環糊精葡萄糖基轉移酶的生產及其在食品工業中的應用

孫 濤，江 波，潘蓓蕾

（1.上海應用技術學院香料香精技術與工程學院，上海 201418；2.江南大學食品科學與技術國家重點實驗室，江蘇無錫214122；3.中國食品科學技術學會，北京 100006）

環糊精葡萄糖基轉移酶的生產及其在食品工業中的應用

孫 濤1，江 波2，潘蓓蕾3，*

（1.上海應用技術學院香料香精技術與工程學院，上海 201418；2.江南大學食品科學與技術國家重點實驗室，江蘇無錫214122；3.中國食品科學技術學會，北京 100006）

環糊精葡萄糖基轉移酶（CGTase，EC2.4.1.19）為食品工業中的重要酶，在生產中多用芽孢桿菌通過液體深層發酵獲得。CGTase主要用途為生產環糊精；環糊精在食品工業中有廣泛應用。CGTase還可以通過轉糖基反應對食品添加劑和功能性成分如甜菊苷，蘆丁和抗壞血酸等進行酶法改性。此外，CGTase用于面包烘焙，可以改善成品面包的品質，延遲面包老化等。

環糊精葡萄糖基轉移酶，環糊精，糖基化，烘焙，應用

Abstract：Cyclodextrin glucanotransferases（CGTases，EC 2.4.1.19） are important enzymes of food industry，which are obtained through liquid fermentation.In food industry，CGTases widely applied in food industries that are mainly utilized to produce cyclodextrins from starch.In addition，CGTases can be used through transglycosylation to improve properties of food additives and functional components such as stevioside，rutin and L-ascorbic acid.Furthermore，it can also be applied in bread baking industry to improve the quality of bread and retard the staling process of bread.

Key words：Cyclodextrin glucanotransferase；cyclodextrin；transglycosylation；baking industry；application

環糊精葡萄糖基轉移酶（CGTase，EC 2.4.1.19）是α-淀粉酶家族（家族13）的重要成員，是食品工業中的重要酶。CGTase是一種多功能酶，可催化四種酶反應，分別為水解反應（hydrolysis）、環化反應（cyclization）、偶合反應（coupling）和歧化反應（disproportionation）[1]。CGTase在食品工業中的重要性主要表現在該酶能以淀粉作為底物，通過環化反應轉化生產環糊精（Cyclodextrin，簡稱CD）；根據葡萄糖單元的個數，環糊精主要包括α-、β-和γ-環糊精（分別含有6、7和8個葡萄糖單元）。環糊精在食品（包括香精香料）、醫藥、化妝品、分析化學和環境保護等諸多領域有著非常廣泛的應用。根據催化生成環糊精的主要類型不同，CGTase可分為α、β和γ型CGTase，即α-、β-和γ-CGTase。除以淀粉為原料生產環糊精應用于食品工業之外，CGTase還可以用來對食品添加劑和食品功能性成分，如甜菊苷、蘆丁和抗壞血酸等進行酶法改性，從而改善它們的物理、化學和生物學性質，比如水溶性、風味和穩定性等。另外，還有研究報道將CGTase應用于面包烘焙以改善面包品質和延遲面包老化。

1 CGTase的生產

1.1 生產菌株

自然界中產CGTase的微生物種類眾多，其中主要為芽孢桿菌（Bacillus），此外產CGTase微生物還包括Brevibacterium，Clostridium，Corynebacterium，Klebsiella， Micrococcus， Pseudomonas，Thermoanaerobacter和Thermoanaerobacterium等[2-3]。微生物來源不同，CGTase的性質差異也很大；例如不同來源的CGTase，其分子量差別很大，從30ku到100ku不等。表1列舉了部分產CGTase的芽孢桿菌菌株及所產CGTase的主要性質。

表1 不同來源CGTase及其主要性質Table 1 CGTases of different sources and their main characterization

