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由天然葉黃素轉化為玉米黃素的工藝參數的研究

2012-12-22 09:23:58陶正國張貴林
天然產物研究與開發 2012年8期
關鍵詞:催化劑影響

陳 佳,陶正國,張貴林,余 勃,陸 豫*

1南昌大學藥學系,南昌330006;2南昌大學中德聯合研究院,南昌330047; 3廣州立達爾生物科技有限公司,廣州510530

葉黃素和玉米黃素均屬于含羥基類胡蘿卜素族,二者互為同分異構體。自然界中,葉黃素和玉米黃素大多同時存在,主要存在于深綠色食葉蔬菜、花卉、水果、枸杞和黃玉米中[1]。葉黃素的含量均遠遠大于玉米黃素含量,萬壽菊提取物中大約82%~88%為葉黃素,只有3%~6%為玉米黃素[2]。研究表明,玉米黃素具有抗氧化、清除自由基 、延緩衰老、預防癌癥、治療老年黃斑病變和保護視覺等生理功能[3-9]。隨著人們對健康的重視,使得玉米黃素受到廣泛關注。

自從1947年Karrer和Jacker[10]將葉黃素在催化劑的作用下異構化為玉米黃素以來,研究者們在用葉黃素異構化為玉米黃素方面做了大量研究,但是轉化率較低。本文對實驗中的影響因素進行了優化,使轉化率大大提高,提高工業效益。

1 實驗部分

1.1 主要儀器與試劑

儀器:78-1型恒溫磁力攪拌器(上海南匯電器廠);LC-15C型高效液相(島津);

試劑:葉黃素(廣州立達爾生物科技有限公司提供,含量85%以上),玉米黃素標準品(北京依普瑞斯生物科技有限公司,純度98%),異丙醇,1,2-丙二醇,叔丁醇,1,4-二氧六環,聚乙二醇(PEG) 600,氫氧化鉀、甲醇鈉、叔丁醇鈉、氨基鈉均為分析純。

1.2 實驗條件

1.2.1 色譜條件和轉化率的測定

色譜柱:Alltech Alltima Silica(4.6×250 mm,5 um);流動相:正己烷:乙酸乙酯:異丙醇=75∶25∶1.5;流速:1.5 mL/min;柱溫:室溫;紫外檢測波長:446 nm;進樣量:20 μL。

轉化率(%)=(原料中葉黃素含量-產物中葉黃素含量)/原料中葉黃素含量×100%

1.2.2 玉米黃素標準曲線的制作

精確稱取3.0 mg玉米黃素標準品于50 mL容量瓶中,用適量丙酮溶解,用正己烷稀釋至刻度,搖勻,得60 μg/mL的玉米黃素標準品溶液。取前一配好的玉米黃素標準品溶液于另一容量瓶中稀釋至刻度,搖勻,得50 μg/mL玉米黃素標準品溶液。以此類推,分別配得40、30、20、10和1 μg/mL玉米黃素標準品溶液供做HPLC。以玉米黃素標準品濃度和HPLC峰面積為坐標,得玉米黃素標準曲線:y= 2.3246x+9.7721,R2=0.9943。

1.2.3 實驗步驟

向通氮氣保護的三口燒瓶中加入一定量的溶劑、PEG600和葉黃素,待葉黃素完全溶解后,再加入堿。加熱至一定溫度,開始反應。反應數小時至反應結束。加水,用25%醋酸中和,減壓抽濾,真空干燥,得玉米黃素。

取產物先用少量提取劑(正己烷∶甲苯∶丙酮∶無水乙醇=10∶7∶7∶6)溶解,再用正己烷稀釋,HPLC檢測。

2 結果與討論

經預實驗和文獻報道,本文對堿和溶劑的種類進行了篩選。并對堿量、溶劑量、反應溫度、反應時間四個因素進行優化。

2.1 最佳催化劑的選擇

葉黃素在催化劑的作用下進行異構化,主要是用堿作為催化劑。本文采用堿作為催化劑,并對堿進行了篩選。

在氮氣保護下,在三口燒瓶中加入10 mL叔丁醇、0.25 g PEG600和0.5 g葉黃素,待完全溶解后,分別用3 g的氫氧化鉀、甲醇鈉、叔丁醇鈉和氨基鈉作為催化劑在110℃下進行反應,HPLC跟蹤檢測。

