據也表明, 自然界中一般孤雌生殖的種群都是由相近的兩性種群中近期產生的(Moritz, 1991)。至于其起源方式可大致分為以下幾種:⑴自發起源(spontaneous origin):自發起源式的孤雌生殖在昆蟲中廣泛存在, 例如一些蛾類、蚜蟲和竹節蟲等(Schwander & Crespi, 2009)。⑵雜種起源(hybrid origin):一些孤雌生殖種是通過種間雜交, 但雜交后不能進行正常的減數分裂, 只能通過孤雌生殖的方式來繁衍(Delmotte et al, 2003)。這種雜交起源的孤雌生殖常伴隨多倍體現象。例如蓑蛾和孤雌生殖的多倍體象甲(Stenberg et al, 2003)。⑶傳播起源(contagious origin):一些自發起源的孤雌生殖昆蟲具有產生雄性后代的能力, 比如黃蜂和蚜蟲, 由此產生的雄性個體與兩性生殖的雌性交配后, 可以產生兩性生殖的品系和孤雌生殖的品系(Simon et al, 2003)。⑷感染起源 (infectious origin):是一些特殊的共生微生物對宿主進行“生殖操作”后引起的孤雌生殖, 例如昆蟲綱中最常見的沃爾巴氏菌(Wolbachia)感染寄主后就可使寄主從兩性生殖轉變到產雌孤雌生殖, 但利用抗生素處理后就能使寄主恢復到正常的兩性生殖方式(Stouthamer et al, 1990)。⑸人工誘導(artificial induction origin):有些動物不行孤雌生殖, 但其卵在未受精前, 用人工方法刺激, 如改變溫度、pH值等, 或用化學和機械方法刺激卵, 亦可使其進入孤雌發育(Яхонтов & Hu, 1958)。例如家蠶的卵經溫湯處理后就可促使卵開始分裂進行孤雌發育, 并能形成相應的孤雌品系(Xia et al, 2007)。

一些昆蟲發生孤雌生殖的細胞學機制已被初步揭示出來(Yang et al, 2008)。進入孤雌生殖的卵因為沒有受精, 大致上采用三種發育途徑:⑴減數分裂后, 單倍體的卵直接發育為成體, 例如蜜蜂的產雄孤雌生殖(Tram & Sullivan, 2000)。⑵減數分裂后,以自合的方式恢復染色體的兩倍數(Vavre et al, 2004), 自合的方式可以是極體的核與卵核的合并,也可以是卵裂時兩個卵核的合并, 甚至是卵核內的染色體只進行核內有絲分裂而形成再組核, 根本不產生極體的核;而這些方式都可以導致染色體數目的恢復(Kearney, 2005);發現于一些產二倍體后代的孤雌生殖昆蟲(Verma & Ruttner, 1983)。⑶卵核不經減數分裂, 在核內保持兩倍的染色體, 因而也就無需以受精恢復其染色體倍數(Яхонтов & Hu, 1958; Riparbelli et al, 2005)。

對于這些不同的發育途徑, 其背后的形成機制還沒有被揭示出來, 而且引起這些機制的因素可以是遺傳因素,也可以是外來因素(例如共生菌感染)。需要注意的是, 遺傳因素引起的孤雌生殖和共生菌引起的孤雌生殖在細胞學機制上是不同的:對于遺傳因素引起的孤雌生殖, 卵母細胞通常通過調整減數分裂以及染色體加倍等方式繞過減數分裂的障礙,從而進入孤雌發育(Vavre et al, 2004); 而共生菌引起的孤雌生殖, 卵母細胞進行正常的減數分裂,依靠卵母細胞分裂產物的中部融合生殖或者端部融合生殖來恢復母本的染色體倍性(Heifetz et al, 2001)。

2 從遺傳和進化的角度去了解昆蟲的孤雌生殖

目前對孤雌生殖的研究大多停留在細胞水平上, 而對其遺傳和進化方面的考慮較少。當從遺傳和進化的角度去考察孤雌生殖的內在機制時, 首先就要從孤雌生殖的起源方式上區別對待。人工誘導的孤雌生殖由于卵細胞和二倍體兩性生殖的卵細胞沒有區別, 不存在遺傳上的決定因素; 而由共生菌誘導的孤雌生殖昆蟲經抗生素處理后能恢復兩性生殖的表型(Stouthamer et al, 1990), 也不是由遺傳因素決定的; 而傳播起源是自發起源的一個衍生事件。因此,這三種情況在本綜述中不進行討論。對于自發起源的孤雌生殖和雜交起源的孤雌生殖,這兩類形成的機制不同, 所牽涉的遺傳機制也極有可能是不同的, 因此,以下分別進行探討。