1.2 培養基優化

CGTase的微生物發酵生產中，不同菌株最佳產酶培養基也存在差異，但是存在共同的地方：一是淀粉幾乎是所有微生物生產CGTase的最佳碳源；二是最佳氮源一般是有機氮源，如蛋白胨。產酶的發酵培養基中淀粉對CGTase的產生有誘導作用，而單糖和雙糖的存在則會阻遏CGTase的合成。作為碳源，不同淀粉對CGTase產量亦有影響。已有的研究報道中，Bacillus firmus的最佳碳源為玉米淀粉[10]；Bacillus circulans DF 9R最佳碳源為大米和木薯淀粉[11]；而Bacillus G1[12]和B.stearothermophilus[13]最佳碳源則分別為木薯淀粉和可溶性淀粉。但是B.cereus和B.stearothermophilus[14]可利用簡單糖，如葡萄糖和果糖生產CGTase，而淀粉非其最佳碳源。

CGTase的生產中，有機氮源有利于CGTase的生產，無機氮源通常不適合CGTase的生產[15]。但也有極少數研究稱，無機氮源為產酶培養基的最佳氮源，如Rosso等[11]研究報道用硫酸銨作為唯一氮源獲得了最大的CGTase產量。孫濤等[16]研究表明產酶培養基中，可溶性淀粉為最佳碳源，大豆蛋白胨為最佳氮源；而用簡單糖和無機氮分別作碳源和氮源時，CGTase的產量極低。

1.3 基因工程酶的生產

一般情況下，自然選育的菌株發酵產CGTase的產量和生產強度均較低。為了克服野生菌株的低CGTase生產能力，構建基因工程菌，使CGTase基因在基因工程菌中過量表達被認為是最有效的途徑之一。在構建基因工程菌時，采用的宿主菌主要是大腸桿菌（Escherichia coli）[17-22]，也有利用枯草芽孢桿菌（Bacillus subtlis）和畢赤酵母（Pichia pastoris）作為宿主菌的報道[17，22-23]。

基因工程菌一方面可以提高重組CGTase的產量[24-25]，另一方面，重組CGTase的酶學特性或催化活性得到改善和提高，如酶偶合活性的提高[17，24，26]；產物的特異性提高[21]；酶穩定性的改善等[27]。不僅如此，來源于基因工程菌的重組CGTase的分離純化要比野生菌株容易得多。

CGTase生產、開發的潛力還很大，目前生產銷售CGTase的國內企業很少，市場上CGTase酶制劑基本源于進口。因此，開發高產的CGTase菌株和具自主知識產權的CGTase、完善其生產和應用工藝并拓展其應用領域，可以推動食品工業和其他相關行業的發展。

CGTase生產、開發具有重要意義，其重要性表現在CGTase有較廣泛的用途。CGTase在食品工業中的用途主要包括利用淀粉原料生產環糊精、對食品添加劑和食品功能性成分進行改性以及在烘焙工業中的應用等，將在下文中分別加以論述。

2 CGTase在環糊精生產中的應用

CGTase最主要的用途為生產環糊精。環糊精是由CGTase作用于淀粉、糖原、寡聚糖等葡萄糖聚合物而形成的由6～12個葡萄糖單元以α-1，4-糖苷鍵連接而成的一組環狀低聚糖。常見的有α、β、γ-CD，它們分別是由6、7和8個葡萄糖基連結而成。這三種CD性質存在差異，但結構相似，擁有獨特的略呈錐形的圓桶形結構，在外周有大量親水的羥基，內部的空腔又有相對的疏水作用。CD是溶于水的，疏水的內腔又能和大量的有機、無機分子相結合，同時還能改變結合分子的物理、化學性狀。

CD的最大特征就是通過分子包合的方式與各種固體、液體和氣體化合物形成固體包合物（主客體復合物）。在這些復合物中，客體分子進入CD主體分子的孔穴中。形成復合物必須主體孔穴與客體分子的尺寸匹配；CD分子的親脂性孔穴為那些大小合適的化合物形成復合物提供了微環境。

