李 倩, 焦 燕, 彭 海
Gokkusu等研究表明同型半胱氨酸(homocysteine,Hcy)可以促炎癥介質釋放增加,導致內皮細胞損傷[1~3],而后者是動脈粥樣硬化的始動因素[4]。PPARs屬于Ⅱ型核受體配體依賴轉錄因子超家族成員。近年的研究顯示,在特定配體激活下,PPARs可以抑制炎性因子表達和炎癥反應[5~7]。羅格列酮(Rosiglitazone,Ros)是PPARγ高親和力的配體,有調節炎癥反應的作用。本研究旨在觀察羅格列酮是否對Hcy誘導的人臍靜脈內皮細胞(HUVECs)的損傷有保護作用以及對TNF-a和IL-6水平的影響。
1.1 主要試劑 Hcy(Sigma公司);羅格列酮(浙江萬馬公司);兔抗人Bax抗體、兔抗人Bcl-2抗體及兔抗人Caspase-3抗體(武漢博士德);兔抗人PPARγ抗體(Cell Signing Technology);兔抗人β-actin和辣根酶標記鼠抗兔二抗(武漢博士德);TNF-α和IL-6試劑盒(武漢博士德)。
1.2 細胞培養 臍帶取自華中科技大學附屬協和醫院產科健康產婦。PBS沖洗靜脈腔,0.25%胰蛋白酶(trypsin)灌注消化(37℃,10min),血清滅活,離心收集細胞團,轉移至鋪有0.2%明膠的T25培養瓶中,置于37℃,含5%體積分數CO2培養箱中培養。HUVECs培養液為含20%胎牛血清的DMEM培養基,細胞融合90%以上時用0.25g/L胰酶消化傳代,第2~3代用做實驗。
1.3 細胞分組及處理 HUVECs分為對照組(A組,DMEM培養基);實驗組(B組,Hcy 100μmol/L);干預組(C組,Ros),再根據不同濃度分為(C1:Hcy 100μmol/L+Ros10nmol/L),(C2組:Hcy 100μmol/L+Ros 20nmol/L)(C3 組:Hcy 100μmol/L+Ros 30nmol/L),各培養24h和48h。
1.4 MTT實驗 HUVECs按每孔2×103個/ml的密度接種于96孔板中,每組5個復孔,試驗重復3次。細胞貼壁后按實驗分組加入試劑,48h后每孔避光加入5mg/ml MTT 50u L,混合均勻后置于37℃,含5%體積分數CO2,培養箱孵育4h后吸取上清液,每孔加入 DMSO 200μl,振蕩10min。采用酶標儀測定各孔吸光度值(波長570nm處)。
1.5 免疫細胞化學法檢測Bax、Bcl-2、Caspase-3蛋白表達 取對數生長期HUVECs,按1×106/ml的密度接種于含有蓋玻片的6孔板內進行爬片,待細胞長至蓋玻片50%的時候,改換成用無血清的培養基繼續培養24h,細胞饑餓24h,使細胞同步化于G0期。然后每組分別加入相應的試劑,繼續培養分別至24及48h,用4%多聚甲醛固定,行Bax、Bcl-2、Caspase-3的免疫細胞化學染色,染色步驟嚴格按SABC、DAB試劑盒說明書操作。
1.6 ELISA法檢測上清液TNF-α和IL-6水平
分別采用TNF-α和IL-6 ELISA試劑盒測定,嚴格按試劑盒和酶標儀說明操作。在酶標儀上測定λ=450nm的TNF-α和IL-6的吸光度值,根據標準品的不同濃度繪制標準曲線,計算細胞培養上清液的TNF-α和IL-6水平。
1.7 Western-blot檢測 PPARγ蛋白表達 取各組細胞約1×106/L,加入電泳裂解緩沖液,取20μg變性裂解蛋白進行SDS-PAGE膜電泳,然后電轉移至PVDF膜,脫脂牛奶封閉后,將膜置2ml稀釋好的抗PPARγ一抗體液(1∶200),4℃ 孵育過夜,TBST液搖洗4次,每次5min。然后將膜置10ml含辣根過氧化酶HRP標記的羊抗兔二抗(1∶2000)室溫下孵育2h,再用ECL試劑盒進行發光、顯影、定影,Alpha軟件處理系統分析目標帶的光密度。
1.8 統計學處理 采用SPSS16.0統計軟件,計量資料均采用±s,資料采用t檢驗或LSD法進行組間兩兩均數比較,以P<0.05為顯著性差異標準。
2.1 檢測細胞存活率 羅格列酮對100μmol/L Hcy所致的細胞損傷具有明顯的保護作用。隨羅格列酮濃度增加和作用時間延長,細胞存活率增加(P <0.05,見表1)。
2.2 免疫細胞化學分析 與Hcy組相比,羅格列酮組Caspase-3,Bax蛋白表達明顯下降,Bcl-2表達明顯增高,呈濃度和時間依賴性(P<0.05,見表2)。
2.3 炎癥介質TNF-α和IL-6水平變化 Hcy使HUVECs產生炎癥介質,隨著Hcy作用時間延長,TNF-α和IL-6水平增高。羅格列酮明顯降低TNF-α和IL-6水平,且具有時間及濃度依賴性(P<0.05,見表3)。
2.4 PPARγ蛋白表達檢測 與Hcy組比較,Ros干預組(C組)PPARγ表達明顯上調,呈濃度和時間依賴性(P <0.05,見圖1)。
表1 羅格列酮對HUVECs存活的影響±s)

表1 羅格列酮對HUVECs存活的影響±s)
與B組相比*P<0.05;與C1相比 #P<0.05;與C2相比△P<0.05;與24h相比▲P <0.05
組別細胞存活率(%)24h 48h A組B組C1組C2組C3組91.78 ±0.0121.34 ±0.0228.76 ±0.02*39.22 ±0.02*#52.46 ±0.01*#△91.44 ±0.0113.58 ±0.0141.22 ±0.01*▲54.84 ±0.01*#▲63.36 ±0.01*#△▲