2.1 自發起源的孤雌生殖

對于自發起源的孤雌生殖, 可能是某些兩性種群中基因組上發生了偶然的基因突變, 導致個別個體具有孤雌生殖的能力, 而孤雌生殖是一種更快更節省成本的生殖方式, 在一定的環境下表現出比兩性個體更強的適應性。因此,在一些特殊環境中(例如孤島和荒漠, 這些環境的選擇壓力有利于孤雌生殖而不利于兩性生殖, 從而導致在環境壓力下昆蟲孤雌生殖事件的多次發生和起源(Kearney et al, 2006) 得到了鞏固和加強。不考慮其他因素,單從進化層面上來講, 凡是能導致兩性生殖的個體轉換到單性生殖的基因突變都會得到強化和發展, 因為單性生殖時單個個體就能產生新的后代, 但對于兩性生殖而言卻需要兩個, 這就是兩性生殖的雙倍成本學說。很多地理性孤雌生殖的多次起源和發生就是在自然環境的選擇壓力下驅動的結果(Vorburger, 2006)。單性生殖的個體逐漸適應環境并完善了相應的細胞學機制, 最終形成了一個獨立的孤雌生殖種。相應的基因有可能是抑制減數分裂的基因、性別決定基因、調節激素表達的基因, 或者是調控早期發育的基因等, 這些基因的突變都可能導致自發孤雌生殖的出現(Le Trionnaire et al, 2007; Cortes et al, 2008)。傳播起源的孤雌生殖本身就是對基因決定說的一個佐證。對于周期性孤雌生殖的昆蟲,例如蚜蟲, 這種新獲得的引起孤雌生殖的基因通路還可能受環境的調控而表現為開和關(Le Trionnaire et al, 2007, 2009)。

2.2 雜交起源的孤雌生殖

對于雜交起源的孤雌生殖, 似乎并未有經過選擇來固定新突變或者新基因的過程出現, 所以有可能是雜交后某些基因表達上的改變引發了孤雌生殖。導致基因表達改變的因素可能是雜交時發生的重組,也可能是別的未知因素。可以設想, 一些昆蟲種間雜交的后代是不能生育的, 但極個別的雜交后代發生了不同的基因重組, 造成基因組新的表達方式, 從而引發了新的發育途徑, 糾正了使其不育的減數分裂錯誤, 就具有了孤雌生育的能力; 在一定的環境下這種孤雌生殖種會具有某些雜種優勢,從而促成了孤雌生殖品系的形成(Tinti & scali, 1996)。一些研究表明, 孤雌生殖和兩性生殖之間的差異有可能不是體現在基因組組成上的差異, 而是特定基因表達與否的差異以及所導致相應的信號通路或發育途徑的差異(Le Trionnaire et al, 2009)。很多種的兩性生殖昆蟲都可出現偶發性的孤雌生殖(Riparbelli et al, 2005), 說明孤雌發育可能是一種發育潛能, 在一般情況下未被開啟或是被抑制的。這種潛能體現在基因組方面可能就是在正常情況下沒有表達的發育通路, 在環境因子的刺激下(例如人工刺激引發的孤雌發育——溫湯刺激家蠶的卵可引發孤雌生殖), 這一沉默的發育通路得以激活和表達。從人工誘導的孤雌生殖實驗表明:孤雌生殖小鼠的胚胎干細胞表達譜與正常的胚胎干細胞是不同的(Gong et al, 2008), 這也從一個側面提示孤雌生殖與兩性生殖之間有可能是表達上的差別引起的。因此,對于雜交起源的孤雌生殖, 研究其與兩性生殖種之間的基因表達譜差異, 尋找差異表達的基因, 也許是一條更便利的途徑。

3 對昆蟲孤雌生殖遺傳機制的研究現狀

目前針對孤雌生殖相關遺傳機制的研究還不是很多, 從使用的研究方法來看, 可分為兩大類,一類是通過經典的基因定位方式, 即連鎖分析; 另一類是通過研究基因表達譜的不同,從而來定位目的基因, 即差別顯示技術。

3.1 經典的連鎖分析

利用連鎖分析來對孤雌生殖相關基因的定位研究首先是在昆蟲模式種果蠅(Drosophila melanogaster)里面做的。果蠅的gyn-F9品系能以雌核發育(gynogenesis)的形式進行孤雌繁育(該品系需要與雄性不育系ms(3)K81雄果蠅交配, 接受雄性的精液來激活卵的發育, 但卻不接受精子的遺傳物質, 產生孤雌二倍體后代), Fuyama et al (1986)通過設計特定的遠交和回交系, 選用一套當時果蠅中研究透徹的染色體標記, 在候選染色體不同區段發生了重組的后代中通過連鎖分析, 定位了兩個與產雌孤雌生殖相關的核基因, 分別定位在2號和3號染色體上, 其中一個定位在Tftlocus(Tuft,2-53.2)與nwlocus(narrow,2-79.3)之間; 另一個定位在Gllocus(Glued,3-41.4)與Sblocus(Stubble,3-58.2)兩個marker之間。回交傳代數據顯示這兩個基因均為隱性, 對于這兩個基因的特性未作進一步研究和探討。