CD在食品中的應用廣泛[28]，主要包括：保護食品中的對氧氣、光和熱敏感的親脂性成分；增加食品著色劑和維生素的溶解性；將液體食品轉化為固體粉末，以便于包裝、運輸、儲藏和使用；穩定食品中的某些成分，如食品中的香精和色素；消除食品中的異味等；控制食品中組分的釋放。此外CD在食品中的應用還包括食品中風味物質的提取和食品中活性成分及微量元素的分析與檢測等[29]。

利用CGTase生產的3種CD中，相比于α、γ-CD，β-CD在水中的溶解度低，易于分離和純化，生產方便，價格相對低廉，目前其應用也最為廣泛[30]。表2列舉了不同來源的β-CGTase生產CD的比較[31]。

目前環糊精的生產主要是β-CD的生產，α-CD的生產較少，γ-CD的生產最少。但是由于γ-CD同α、β-CD相比分子結構具有更大的空腔，可包合的客體分子范圍更廣，因而越來越引起研究者的關注和重視。

表2 不同微生物來源β-CGTase生成環糊精比較Table 2 Comparison of the CDs Productivity from different β-CGTases

3 CGTase在食品添加劑和功能性成分改性中的應用

3.1 對抗壞血酸的改性作用

L-抗壞血酸（VC）參與體內多種生理活動，在保持和促進人體健康中起到重要的作用。由于VC本身的理化特性和生理活性，可作為酸味劑、還原劑、抗氧化劑、漂白劑和穩定劑用于食品、化妝品、醫藥中。但VC在水溶液中極不穩定，易被空氣中氧和其他氧化劑所氧化；氧化生成的脫氫抗壞血酸就迅速不可逆地進一步氧化或分解成古洛糖酸或其他氧化產物，喪失VC原有的生理活性。VC若暴露于中性pH、熱、光和重金屬下，也會快速降解。

研究者[32]利用CGTase的轉糖基作用，將葡萄糖基轉接于L-抗壞血酸的C2上，得到VC衍生物2-O-葡萄糖基-L-抗壞血酸（2-O-α-glucopyranosyl-L-ascorbic acid，AA-2αG，結構式見圖1），這種化合物由于在2位上有葡萄糖基掩蔽，不會發生氧化反應。因此，它在水溶液中特別穩定，本身并無直接還原性。AA-2αG在進入細胞時可由細胞膜上的α-葡萄糖苷酶水解，產生的VC則被轉運到體內，在體內發揮VC的多種生理功能[33]。由于AA-2αG是由生物轉化法合成，安全無毒，可作為穩定劑、品質改良劑、生理活性劑、紫外線吸收劑用于食品、飲料工業中；也可以作為化學和醫藥原料用于醫藥工業中。

圖1 2-O-葡萄糖基-L-抗壞血酸的分子結構Fig.1 Structure of 2-O-α-glucopyranosyl-L-ascorbic acid

目前研究者已經利用多種方法，包括化學合成法等生產出多種VC的衍生物，如抗壞血酸脂肪酸酯、抗壞血酸金屬鹽類等，而利用CGTase對抗壞血酸進行酶法改性獲得AA-2αG，無疑是對VC衍生物產品開發的補充和拓展，產品的經濟價值較VC亦有很大的提升。

3.2 對甜味劑的改善作用

天然甜味劑甜菊苷是從甜葉菊葉子等植物部位中提取，含多種成分的糖苷混合物。它的各種成分的含量、口感和甜度各不相同。其中主要的糖苷為stevioside和rebaudioside A[34]。二者甜度高、熱量低，因此在食品工業中有非常好的應用前景。但是二者均有一定的苦味和不愉快的后味，影響了它們的應用。

Abelyan[35]用多種微生物來源的CGTase，用β-環糊精作為葡萄糖基供體，對stevioside進行酶法改性。反應后獲得了9種衍生產物，其中的兩種4″-O-α-D-和4蓯-O-α-D-glucosyl stevioside具有最好的口味。Kochikyan[36]則利用淀粉作為葡萄糖基供體對stevioside和rebaudioside A進行酶法改性。