表2 羅格列酮對Bax、Bcl-2、Caspas-3蛋白表達的影響(%±s)

表2 羅格列酮對Bax、Bcl-2、Caspas-3蛋白表達的影響(%±s)
與B組24h相比*P<0.05;與B組48h相比#P<0.05;與24h相比△P<0.05
組別Caspase Bax Bcl-2 24h 48h 24h 48h 24h 48h B C1 C3 34.63 ±1.bl_4.34 ±0.22*22.45 ±1.04*46.39 ±3.33△23.73 ±1.01#△17.97 ±0.40#△54.23 ±2.0547.09 ±1.74*41.59 ±1.11*78.58 ±3.71△45.17 ±1.35#△43.12 ±1.58#△46.004 ±1.5150.16 ±1.45*52.10 ±4.17*44.76 ±0.62△63.67 ±2.69#△76.26 ±7.39#△
表3 羅格列酮對IL-6和TNF-a表達的影響(pg/ml±s)

表3 羅格列酮對IL-6和TNF-a表達的影響(pg/ml±s)
與A 組相比*P <0.05;與 B 組相比#P <0.05;與24h相比△P <0.05
IL-6 TNF-a 24h 48h 24h 48h ABC 1 C2 C3 163.67 ±3.le475.00 ±5.29*227.33 ±2.52#217.00 ±5.57#200.00 ±3.61#165.00 ±4.00276.67 ±6.11*△223.67 ± 4.51#△188.00 ± 2.65#△174.00 ± 2.65#△1.35 ±0.012.62 ±0.01*2.22 ±0.01#2.09 ±0.04#1.93 ±0.08#1.35 ±0.013.58 ±0.02*△2.17 ±0.01#△1.71 ±0.01#△1.56 ±0.02#△

圖1 ROS不同濃度及時間對PPARγ蛋白表達的影響
1999年Ross提出動脈粥樣硬化(AS)是動脈壁的一種慢性炎癥反應過程,細胞因子在涉及AS各階段的炎癥反應事件中發揮重要的調節作用。Tomlinson等[8]研究發現,Hcy是一種炎癥刺激物,它可以刺激內皮細胞產生多種炎性因子如TNF-α和IL-6損傷內皮細胞,導致血管炎性損傷。TNF-α是一種致炎性細胞因子,生物活性廣泛而強烈,不僅參與炎癥反應過程,而且還與其它炎性因子組成復雜的網絡系統,通過相互誘生而互相影響生物學效應,使機體出現多種病理損害。TNF-α還可作為配體作用于內皮細胞表面的死亡受體(如TNFR1),進而傳遞信息進入細胞內引發凋亡[9,10]。IL-6又稱B細胞刺激因子2,動脈粥樣硬化病灶的主要細胞如內皮細胞、血管平滑肌細胞等都能分泌[11]。IL-6也是有廣泛生物活性的細胞因子,是炎癥反應的敏感標記物,也是機體復雜的細胞因子網絡中重要成員之一,參與多種疾病的炎癥病理過程,通過細胞信號轉導激活核轉錄因子-кB(NF-кB),使炎癥介質和細胞因子的基因轉錄增強,進一步促使中膜的平滑肌細胞向內膜下遷移、增殖并發生表型轉化,還導致更多的炎癥介質釋放,促使更多的單核細胞聚集、浸潤,導致動脈粥樣硬化病變的發生發展。本研究發現,相對于對照組,Hcy組細胞培養液中TNF-α和IL-6水平明顯增高,并且細胞存活率下降,促凋亡的蛋白表達增加,抗凋亡蛋白表達下降,證實Hcy是炎癥反應的刺激物,可以誘導HUVECs合成和分泌TNF-α和IL-6,致使HUVECs受損。
PPARs屬于Ⅱ型核受體配體依賴轉錄因子超家族成員,其亞型PPARγ在參與動脈粥樣硬化斑塊形成和演變過程中的內皮細胞、平滑肌細胞等及動脈粥樣硬化病灶組織中均有較為廣泛表達。最近的研究表明,PPAR也可能參與炎癥調控,如抑制TNF-α,IL-6等表達。大多數研究表明PPARγ激活劑有抗炎作用[12,13]。羅格列酮是一種 PPARγ的人工合成配體激動劑噻唑烷二酮類(TZD)降糖藥。Zhou等在基因敲除小鼠實驗中發現羅格列酮可通過調控血管內皮炎癥,在增強動脈粥樣硬化斑塊穩定性等方面發揮抗 AS作用[14]。本實驗建立 Hcy誘導的 HUVECs損傷模型,用不同濃度羅格列酮進行干預。結果顯示與Hcy組相比,羅格列酮可提高細胞的存活率;降低TNF-α和IL-6水平,呈濃度和時間依賴性;還可下調Bax和Caspase-3蛋白表達,上調Bcl-2和PPARγ蛋白表達。說明羅格列酮對Hcy誘導HUVECs產生的TNF-α和IL-6均有抑制作用。
實驗結果顯示羅格列酮可保護Hcy損傷的HUVECs,其作用可能是通過降低炎癥細胞因子TNF-a和IL-6的水平,調節Bax和Bcl-2蛋白水平而實現。研究為羅格列酮降低炎性因子TNF-α和IL-6的水平,防治動脈粥樣硬化及相關疾病提供了實驗依據。
[1] Gokkusu C,Tulubas F,Unlucerci Y,et al.Homocysteine and pro-inflammatory cytokine concentrations in acute heart disease[J].Cytokine,2010,50(1):15 -18.
