李迎杰 李東復 魏麗娟
(遼寧醫學院附屬第一醫院消化二病區,遼寧 錦州 121001)
乙型肝炎病毒 (HBV)并不直接導致肝細胞損傷,主要通過機體一系列免疫反應造成肝細胞的損傷,具有某些組織相容性復合體 (MHC)-Ⅱ等位基因型的人易發生HBV持續感染。本文采用順序特異引物PCR(PCR-SSP)方法,以健康人作對照,對吉林地區漢族32例慢性乙型肝炎 (CHB)患者、36例乙型肝炎肝硬化患者、34例慢性無癥狀攜帶者(ASC)的人類白細胞抗原多態性基因 (HLA)-DRB1進行檢測,從免疫遺傳角度探討吉林地區CHB與HLA-DRB1等位基因的相關關系。
1.1 資料
1.1.1 研究對象 CHB組32例,其中男22例,女10例,年齡15~50〔平均(38.5±15)〕歲,臨床診斷符合CHB防治指南的診斷標準〔1〕,并且排除有其他肝炎病毒感染者;乙型肝炎肝硬化組36例,男19例,女17例,年齡20~70〔平均(40±12)〕歲。均有乙肝病史,均經肝穿活檢確診;ASC組34例,其中男18例,女16例,年齡20~60〔平均(38±12)〕歲;健康對照組39例,其中男20名,女19名,年齡20~45〔平均(30.5±10)〕歲。CHB組、肝硬化組、ASC組、健康對照組在性別與年齡方面無顯著差異,具有可比性。同時根據HBV-DNA定量檢測結果,將其中的102例HBV感染者分為HBV-DNA陽性組(≥1×103拷貝/ml)和HBV-DNA陰性組(<1×103拷貝/ml),比較兩組間HLA-DRB1各等位基因的頻率差異。
1.1.2 主要儀器與試劑 HERMILE E383K型高速臺式低溫離心機(德國)、HYBAID PCR儀(英國)、BDME20微型電泳儀(中國);DNA提取試劑由AXYGEN BIOSCIENCE(原杭州維特浩生化技術服務有限公司)提供;Marker(DL2000)、dNTP、Taq酶均購自寶生物工程(大連)有限公司;引物由上海(生工)生物工程技術服務有限公司提供。
1.2 方法
1.2.1 樣品采集及處理 分別取患者和健康對照者外周肘靜脈血5 ml,2 ml注入依地酸二鈉(EDTA-Na2)抗凝管中,抗凝血顛倒混勻以備提取DNA;3 ml注入普通試管,自凝血立即以10 000 r/min離心5 min,離心后取血清測HBV-DNA載量。
1.2.2 HBV-DNA測定 取患者血清樣本以及試劑盒中的對照品100μl,分別加入0.5 ml離心管中;依次加入不同的DNA提取液提取DNA,具體操作步驟按說明書進行(試劑盒購自深圳匹基公司,引物由該公司設計并合成),定量PCR分析儀(美國羅氏公司)擴增測定DNA含量。
1.2.3 外周血單個核細胞DNA提取 采用全血DNA抽提純化試劑盒(AXYGEN SCIENCE)。嚴格按照試劑說明書進行操作。基本過程:紅細胞被裂解后,被保留的白細胞經過清洗劑及蛋白酶的處理,將DNA從核中釋放出來。然后,用蛋白清除劑清除沉淀蛋白及RNA。最后,用乙醇沉淀DNA。DNA提取后用紫外分光光度計檢測DNA含量,A260/A280為1.65~2.0。DNA置-20℃冰箱保存。
1.2.4 PCR擴增 根據參考文獻〔2〕設計出擴增DRB1片段的通用引物6對,選用人生長激素(hGH)基因片段作為內對照,引物序列及擴增長度見表1,所有引物均由上海生工生物工程技術公司合成。采用PCR-SSP方法進行DRB1等位基因的擴增,PCR反應條件:94℃預變性3 min;循環參數為94℃變性45 s,65℃退火45 s,72℃延伸 60 s,循環 30 次;最后 72℃再延伸5 min。擴增產物經2%瓊脂糖凝膠電泳分離后,在紫外燈下觀察HLA-DRB1等位基因表達情況。
1.3 統計學分析 用直接計數法計算等位基因頻率。各組間等位基因的比較、兩組間等位基因分布的差異采用χ2檢驗,應用SPSS17.0統計軟件進行分析,計算χ2值及P值。