Jaitak[37]利用超聲和微波輔助反應（MAR），用來源于Bacillus firmus的β-CGTase，對stevioside進行酶法改性。轉糖基酶反應在1min內即可完成，得到產物為4′-O-α-D-glycosyl stevioside和4″-O-α-D-maltosyl stevioside，產量分別為66%和24%。優化后的MAR反應體系為：5mL磷酸納緩沖體系（pH7）；stevioside量，1.24mmol；β-環糊精量，1.76mmol；溫度：50℃；微波爐（2450MHz，300 W）的功率：80W。

甜菊苷和其衍生物具有多種的生物活性；利用CGTase酶法改性甜菊苷是去除其后苦澀味的有效方法，但目前利用CGTase對甜菊苷的改性基本還處在實驗室的研究階段。隨著對CGTase酶促轉糖基機理的研究深入，有望實現改性甜菊苷的大規模工業化生產。

3.3 對蘆丁的改性作用

蘆丁（Rutin）為黃酮類化合物，在自然界中廣泛分布。蘆丁具有廣泛的藥理活性，臨床上可用于多種疾病的預防和治療。此外，蘆丁在食品工業中還可以作為抗氧化劑和天然色素加以利用[38]。但是，由于蘆丁的水溶性差，性質也不穩定，其應用和商業價值均受到影響。研究者嘗試利用各種方法，對蘆丁進行改性以改善蘆丁的理化性質；其中包括利用CGTase對蘆丁進行酶法改性[39-41]。蘆丁經酶法糖基化后得到的蘆丁衍生物葡萄糖基蘆丁（分子結構見圖2），水溶性大大提高（約提高了4×104倍），同時穩定性也得到提高。

在蘆丁糖基化反應體系中，甲醇作為蘆丁的溶劑，體積約占反應體系體積的一半。這可能會在以后的生產中對操作者的健康產生不利的影響，此外甲醇的殘存也可能影響產品的質量和產生安全性等問題，但是在實驗中，暫時還未找到甲醇的替代品來用作蘆丁的溶劑[16]。

圖2 葡萄糖基蘆丁的結構[27]Fig.2 Structure of glucopyranosyl rutin[27]

4 CGTase在面包烘焙中的應用

CGTase應用于面包烘焙，可以改善面包的品質，如增加面包體積、改善面包質構、延緩面包的老化。Mutsaers[42]研究表明，將CGTase添加到面包生面團之中，可以增加小麥淀粉顆粒的膨脹能力和溶解性，進而可以顯著增加烘焙產品的體積。Jemli[43]研究報道則稱，在面包烘焙前，面團中加入CGTase不僅可以顯著增加成品面包的體積，而且可以減輕面包在貯藏過程中的硬化，即減緩面包的老化過程。其他研究[44-45]亦得到類似的研究結果。

CGTase抗面包老化可歸因于：一方面是CGTase有效水解淀粉，避免支鏈淀粉結晶；另一方面是由于生成的環糊精同面粉里存在的脂類形成復合物，降低支鏈淀粉的回生[46]。Martin[44]也認為CGTase轉化生成的環糊精對延緩面包的老化發揮重要作用。

無麩質食品，如米粉面包是針對麩質過敏癥患者研究開發的專用食品。但是米粉面包的老化比小麥面包更為嚴重，主要原因在于相比于小麥淀粉，大米淀粉更容易老化。米粉面包還存在面包體積（小）和質構差等問題。Gujral[47]研究報道，在制作米粉面包時添加CGTase可以減緩面包的老化；并且減緩面包老化的效果要優于添加α-淀粉酶。此外，米粉面包中添加CGTase還能增大面包的體積，改善面包的形狀和質地，其原因是生成的環糊精增加了疏水蛋白的溶解性并參與“捕獲”CO2，從而增大米粉面包的體積，改善成品面包的質構[48]。