[2] McCully KS.Chemical pathology of homocysteine.IV.Excitotoxicity,oxidative stress,endothelial dysfunction,and inflammation[J].Ann Clin Lab Sci,2009,39(3):219 -232.
[3] Pate M,Damarla V,Chi DS,et al.Endothelial cell biology:role in the inflammatory response[J].Adv Clin Chem,2010,52:109 - 130.
[4] Dworzanski T,Celinski K,Korolczuk A,et al.Influence of the peroxisome proliferator-activated receptor gamma(PPAR-γ)agonist,rosiglitazone and antagonist,biphenol-A-diglicydyl ether(BADGE)on the course of inflammation in the experimental model of colitis in rats[J].JPhysiol Pharmacol,2010,61(6):683 -693.
[5] Rigamonti E,Chinetti-Gbaguidi G,Staels B.Regulation of macrophage functions by PPAR-alpha,PPAR-gamma,and LXRs in mice and men[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2008,28(6):1050 -1059.
[6] Szeles L,Torocsik D,Nagy L.PPAR-gamma in immunity and inflammation:cell types and diseases[J].Biochim Biophys Acta,2007,1771(8):1014-1030.
[7] Hyong A,Jadhav V,Lee S,et al.Rosiglitazone,a PPAR gamma agonist,attenuates inflammation after surgical brain injury in rodents[J].Brain Res,2008,1215:218 -224.
[8] Tomlinson DR,Lang D,Lewis MJ.Homocysteine,B vitamins,and cardiovascular disease[J].N Engl JMed,2006,355(2):209 -211.
[9] Kawano S,Kubota T,Monden Y,et al.Blockade of NF-kappaB improves cardiac function and survival after myocardial infarction[J].Am JPhysiol Heart Circ Physiol,2006,291(3):H1337 - H1344.
[10] Dyugovskaya L,Lavie P,Hirsh M,et al.Activated CD8+T-lymphocytes in obstructive sleep apnoea[J].Eur Respir J,2005,25(5):820-828.
[11] Rus HG,Vlaicu R,Niculescu F.Interleukin-6 and interleukin-8 protein and gene expression in human arterial atherosclerotic wall[J].Atherosclerosis,1996,127(2):263 -271.
[12] Fan Y,Wang Y,Tang Z,et al.Suppression of pro-inflammatory adhesion molecules by PPAR-delta in human vascular endothelial cells[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2008,28(2):315 -321.
[13] Kuusisto J,Andrulionyte L,Laakso M.Atherosclerosis and cardiovascular risk reduction with PPAR agonists[J].Curr Atheroscler Rep,2007,9(4):274 -280.
[14] Zhou M,Xu H,Pan L,et al.Rosiglitazone promotes atherosclerotic plaque stability in fat-fed Apo E-knockout mice[J].Eur J Pharmacol,2008,590(1 -3):297 -302.