當要定位某個性狀的決定基因時, 只要這個基因所決定的性狀能在后代中產生分離, 就方便用連鎖分析的方法把這個基因定位出來, 相應性狀的完全分離是進行連鎖分析的便利條件。Lattorff et al (2005)利用南非蜜蜂的一個亞種Apis melliferacapensis 來分析產雌孤雌生殖的遺傳控制因素。在一般的社會性昆蟲中發生的通常是產雄單倍體孤雌生殖, 但在這種特殊的南非蜜蜂當中, 幾乎所有的工蜂都能進行產雌孤雌生殖(雌性工蜂的單性繁殖); 其細胞學機制已經研究清楚, 是通過中部自體融合而恢復二倍體進行的孤雌生殖(Verma & Ruttner, 1983)。由于蜜蜂本身存在等級制度和單倍體二倍體體系, 方便建立經典的回交(classical backcrosses), 于是Lattorff et al (2005)分別利用有性生殖的蜂王與產雄孤雌生殖亞種(A. m. carnica)產生的雄蜂和產雌孤雌生殖亞種(A. m. capensis)產生的雄蜂這兩種亞種交配, 然后記錄后代中發生孤雌生殖的比例。他們發現產卵工蜂的產雌孤雌生殖呈現孟德爾式的分離, 并且看起來似乎受單個主效基因(th)的控制。后代分離的模式提示引起產雌孤雌生殖的基因是個隱性的等位基因。他們同時發現沒有母系傳遞可引起孤雌生殖的內共生菌的存在。工蜂的產雌孤雌生殖看起來似乎是經典的質量性狀,因為沒有觀察到混合的孤雌生殖(產雙性孤雌生殖),而產雌雄雙性的孤雌生殖則有可能是受多個遺傳位點控制的(Lattorff et al, 2005)。之后他們采用連鎖分析的方式在回交系中對決定孤雌生殖的基因進行定位, 采用了566個微衛星標記對全基因組進行掃描, 將候選基因定位在13號染色體上, 隨后用新開發的20個微衛星標記進行精細定位后, 將候選基因所在區段縮小到11.4 cm(約180 kb), 經過對該區段的基因預測分析表明,該區段包括了15個基因。他們認為在這15個基因中, 兩個轉錄因子基因(Atf2, gemini)是最有可能的候選基因, 而且認為最終的候選基因可能在A.m.capensis的工蜂中決定假后性狀(pseudoqueen phenotype)的機制中是至關重要的, 同時還在調節和控制決定社會性蜜蜂雌性個體的生殖和不育性的基因通路也具有普遍重要的意義(Lattorff et al, 2007); 對候選基因的最終確定和功能驗證則需要進一步的實驗工作。

3.2 mRNA表達及蛋白差異顯示研究

目前, 研究不同性狀背后的遺傳決定機制, 直接從表達譜的差異入手是一種直觀有效的方法。細胞或組織內基因的差別表達是一系列生物學問題的根源, 所以分離并克隆差異表達基因顯得尤為重要。利用基因表達的差別來克隆基因的技術稱為差別顯示技術, 目前己經發展了多種差別顯示技術,例如mRNA差別顯示反轉錄PCR(differential display reverse transcriptase PCR, DDRT-PCR)技術、抑制性消減雜交(suppression subtractive hybridization, SSH)技術等等。同時也有針對蛋白質組差異的技術, 例如雙向電泳。

相對于兩性生殖, 在孤雌生殖的發生過程中,肯定有與兩性生殖不同的特定基因表達模式, 這種差異表達的基因其相應的產物就是蛋白質組水平的差異。Xia et al(2007)以家蠶孤雌生殖的蟻蠶和正常發育的蟻蠶為材料, 通過雙向凝膠電泳(2-DE)技術研究家蠶孤雌生殖蟻蠶和正常蟻蠶的總蛋白質的差異, 得到相關的差異蛋白點, 并對這些蛋白點進行基質輔助激光解吸電離串聯飛行時間質譜(MALDI—TOF-MS)分析, 獲得了相關差異蛋白的序列特征。將這些序列與已構建的家蠶cDNA文庫及蛋白質數據庫進行比對, 得到3個差異蛋白為熱休克相關蛋白; 然后通過5'-RACE的方法克隆到3個差異蛋白的全基因序列, 并對它們進行結構和特征分析, 鑒定出HSP22.6、HSC70-4和TPR蛋白在孤雌生殖家蠶中呈現上調表達。他們由此推測, 家蠶熱休克相關蛋白可能在不同程度上通過不同的途徑參與了孤雌生殖發生過程并發揮著重要的功能(Xia et al, 2007)。然而,該結論尚未得到進一步的研究證實, 因為孤雌生殖的蟻蠶是由溫湯處理后誘發的, 所以尚不能排除這些熱休克相關蛋白是溫湯處理后的應激產物, 而并非與孤雌生殖有關。因此,更有可能是溫湯刺激導致了另一個發育通路的表達, 該推測需要更多的實驗來驗證。此外, Yu et al(2007)應用二維凝膠電泳(2DE)技術研究家蠶孤雌生殖的總蛋白質,通過和正常家蠶卵總蛋白進行比較分析得到家蠶卵中可能與孤雌生殖相關的差異蛋白點, 他們得到了一個與家蠶蛋白折疊相關的鈣結合蛋白——ERp57; 但該蛋白是否確實參與調控孤雌發育還需要進一步的研究來確證。