5 展望

CGTase具多種催化活性，用途比較廣泛，但目前研究主要集中在利用CGTase進行環糊精的生產上。未來CGTase的研究，可能會從菌種的篩選開始，朝多用途、多方向的目標發展。CGTase的分子改造也會成為以后研究的熱點。分子改造的目標主要在于：使CGTase催化反應的產物更加專一，比如轉化淀粉生成的產物為3種主要環糊精中的一個，或其中的某種環糊精占絕大多數比例；CGTase耐熱，pH范圍廣，生產成本低，適合工業化生產等。此外CGTase基因工程菌的研究也會引起研究者更多的興趣，但需要指出的是，CGTase主要應用于食品工業，因此不能忽略基因工程菌所產的重組酶安全性方面的研究。

[1]Van der Veen B A，van Alebeek G-JW M，Uitdehaag JC M，etal.The three transglycosylation reactionscatalyzed by cyclodextrin glycosyltransferase from Bacillus circulans（strain 251）proceed via different kinetic mechanisms[J].Eur J Biochem，2000，267：658-665.

[2]Biwer G，Antranikian G，Heinzle E.Enzymatic production of cyclodextrins[J].Appl Microbiol Biotechnol，2002，59：609-617.

[3]Leemhuis H，Kelly R M，Dijkhuizen L.Engineering of cyclodextrin glucanotransferases and the impact for biotechnologicalapplications[J].ApplMicrobiolBiotechnol，2010，85：823-835.

[4]Gawande B N，Goel A，Patkar A Y，et al.Purification and properties of a novel raw starch degrading cyclomaltodextrin glucanotransferase from Bacillus firmus[J].ApplMicrobiol Biotechnol，1999，51：504-509.

[5]Aoki H，Yu E K C，Misawa M.Novel cyclodextrin glycosyltransferase and its use in manufacturing cyclodextrin[P].US 87-35952，1988.

[6]Chung H J，Yoon S H，Lee M J，et al.Characterization of a thermostable cyclodextrin glucanotransferase isolated from Bacillus stearothermophilus ET1[J].J Agric Food Chem，1998，46：952-959.

[7]Nakamura N，Horikoshi K.Purification and properties of neutral cyclodextrin glycosyltransferase of an alkalophilic Bacillus sp[J].Agric Biol Chem，1976，40：1785-1791.

[8]Atanasova N，Petrova P，Ivanova V，et al.Isolation of novel alkaliphilic Bacillus strains for cyclodextrin glucanotransferase production[J].Appl Biochem Biotechnol，2008，149：155-167.

[9]Moriwaki C，Ferreira L R，Rodella J R T，et al.A novel cyclodextrin glycosyltransferase from Bacillus sphaericus strain 41：Production，characterization and catalytic properties[J].Biochem Eng J，2009，48：124-131.

[10]Gawande B N，Singh R K，Chauhan A K，et al.Optimization of cyclomaltodextrin glucanotransferase production from Bacillus firmus[J].Enzyme Microb Technol，1998，22：288-291.

[11]Rosso M A，Ferrarotti S A，Krymkiewicz N，et al.Optimization of batch culture conditions for cyclodextrin glucanotransferase production from Bacillus circulans DF 9R[J].Microb Cell Fact，2002，1：3.

[12]Ibrahim M H，Yusoff W M W，Hamid A A，et al.Optimization of medium for the production of β-cyclodextrin glucanotransferase using central composite design（CCD）[J].Process Biochem，2005，40：753-758.

[13]Januna R，Saswathi N，Sheela R，et al.Synthesis of cyclodextrin glycosyltransferaseby Bacilluscereusforthe production of cyclodextrins[J].Appl Biochem Biotechnol，1993，43：163-176.

[14]Jin-Bong H，Kim S H，Lee T K，et al.Production of maltodextrin from Bacillus stearothermophilus[J].Korean J Appl Biotechnol，1990，18：381-385.

[15]Avci A，D觟nmez S.A novel thermophilic anaerobic bacteria producing cyclodextrin glycosyltransferase[J].Process Biochemistry，2009，44：36-42.