圖1 不同堿對轉化率的影響Fig.1 The effect of different alkali on the conversion

從圖1可以得出氫氧化鉀做催化劑時在短時間內可達到最高的轉化率,并且氫氧化鉀相對廉價,適合工業化生產,故選用氫氧化鉀。但是,在氫氧化鉀催化下轉化率不是很高,從HPLC中可以看出在反應24 h后由于葉黃素被破壞而致轉化率開始下降。我們推測可能是由于溶劑對反應的影響,所以本文對溶劑也進行了篩選。

2.2 溶劑對轉化率的影響

葉黃素在許多有機溶劑中的溶劑度較差,且不同溶劑對葉黃素在堿性條件下的穩定性也有較大影響。所以,合適的溶劑對轉化率有較大影響,對此本文做了相關研究。

在氮氣保護下,分別用10 mL異丙醇、1,2-丙二醇、叔丁醇和1,4-二氧六環叔丁醇做溶劑,再加入0.25 g PEG600和0.5 g葉黃素,待完全溶解后,加入3 g氫氧化鉀在110℃下進行反應,HPLC跟蹤檢測。

圖2 不同溶劑對轉化率的影響Fig.2 The effect of different solvents on the conversion

從圖2中可以得出1,2-丙二醇做溶劑轉化率是持續升高的,這主要是由于在1,2-丙二醇中葉黃素幾乎沒有被破壞。另外,1,2-丙二醇的沸點較高,轉化率有望進一步得到提高,且1,2-丙二醇對人體無毒害作用,所以本文選擇1,2-丙二醇做溶劑。

2.3 氫氧化鉀用量對反應速率和轉化率的影響

在氮氣保護下,在三口燒瓶中加入10 mL 1,2-丙二醇、0.25 g PEG600和0.5 g葉黃素,待完全溶解后,分別用氫氧化鉀/葉黃素(m/m)為1、2、3、4、5、6、7的催化劑與底物比在110℃下進行反應,HPLC跟蹤檢測。

圖3 氫氧化鉀量對轉化率的影響Fig.3 The effect of the amount of potassium hydroxide on the conversion

從圖3中可以看出在氫氧化鉀/葉黃素小于7時,隨著氫氧化鉀用量的增加,轉化率也相應增大,這時氫氧化鉀的催化作用占主導。當氫氧化鉀/葉黃素為7時,轉化率較快出現下降,這時氫氧化鉀對葉黃素的破壞作用占主導。所以,氫氧化鉀用量的選擇為氫氧化鉀/葉黃素為6時轉化率最高,反應時間也相應較短。

2.4 1,2-丙二醇用量對反應速率和轉化率的影響

在氮氣保護下,在三口燒瓶中加入 0.25 g PEG600、0.5 g葉黃素和3 g氫氧化鉀,分別用1,2-丙二醇/葉黃素(v/m)為10、20、30、40溶劑與底物比在110℃下進行反應,HPLC跟蹤檢測。

圖4 1,2-丙二醇用量對轉化率的影響Fig.4 The effect of the amount of 1,2-Propanediol on the conversion

從圖4中可以看出,當1,2-丙二醇/葉黃素(v/ m)為10時,轉化率較低,可能是因為葉黃素在1,2-丙二醇中沒有完全溶解。當1,2-丙二醇/葉黃素大于10時,轉化率有所增加,當1,2-丙二醇/葉黃素為20時轉化率最高。1,2-丙二醇/葉黃素大于20時,轉化率有所下降,這是由于底物濃度降低,催化劑與底物的碰撞幾率降低,轉化率和反應速率降低。所以,1,2-丙二醇/葉黃素選擇20。