蚜蟲的孤雌生殖是個特別值得關注的現象, 研究表明,光周期的長度是掌控兩性生殖和單性生殖之間轉換的主要因素:基于不同種類蚜蟲的很多的實驗都表明, 飼養在長光照(如春夏, 日長夜短)條件下的蚜蟲在實驗室里能無休止地進行克隆性的產雌孤雌生殖。然而,一旦改變飼養條件, 變成短日照(如秋冬季日短夜長), 這些蚜蟲就會在繼續孤雌生殖兩代之后進入兩性生殖(Simon et al, 2002)。據實驗表明, 精確的光周期長短(暗期的長度)可以被蚜蟲體內一個未知的鐘精確測量, 而且誘導性暗夜的天數也被精確的計算以引發轉換(Hardie & Nunes, 2001)。同時, 為了轉換到有性表型, 光周期的變化必須被檢測并轉換傳遞到一種迄今未知的神經、感覺、內分泌、或者分子事件等信號通路, 從而啟動基因表達的變化, 轉換到兩性表型(Tagu et al, 2005)。例如, 在豆長管蚜中一些表皮蛋白和一些信號蛋白被證實是受光周期調控的(Le Trionnaire et al, 2007)。保幼激素作用于飼養在短光照的蚜蟲會促使部分胚胎發育成孤雌生殖的雌性個體, 而不是通常觀察到的全是兩性個體(Corbitt & Hardie, 1985)。此外, 褪黑色素可在一定程度上模擬短光照的效果來促使豌豆蚜兩性表型的應答(Hardie & Gao, 1997)。這些實驗表明, 受環境所誘導的特定基因通路的開關和基因表達差異可能是兩性生殖與孤雌生殖之間轉換的基礎。

為了研究蚜蟲兩性表型轉換相關信號通路的候選基因, Cortes et al (2008)利用抑制性消減雜交(SSH)的方法, 對飼養在兩種不同光周期方案下的豌豆蚜, 建立了兩個互補的cDNA文庫, 分別富集了在短日照條件下高表達和低表達的基因序列。通過這種方法,他們發現了一批可能受光周期調節的基因。然后通過實時定量PCR的方法, 確證了在兩種光周期模式下有表達差異的6個基因(3個上調, 3個下調)。此外,他們分析了其中的4個基因隨光周期循環的表達:1個微管蛋白基因、 2個表皮蛋白基因和1個與光周期有關的未知基因。最終, 他們認為這些基因在孤雌生殖到兩性生殖的轉換中可能起了介導作用。

4 昆蟲孤雌生殖的進化生物學意義

孤雌生殖對昆蟲的廣泛分布起著重要的作用。即使只有一頭雌蟲被偶然帶到一個新的地區, 就有可能在這個地區繁殖起來。此外, 孤雌生殖對種群的繁衍有著很大的作用:孤雌生殖可以很大程度上解決封閉小環境中的性別比例失調問題, 比如一個海島上(通常孤雌生殖在島嶼上比在大陸上更常見和更普遍), 某種因素造成的性別比例失調會嚴重影響種群的繁衍, 而通過直接的孤雌生殖則可使得種群不致退化和滅絕。另外, 在一些通常不適合兩性生殖的地方,反而會有利于孤雌生殖的物種存在(Stalker, 1956)。相比兩性昆蟲, 孤雌生殖昆蟲能更有效地占據生態位(Kearney, 2005)。不少昆蟲在進行兩性生殖的同時,也可進行孤雌生殖。使用孤雌生殖和兩性生殖相結合, 可以獲得最大的生殖利益,對昆蟲在地球上的繁盛有著不可低估的作用。例如蚜蟲, 其生活史把孤雌生殖和兩性生殖有機地結合起來, 既可以在穩定的環境中短期內快速繁育個體,又可以在變化的環境中產生適應性強的兩性個體后代,既保證了種群的繁盛, 又不失去基因交換、豐富基因組多樣性的機會, 這是其他動物無可比擬的。