[16]孫濤.Bacillus sp.SK13.002產環糊精葡萄糖基轉移酶及其催化蘆丁糖基化反應的研究 [D].無錫：江南大學，2011.

[17]Jeang C L，Lin D G，Hsieh S H.Characterization of cyclodextrin glycosyltransferase of the same gene expressed from Bacillus macerans，Bacillus subtilis，and Escherichia coli[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry，2005，53 （16）：6301-6304.

[18]Rahman K，Illias R M，Hassan O，et al.Molecular cloning of a cyclodextrin glucanotransferase gene from alkalophilic Bacillus sp TS1-1 and characterization of the recombinant enzyme[J].Enzyme and Microbial Technology，2006，39（1）：74-84.

[19]Hirano K，Ishihara T，Ogasawara S，et al.Molecular cloning and characterization of a novel gamma-CGTase from alkalophilic Bacillus sp[J].Appl Microbiol Biotechnol，2006，70：193-201.

[20]Charoensakdi R，Murakami S，Aoki K，et al.Cloning and expression of cyclodextrin glycosyltransferase gene from Paenibacillus sp T16 isolated from hot spring soil in northern Thailand[J].Journal of Biochemistry and Molecular Biology，2007，40（3）：333-340.

[21]Ong R M，Goh K M，Mahadi N M，et al.Cloning，extracellular expression and characterization of a predominant beta-CGTase from Bacillus sp G1 in E-coli[J].Journal of Industrial Microbiology&Biotechnology，2008，35（12）：1705-1714.

[22]唐上華，王磊，周新宇，等.嗜堿性芽孢桿菌N-227環狀糊精葡基轉移酶基因在枯草桿菌中的整合表達[J].工業微生物，1995，25（1）：1-4.

[23]張佳瑜，吳丹，李兆豐，等.來源于軟化芽孢桿菌的環糊精葡萄糖基轉移酶在畢赤酵母和枯草桿菌中的表達[J].生物工程學報，2009，25（12）：1948-1954.

[24]Jemli S，Ben Messaoud E，Ben Mabrouk S，et al.The cyclodextrin glycosyltransferase of Paenibacillus pabuli US132 strain：molecularcharacterization and overproduction ofthe recombinant enzyme[J].J Biomed Biotechnol，2008：692573.

[25]Lo P K，Hassan O，Ahmad A，et al.Excretory overexpression of Bacillus sp G1 cyclodextrin glucanotransferase（CGTase） in Escherichia coli：Optimization of the cultivation conditions by response surface methodology[J].“Enzyme and Microbial Technology，2007，40（5）：1256-1263.

[26]Charoensakdi R，Iizuka M，Ito K，et al.A recombinant cyclodextrin glycosyltransferase cloned from Paenibacillus sp.strain RB01 showed improved catalytic activity in coupling reaction between cyclodextrins and disaccharides[J].J Incl Phenom Macrocycl Chem，2007，57：53-59.

[27]Leemhuis H，Rozeboom H J，Dijkstra B W，et al.Improved thermostability ofBacilluscirculans cyclodextrin glycosyltransferase by the introduction of a salt bridge[J].Proteins，2004，54：128-134.

[28]Astray G，Gonzalez-Barreiro C，Mejuto J C，et al.A review on the use of cyclodextrins in foods[J].Food Hydrocolloids，2009，23：1631-1640.

[29]譚靜，姜子濤.環糊精及其衍生物在食品領域中的應用[J].食品研究與開發，2008，29（11）：178-181.

[30]Martin Del Valle E M.Cyclodextrins and their uses：A review[J].Process Biochemistry，2004，39：1033-1046.

[31]孫濤，江波，潘蓓蕾，等.產環糊精葡萄糖基轉移酶菌株的篩選、鑒定與應用研究[J].食品工業科技，2010，31（10）：210-212，215.

[32]Aga H，Yoneyama M，Sakai S，et al.Synthesis of 2-O-α-glucopyranosyl-L-ascorbic acid by cyclomaltodextrin glucanotransferase from Bacillus stearothermophilus[J].Agric Biol Chem，1991，55：1751-1756.