2.5 溫度對轉化率的影響

溫度對反應有很大的影響,又由于葉黃素和產物玉米黃素對溫度也較為敏感,所以,選擇合適的反應溫度對反應的進行尤為重要。

在氮氣保護下,在三口燒瓶中加入10 mL 1,2-丙二醇、0.25 g PEG600、0.5 g葉黃素和3 g氫氧化鉀,反應液分別在90、100、110、120和130℃下進行反應,HPLC跟蹤檢測。

圖5 溫度對轉化率的影響Fig.5 The effect of temperature on the conversion

從圖5中可以看出當溫度在110℃時,轉化率處于上升趨勢且能達到最大。當溫度繼續升高時,高溫對葉黃素和玉米黃素的破壞作用占主導地位,轉化率降低。所以,最適反應溫度選擇為110℃。

2.6 時間對轉化率的影響

由于葉黃素和玉米黃素對溫度和堿都不穩定,反應時間過長,葉黃素和玉米黃素均會被破壞,所以,需確定最佳反應時間。

在氮氣保護下,在三口燒瓶中加入10 mL1,2-丙二醇、0.25 g PEG600、0.5 g葉黃素和3 g氫氧化鉀,在110℃下進行反應,HPLC跟蹤檢測。

圖6 反應時間對轉化率的影響Fig.6 The effect of reaction time on the conversion

從圖6中可以看出,當反應時間為168 h時,轉化率最高。

2.7 其它因素對轉化率的影響

除了以上研究的六個因素對葉黃素的轉化有重大影響外,還有諸如攪拌速度、堿的狀態等因素對反應的進行有一定的影響。

2.7.1 攪拌速度對轉化率的影響

由于此反應是在兩相中進行的,因此,需要一定的攪拌速度來增加分子間的碰撞幾率。攪拌速度越快,分子間的碰撞幾率越大,反應速率越快。一般,攪拌速度大于40 rpm,有利于反應。

2.7.2 堿的狀態對轉化率的影響

在此反應中,堿的存在形式可以是固體的也可以是水溶液,堿不同的狀態對反應有一定的影響。在本實驗中,不含水的固體氫氧化鉀的催化效力大于氫氧化鉀水溶液。

2.8 玉米黃素表征

圖7 反應前HPLC譜圖Fig.7 The HPLC chromatogram before reaction

經實驗對反應條件的優化,以1,2-丙二醇為溶劑,氫氧化鉀為催化劑,當1,2-丙二醇/葉黃素為20,氫氧化鉀/葉黃素為6,反應溫度為110℃,反應時間為168 h。從圖7中可以看出葉黃素的保留時間是12.989 min,玉米黃素的保留時間是15.121 min,圖8與圖7保持一致。檢測葉黃素轉化為玉米黃素的轉化率為93%。

圖8 反應后HPLC譜圖Fig.8 The HPLC chromatogram after reaction

致謝:非常感謝南昌大學分析測試中心對本研究項目給予的測試基金支持,對本實驗有過幫助的人及單位在此一并感謝。

1 Lu YJ(盧艷杰),Chen ZX(陳正行),Yao HY(姚惠源).I-solation and identification of lutein and zeaxanthin from corn gluten by thin-layer chromatography.J Wuxi Univ Light Ind (無錫輕工大學學報),2003,22(5):11-15.

2 Gustavo Rodriguez,Pigmenting efficiency of natural xanthophyll by isomerization.US5973211,1999-10-26. 3 Olmedilla B,Granado F,Blanco I,et al.Lutein in patients with cataracts and age-related macular degeneration:a longterm supplementation study.J Sci Food Agric,2001,81:904-909.

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9 Liu Y,Conrad OP,Suresh V.Comparison of three chosen vegetables with others from South East Asia for their lutein and zeaxanthin content.Food Chem,2007,101:1533-1539.

10 Karrer P,Jucker E.Umwandlung von α-Carotin in β-Carotin und von xanthophyll in zeaxanthin.Helv Chim Acta,1947,30:266-267.

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