由此可見, 昆蟲的孤雌生殖應該是昆蟲長期生存斗爭的適應性結果(Rispe & Pierre, 1998)。孤雌生殖也可以看作是一種特殊的生殖性狀, 那么孤雌生殖是否有可能經受自然選擇而固定呢, Endler (1986)提出了關于某一性狀是否可經受自然選擇而產生適應性進化的3個先決條件:(1)同種個體之間在該性狀上存在變異;(2)該性狀的差異會導致生存適合度的差異;(3)該性狀必須是可遺傳的。對于孤雌生殖的昆蟲, 很多孤雌種可以和其親緣種交配并產下可育后代。因此, 孤雌生殖的個體可以看作是和兩性生殖的個體在生殖性狀上存在差異的變異,其孤雌生殖的后代與兩性生殖的后代相比也是存在生存能力上的差異; 同時孤雌生殖產生的后代還可繼續孤雌生殖, 表明該性狀是可遺傳的。由此判斷, 孤雌生殖是有可能經受自然選擇的。雖然孤雌生殖能在適宜生存的環境下快速產生大量的后代,形成種群數量上的優勢, 但其缺陷是缺乏基因組多樣性, 不能適應環境的變化, 這在理論上是進入了進化上的一個死胡同。但有研究表明, 孤雌生殖的物種并未停止進化, 在孤雌生殖的蜜蜂中發現其重組率并沒有下降(Oldroyd et al, 2008), 其中的機制有待于進一步的研究去揭示。

5 小結與展望

目前對昆蟲孤雌生殖相關遺傳機制的研究仍不夠深入, 雖然定位了一些候選基因和區段, 但對這些候選基因的功能研究還有待開展, 并且這些基因是否真的具有誘導孤雌生殖發生的作用還有待驗證。相對昆蟲而言, 在植物中對孤雌生殖(無融合生殖)的研究開展得更多, 對植物中孤雌生殖的研究認為:孤雌生殖是受基因控制的遺傳性狀, 但隨物種和其所屬孤雌生殖類型的不同, 控制孤雌生殖的基因亦有變化(Hu & Wang, 2008)。在植物中已經發現了一些與孤雌生殖相關的基因(Grimanelli et al, 2001; Molesini et al, 2009)。 這些基因的調控機制是否也存在于昆蟲中值得進一步研究, 并可能從中得到一定的啟示。從昆蟲孤雌生殖研究中初步得出的結果來看, 在不同的昆蟲中控制孤雌生殖的基因也是各不相同的, 這一點同在植物中的研究結果相類似。找到相關基因仍只是研究孤雌生殖遺傳和進化機制的第一步, 相關基因的表達怎樣指導細胞學方面的機制來執行孤雌生殖, 以及這些決定孤雌生殖的遺傳機制產生的歷史背景和進化意義, 都需要長遠而深入的研究去揭示。

研究昆蟲的孤雌生殖具有特殊的意義, 在生產實踐上可以用來探索新的途徑來控制害蟲的孤雌生殖, 減少農林災害。還可用來開發對人類有利的資源昆蟲, 選育優良品系并穩定其優良性狀; 同時,孤雌生殖可以克服遠緣種間的雜交不育, 為培育新種質、擴大種質資源帶來便利。

致謝:本文得到中國環境管理干部學院趙忠寶博士的指導和建議, 同時要感謝審稿人對本文初稿提出的一系列寶貴建議。

Beekman M, Good G, Allsopp MH, Radloff S, Pirk CW, Ratnieks FL. 2002. A non-policing honey bee colony (Apis mellifera capensis) [J]. Naturwissenschaften,89(10): 479-482.

Corbitt T, Hardie J. 1985. Juvenile hormone effects on polymorphism in the pea aphid, Acyrthosiphon pisum. [J]. Entomol Exp Appl,38: 131-135.

Cortes T, Tagu D, Simon JC, Moya A, Martinez-Torres D. 2008. Sex versus parthenogenesis: a transcriptomic approach of photoperiod response in the model aphid Acyrthosiphon pisum (Hemiptera: Aphididae) [J]. Gene,408(1-2): 146-156.

Delmotte F, Sabater-Munoz B, Prunier-Leterme N, Latorre A, Sunnucks P, Rispe C, Simon JC. 2003. Phylogenetic evidence for hybrid origins of asexual lineages in an aphid species [J]. Evolution,57(6): 1291-1303.

Endler JA . 1986. Natural Selection in the Wild[M]. Princeton: Princeton University Press.

Fuyama Y. 1986. Genetics of parthenogenesis in Drosophila melanogaster. II: Characterization of a gynogenetically reproducing strain [J]. Genetics,114(2): 495-509.