[33]Yamamoto I，Muto N，Murakami K，et al.Collagen synthesis in human skin fibroblasts is stimulated by a stable form of ascorbate，2-O-alpha-D-glucopyranosyl-L-ascorbic acid[J]．Nutrition，1992，122（4）：871-877.

[34]Tanaka O.Improvement of taste of natural sweeteners[J].Pure&Appl Chem，1997，69（4）：675-683.

[35]Abelyan V A，Balayan A M，Kochikyan V T，et al.Transglycosylation of stevioside by cyclodextrin glucanotransferases of various groups of microorganisms[J].Applied Biochemistry and Microbiology，2004，40（2）：129-134.

[36]Kochikyan V T，Markosyan A A，Abelyan L A，et al.Combined enzymatic modification of stevioside and rebaudioside A[J].Appl Biochem Microbiol，2006，42：31-37.

[37]Jaitak V，Kumar Kaul V，Bandna，et al.Simple and efficient enzymatic transglycosylation of stevioside by β-cyclodextrin glucanotransferase from Bacillus firmus[J].Biotechnol Lett，2009，31：1415-1420.

[38]凌關庭，王亦蕓，唐述潮.食品添加劑手冊 [M]．北京：化學工業出版社，1989：310.

[39]Suzuki Y，Suzuki K.Enzymatic formation of 4G-α-D-glucopyranosyl-rutin[J].Agric Biol Chem，1991，55：181-187.

[40]Go Y H，Kim T K，Lee K W，et al.Functional characteristics of cyclodextrin glucanotransferase from alkalophilic Bacillus sp.BL-31 highly specific for intermolecular transglycosylation of bioflavonoids[J].J Microbiol Biotechnol，2007，17：1550-1553.

[41]孫濤，江波，潘蓓蕾.酶法糖基化蘆丁的高效液相色譜法測定[J].食品工業科技，2010，31（9）：358-360.

[42]Mutsaers J H G.M，Van Eijk J H.Process for increasing the volume of a baked product[P].US 5，916，607，1999.

[43]Jemli S，Ben Messaoud E，Ayadi-Zouari D，et al.A βcyclodextringlycosyltransferasefromanewlyisolated Paenibacillus pabuli US132 strain：Purification，properties and potential use in bread-making[J].Biochemical Engineering Journal，2007，34：44-50.

[44]Martin M L，Hoseney R C.A mechanism of bread firming.II.Role of starch hydrolyzing enzymes[J].Cereal Chem，1991，68：503-507.

[45]Lee S H，Kim Y W，Lee S Y，et al.Modulation of cyclizing activity and thermostability of cyclodextrin glucanotransferase and its application as an antistaling enzyme[J].J Agric Food Chem，2002，50：1411-1415.

[46]Gujral H S，Rosell C M.Modification of pasting properties of wheat starch by cyclodextrin glycosyltransferase[J].J Sci Food Agric，2004，84：1685-1690.

[47]Gujral H S，Haros M，Rosell C M.Starch hydrolyzing enzymes for retarding the staling of rice bread[J].Cereal Chemistry，2003，80（6）：750-754.

[48]Gujral H S，Guardiola I，Carbonell J V，et al.Effect of cyclodextrinase on dough rheology and bread quality from rice flour[J].J Agric Food Chem，2003，51：3814-3818.

Production of Cyclodextrin glucanotransferases and their applications in food industry

SUN Tao1，JIANG Bo2，PAN Bei-lei3，*
（1.School of Perfume and Aroma Technology，Shanghai Institute of Technology，Shanghai 201418，China；2.State Key Laboratory of Food Science and Technology，Jiangnan University，Wuxi 214122，China；3.Chinese Institute of Food Science and Technology，Beijing 100006，China）

TS201.2+6

A

1002-0306（2012）16-0387-06

2012－02－01 *通訊聯系人

孫濤（1969-），男，博士，講師，研究方向：食品生物技術與食品添加劑。

上海應用技術學院引進人才基金。