表1 PCR擴增引物序列及擴增長度
2.1 HLA-DRB1基因PCR-SSP產物瓊脂糖凝膠電泳分析 見圖1。

圖1 HLA-DRB1基因PCR-SSP產物瓊脂糖電泳結果
2.2 HLA-DRB1等位基因在各組間分布情況比較 見表2,表3。CHB組HLA-DRB1*0701基因頻率為10.94%,健康對照組頻率為1.28%,差異具有統計學意義(P<0.05)。HLADRB1*0701在肝硬化組基因頻率為12.50%,明顯高于健康對照組,差異具有統計學意義(χ2=5.88,P<0.05)。健康對照組與ASC組基因頻率較高的位點為HLA-DRB1*0301/04(15.38%),但與CHB組、肝硬化組相比較差異無顯著性。其他等位基因頻率其他三組與對照組相比,差異無統計學意義(P>0.05)。HLA-DRB1等位基因頻率在HBV-DNA陽性組與陰性組無顯著性差異。

表2 CHB組、ASC組、肝硬化組和健康對照組HLA-DRB1等位基因分布情況〔n(%)〕

表3 HBV-DNA陽性組與HBV-DNA陰性組HLA-DRB1等位基因分布比較〔n(%)〕
HLA-Ⅱ類分子主要表達在某些免疫細胞表面,作為輔助性T細胞CD4+的識別標志之一,參與外源性抗原的遞呈。HLA的晶體結構研究表明:Ⅱ類α鏈和β鏈的遠膜區有一個抗原結合槽,與疾病相關的關鍵性氨基酸分布其中,序列氨基酸的排列順序是由每個等位基因編碼的,由于HLA-Ⅱ類分子等位基因的多態性,導致了抗原結合槽的構象、結合及遞呈抗原肽遞呈T細胞的效率不同;HLA-Ⅱ類分子呈遞外源性抗原肽給予CD4+T細胞,促使其活化,分化為效應細胞(Th細胞),分泌不同的細胞因子,發揮不同的免疫效應,影響疾病的轉歸。有研究表明CHB患者存在一定的免疫功能紊亂現象,主要表現為T細胞數量失衡和活化異常〔3〕。
有關HLA-DRB1等位基因多態性與疾病關系報道很多〔4~6〕,本研究以吉林地區漢族人群為研究對象,探討HLADRB1等位基因多態性與CHB、肝硬化及HBV復制狀態的相關性,結果表明,在吉林地區漢族人群中HLA-DRB1*0701等位基因型與CHB相關,可能是CHB易感基因或連鎖基因,與錢毅等〔7,8〕的研究結果一致,但與韓瑜〔9〕等的結果不同,可能與樣本量、地域等因素有關。HBV導致肝細胞損害具體機制尚不十分明確,本文研究未發現HLA-DRB1等位基因頻率與HBV的復制狀態存在關聯。
1 中華醫學會肝病學分會、感染病學分會.慢性乙型肝炎防治指南〔J〕.中華肝臟病雜志,2005;13(12):881-91.
2 Olerup O,Aldcner A,Fogdell A,et al.HLA-DQB1 and-DQA1 typing by PCR amplification with sequence-specific primers(PCR-SSP)in 2 hours〔J〕.Tissue Antigens,1993;41(3):119-34.
3 劉春華,崔速南,劉靚雯,等.慢性乙型肝炎肝硬化淋巴細胞亞群及HLA-DR抗原的表達〔J〕.中國現代醫學雜志,2010;20(12):1825-8.
4 楊 磊,王麗君,時廣利,等.HLA-A、HLA-B、DRB1等位基因多態性與中國北方漢族肺癌患者遺傳易感相關性的研究〔J〕.免疫學雜志,2010:26(7):612-9.
5 黃曉暉,陳思東.HLA-DRBI*0701基因與吸煙在乙肝疫苗免疫應答中的交互作用〔J〕.公共衛生與預防醫學,2009;20(2):7-10.
6 潘煥峰,李東復,孫天虹,等.原發性肝細胞癌與HLA-DRB1基因多態性及DR抗原表達的關系〔J〕.中華肝膽外科雜志,2009;15(5):357-61.
7 錢 毅,章 廉,梁雪梅,等.廣東漢族人群乙肝疫苗免疫應答水平與HLA-DRB1*02,07,09 的相關性〔J〕. 第一軍醫大學學報,2002;22(1):67-9.
8 袁俊華,孫成剛.山東地區慢乙肝的預后與HLA-DRB1等位基因相關性研究〔J〕.臨床肝膽病雜志,2004;20(4):236-7.
9 韓 瑜,馬 寧,焦立新.HLA-DRBI等位基因與吉林地區漢族人群慢性乙型病毒性肝炎的關聯性分析〔J〕.吉林大學學報醫學版,2010;36(4):741-4.