Gong SP, Kim H, Lee EJ, Lee ST, Moon S, Lee HJ, Lim JM. 2008. Change in gene expression of mouse embryonic stem cells derived from parthenogenetic activation [J]. Hum Reprod, 24(4):805-814.

Grimanelli D, Leblanc O, Perotti E, Grossniklaus U. 2001. Developmental genetics of gametophytic apomixis [J]. Trends Genet,17(10): 597-604.

Hardie J, Gao N. 1997. Melatonin and the pea aphid, Acyrthosiphon pisum [J]. J Insect Physiol,43(7): 615-620.

Hardie J, Nunes MV. 2001. Aphid photoperiodic clocks. [J]. J Insect Physiol,47: 821-832.

Heifetz Y, Yu J, Wolfner MF. 2001. Ovulation triggers activation of Drosophila oocytes [J]. Dev Biol,234(2): 416-424.

Hoffmann AA, Tracy Reynolds K, Nash MA, Weeks AR. 2008. A high incidence of parthenogenesis in agricultural pests [J]. Proc Biol Sci, 275(1650):2473-2481.

Hu LX, Wang ZL. 2008. Progress on the research of apomixis related genes in plant [J]. Hereditas,2: 156-163. [胡龍興,王兆龍. 2008.植物無融合生殖相關基因研究進展.遺傳,30(2): 155-163.]

Kanbe T, Akimoto S. 2009. Allelic and genotypic diversity in long-term asexual populations of the pea aphid, Acyrthosiphon pisum in comparison with sexual populations [J]. Mol Ecol,18(5): 801-816.

Kearney M. 2005. Hybridization, glaciation and geographical parthenogenesis [J]. Trends Ecol Evol,20(9): 495-502.

Kearney M, Blacket MJ, Strasburg JL, Moritz C. 2006. Waves ofparthenogenesis in the desert: evidence for the parallel loss of sex in a grasshopper and a gecko from Australia [J]. Mol Ecol,15(7): 1743-1748.

Lattorff HM, Moritz RF, Crewe RM, Solignac M. 2007. Control of reproductive dominance by the thelytoky gene in honeybees [J]. Biol Lett,3(3): 292-295.

Lattorff HM, Moritz RF, Fuchs S. 2005. A single locus determines thelytokous parthenogenesis of laying honeybee workers (Apis mellifera capensis) [J]. Heredity,94(5): 533-537.

Le Trionnaire G, Francis F, Jaubert-Possamai S, Bonhomme J, De Pauw E, Gauthier JP, Haubruge E, Legeai F, Prunier-Leterme N, Simon JC, Tanguy S, Tagu D. 2009. Transcriptomic and proteomic analyses of seasonal photoperiodism in the pea aphid [J]. BMC Genomics,10: 456.

Le Trionnaire G, Jaubert S, Sabater-Munoz B, Benedetto A, Bonhomme J, Prunier-Leterme N, Martinez-Torres D, Simon JC, Tagu D. 2007. Seasonal photoperiodism regulates the expression of cuticular and signalling protein genes in the pea aphid [J]. Insect Biochem Mol Biol,37(10): 1094-1102.

Lorenzo-Carballa MO, Cordero-Rivera A. 2009. Thelytokous parthenogenesis in the damselfly Ischnura hastata (Odonata, Coenagrionidae): genetic mechanisms and lack of bacterial infection [J]. Heredity,103(5): 377-384.

Molesini B, Pandolfini T, Rotino GL, Dani V, Spena A. 2009. Aucsia gene silencing causes parthenocarpic fruit development in tomato [J]. Plant Physiol,149(1): 534-548.

Moritz C. 1991. The origin and evolution of parthenogenesis in Heteronotia binoei (Gekkonidae): evidence for recent and localized origins of widespread clones [J]. Genetics,129(1): 211-219.

Oldroyd BP, Allsopp MH, Gloag RS, Lim J, Jordan LA, Beekman M. 2008. Thelytokous parthenogenesis in unmated queen honeybees (Apis mellifera capensis): central fusion and high recombination rates [J]. Genetics,180(1): 359-366.

Pearcy M, Hardy O, Aron S. 2006. Thelytokous parthenogenesis and its consequences on inbreeding in an ant [J]. Heredity,96(5): 377-382.

Riparbelli MG, Tagu D, Bonhomme J, Callaini G. 2005. Aster self-organization at meiosis: a conserved mechanism in insect parthenogenesis? [J]. Dev Biol,278(1): 220-230.

Rispe C, Pierre JS. 1998. Coexistence between cyclical parthenogens, obligate parthenogens, and intermediates in a fluctuating environment [J]. J Theor Biol,195(1): 97-110.

Schwander T, Crespi BJ. 2009. Multiple direct transitions from sexual reproduction to apomictic parthenogenesis in Timema stick insects [J]. Evolution,63(1): 84-103.

Simon JC, Delmotte F, Rispe C, Crease T. 2003. Phylogenetic relationships between parthenogens and their sexual relatives: the possible routes to parthenogenesis in animals [J]. Biol J Linn Soc,79: 151-163.

Simon JC, Rispe C, Sunnucks P. 2002. Ecology and evolution of sex in aphids [J]. Trends Ecol Evol,17(1): 34-39.

Stalker HD. 1956. On the evolution of parthenogenesis in Lonchoptera(Diptera). [J]. Evolution,10: 345-359.

Stenberg P, Lundmark M, Knutelski S, Saura A. 2003. Evolution of clonality and polyploidy in a weevil system [J]. Mol Biol Evol,20(10): 1626-1632.

Stouthamer R, Luck RF, Hamilton WD. 1990. Antibiotics cause parthenogenetic Trichogramma (Hymenoptera/Trichogrammatidae) to revert to sex [J]. Proc Natl Acad Sci USA,87(7): 2424-2427.

Tagu D, Sabater-Mu?oz B, Simon JC. 2005. Deciphering reproductive polyphenism in aphids. [J]. Invertebr Reprod Dev,48: 71-80.

Tinti F, scali V. 1996. Androgenetics and triploids from an interacting parthenogenetic hybrid and its ancestors in stick insects [J]. Evolution,50(3): 1251-1258.

Tram U, Sullivan W. 2000. Reciprocal inheritance of centrosomes in the parthenogenetic hymenopteran Nasonia vitripennis [J]. Curr Biol,10(22): 1413-1419.

Vavre F, de Jong JH, Stouthamer R. 2004. Cytogenetic mechanism and genetic consequences of thelytoky in the wasp Trichogramma cacoeciae [J]. Heredity,93(6): 592-596.

Verma S, Ruttner F. 1983. Cytological analysis of the thelytokous parthenogenesis in the Cape honeybee (Apis mellifera capensis Escholtz) [J]. Apidologie,14: 41-57.

Vorburger C. 2006. Geographic parthenogenesis: recurrent patterns down under [J]. Curr Biol,16(16): R641-643.

Xia JY, Long XH, Chen J, Nie ZM, Wang D, Lü ZB, Xu J, He PA, Zhang YZ. 2007. Bioinformatics analysis of heat shock related proteins fromdifferential protein spots associated with parthenogenesis in Bombyx mori [J]. Sci Sericul,33(4): 568-573. [夏佳音,龍曉輝,陳健,聶作明,王丹,呂正兵,徐杰,賀平安,張耀洲. 2007.家蠶孤雌生殖差異蛋白——熱休克相關蛋白的生物信息學分析.蠶業科學,33(4): 568-573.]

Yang P, Zhu ZR, Shang HW, Cheng JA. 2008. Assembly and significance of centrosome during parthenogenesis of insects [J]. Chn J Cell Biol,30(3): 357-361. [楊璞,祝增榮,商晗武,程家安. 2008.昆蟲孤雌生殖中中心體的組裝和意義.細胞生物學雜志,30: 357-361.]

Yu W, Nie ZM, Wang D, Chen J, Zhang YZ. 2007. Cloning and sequencing analysis of the parthenogenesis related ERp57 gene in Bombyx mori [J]. Silk Month,08: 23-27. [于威,聶作明,王丹,陳健,張耀洲. 2007.家蠶孤雌生殖相關蛋白ERp57基因的克隆和分析.絲綢,08: 23-27.]

Zhang FM, Wang YR, Wang BC. 2006. Reasons for the spreading of rice weevil and controlling measures [J]. J Jilin Agric Sci,5: 42-44. [張富滿,王越人,王寶春. 2006.稻水象甲的擴散原因及治理對策.吉林農業科學,5: 42-44.]

Zhang HY, Zhang L, Shen ZH, Hong YW, Zhang XC. 1995. Observation of the parthenogenesis in Chondracris rosee [J]. Entomol Knowl,3: 143-144. [張懷玉,張琍,沈澤淮,洪要文,張學翠. 1995.棉蝗孤雌生殖的觀察.昆蟲知識,3: 143-144.]

Zhang XY, Li Y, Yang TX, Zhang L. 2010. Comparison of capacity of parthenogenetic and bisexual reproduction in the oriental migratory Locusta migratoria manilensis [J]. J Beijing Agric Coll,01: 27-29. [張欣楊,李楊,楊天翔,張龍. 2010.東亞飛蝗孤雌生殖與兩性生殖特性的比較.北京農學院學報,01: 27-29.]

Zhu FL, Jiang HY. 1991. Observational study of parthenogenesis Oxya chinensis F1 generation [J]. Plant Prot,4: 23-23. [朱福良,蔣華業. 1991.中華稻蝗孤雌生殖F1代的觀察研究.植物保護,4: 23-23.]

Яхонтов вв, Hu TC. 1958. Parthenogenesis in insects [J]. Entomol Knowl,02: 51-56. [弗·弗·雅洪托夫,胡弢成. 1958.昆蟲的孤雌生殖.昆蟲知識,02: 51-56.]

Genetic mechanism and evolutionary significance of the origin of parthenogenetic insects

WANG Cheng-Ye*

(Research Institute of Resource Insects, Chinese Academy of Forestry, Kunming 650224, China)

There is a high proportion of parthenogenesis in insecta, and the parthenogenetic potential of insects is an important but often ignored threaten factor for the agricultural and forestry production. The maintenance of parthenogenetic species is a puzzling issue in evolutionary biology. In recent years, although the cellular mechanisms during parthenogenesis in some species have been well studied, the underlying genetic mechanisms that cause the switch from sexual reproduction to parthenogenesis have not been defined. While, understanding the genetic mechanism and evolutionary significance of the origin of parthenogenetic insects is crucial for preventing the pests in agricultural and forestry production. Here we summarized recent studies aimed at identifying the underlying genetic mechanism of parthenogenesis in insects, and briefly discussed its potential application in this filed.

Insect; Parthenogenesis; Genetic mechanism; Natural selection

Q965; Q963; Q349

A

0254-5853-(2011)06-0689-07

10.3724/SP.J.1141.2011.06689

2011-08-26;接受日期:2011-10-17

中央級公益性科研院所基本科研業務費專項資金(riricaf200904m-2)?

(Corresponding author),E-mail: chengyewang@yahoo.com.cn

猜你喜歡
機制差異研究
相似與差異
音樂探索(2022年2期)2022-05-30 21:01:37
FMS與YBT相關性的實證研究
遼代千人邑研究述論
視錯覺在平面設計中的應用與研究
科技傳播(2019年22期)2020-01-14 03:06:54
找句子差異
EMA伺服控制系統研究
自制力是一種很好的篩選機制
文苑(2018年21期)2018-11-09 01:23:06
生物為什么會有差異?
破除舊機制要分步推進
中國衛生(2015年9期)2015-11-10 03:11:12
M1型、M2型巨噬細胞及腫瘤相關巨噬細胞中miR-146a表達的差異
主站蜘蛛池模板: 国产美女在线免费观看| 国产乱人伦精品一区二区| 日韩在线1| 国产欧美性爱网| 成人免费一级片| 国产亚洲视频免费播放| 成人看片欧美一区二区| 亚洲精品图区| 久久久精品无码一区二区三区| 国产精品久久自在自2021| 国产国语一级毛片| 国禁国产you女视频网站| 国产区91| 久久国产亚洲偷自| 97视频在线观看免费视频| 88国产经典欧美一区二区三区| 一区二区三区四区在线| 欧美日韩中文字幕二区三区| 久久久受www免费人成| 国产精品女在线观看| 91视频免费观看网站| 久久亚洲黄色视频| 亚洲欧洲AV一区二区三区| 亚洲国产av无码综合原创国产| 精品人妻无码区在线视频| 国产96在线 | 国产在线观看一区二区三区| 高清久久精品亚洲日韩Av| 亚洲伊人天堂| 理论片一区| 亚洲欧美色中文字幕| 国外欧美一区另类中文字幕| 日本在线欧美在线| 全午夜免费一级毛片| 看国产毛片| 伊人久久婷婷| 婷五月综合| 国产综合另类小说色区色噜噜| 99这里只有精品在线| 久久久久九九精品影院| 激情无码视频在线看| 在线另类稀缺国产呦| 欧美中文字幕在线视频| 蜜桃视频一区| 亚洲综合天堂网| 国产精品手机在线观看你懂的| 国产乱码精品一区二区三区中文| 欧美19综合中文字幕| 99久久国产综合精品2020| 色成人亚洲| 国产在线98福利播放视频免费| 久久综合AV免费观看| 日韩精品资源| 激情综合激情| 亚洲资源在线视频| 成人av专区精品无码国产| 亚洲综合久久成人AV| 青青草原偷拍视频| 国产成人区在线观看视频| 精品無碼一區在線觀看 | 激情六月丁香婷婷四房播| 久久99热这里只有精品免费看| 国产拍揄自揄精品视频网站| 国产电话自拍伊人| 精品91视频| 国产成人综合在线观看| 国产亚洲精品资源在线26u| 久久精品国产999大香线焦| 美女视频黄频a免费高清不卡| 久久性妇女精品免费| 国产又粗又爽视频| 久久香蕉欧美精品| 青青草久久伊人| 日韩无码黄色| 国产剧情无码视频在线观看| 日韩欧美国产另类| 国产一级二级在线观看| 亚洲天堂日韩av电影| 国产午夜精品鲁丝片| 国产91av在线| 色婷婷亚洲十月十月色天| 欧美精品伊人久久|