999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

花生自身基因組原位雜交分析

2013-01-01 00:00:00楊飛龍舟鍇徐延浩張文英
湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2013年3期

摘要:利用自身基因組熒光原位雜交技術(shù),對花生(Arachis hypogaea L.)進(jìn)行自身基因組原位雜交分析。結(jié)果顯示,雜交信號沿所有染色體的全長分布,染色體著絲粒區(qū)、近著絲粒區(qū)和部分DAPI深染的區(qū)域存在強(qiáng)烈的雜交信號,染色體遠(yuǎn)端的雜交信號偏弱,染色體上存在少數(shù)未觀察到雜交信號的DAPI深染區(qū)域。花生自身基因組原位雜交存在明顯的非均勻染色體雜交帶型,這說明基因區(qū)成簇分布在小的染色體區(qū)域并被重復(fù)序列間隔開。

關(guān)鍵詞:花生(Arachis hypogaea L.);自身基因組原位雜交;重復(fù)DNA序列;基因組組織

中圖分類號:S565.2;Q943.2 文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A 文章編號:0439-8114(2013)03-0527-03

高等植物核基因組的一個(gè)顯著特征是含有大量的重復(fù)序列,如在玉米基因組中,重復(fù)DNA序列占85%以上[1]。重復(fù)序列是基因組大小差異和復(fù)雜性增加的主要原因[2]。根據(jù)重復(fù)序列在基因組中組織方式的不同,可初步分為串聯(lián)重復(fù)序列(Tandem repetitive sequence)、散在重復(fù)序列(Dispersed repetitive sequence)和片段重復(fù)序列(Segmental duplication)。弄清不同類型重復(fù)序列沿染色體的物理分布是解析植物基因組組織和進(jìn)化的關(guān)鍵之一。

全基因組測序方法是解析基因組組織和結(jié)構(gòu)最準(zhǔn)確的方法,但目前全基因組測序僅在模式植物和少數(shù)重要的作物中開展。基因組原位熒光雜交(Genomoic in situ hybridization,GISH)是熒光原位雜交(Fluorescence in situ hybridization,F(xiàn)ISH)技術(shù)的一種,能直接揭示DNA序列沿染色體的分布模式,是研究基因組結(jié)構(gòu)特征的方法之一。對擬南芥[3]、水稻[4-6]、大麥[7]、甘薯[8]等植物自身基因組原位雜交(self-Genomoic in situ hybridization,self-GISH)的研究表明,自身基因組原位雜交技術(shù)是揭示植物基因組中重復(fù)序列在染色體上的分布以及基因組組織的有效方法。

花生(Arachis hypogaea L.)是重要的植物性食用油和蛋白質(zhì)來源,由花生屬(Arachis)的二倍體物種雜交加倍形成的異源四倍體(2n=4X=40,AABB),基因組大小約為2 800 Mb[9]。對花生染色體核型[10]、熒光顯帶[11]及rDNA物理定位[12,13]已有報(bào)道,但對花生基因組重復(fù)DNA序列的組織和結(jié)構(gòu)并不明晰。本研究擬用自身基因組原位雜交技術(shù),初步揭示花生基因組重復(fù)DNA序列沿染色體的分布及與重復(fù)DNA相關(guān)聯(lián)的染色質(zhì)分化,為探究花生基因組的組織及結(jié)構(gòu)提供更多的資料。

1 材料與方法

1.1 材料

供試材料為珍珠豆型栽培花生中花8號,購于市場。

1.2 方法

1.2.1 染色體的制備 染色體制片按Song等[14]的方法稍加改進(jìn)。取生長旺盛的根尖,室溫用飽和α-溴萘水溶液處理3 h后用新鮮卡諾固定液固定。用2%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))的纖維素酶和2%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))的果膠酶28 ℃酶解,經(jīng)水洗、固定等步驟后采用火焰干燥法制片,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2 基因組DNA的提取和探針標(biāo)記 花生基因組DNA采用CTAB法提取。通過切口平移的方法用生物素-dUTP(biotin-11-dUTP)標(biāo)記探針。切口平移標(biāo)記反應(yīng)體系含有基因組DNA 500 ng,DNA PolymeraseⅠ(Takara) 5 U,DNA PolymeraseⅠ的 10×Buffer 4 μL ,DNaseⅠ(Takara) 0.001 U,dATP、dGTP、dCTP各0.1 mmol,Bio- dUTP (Biotin-11-dUTP ∶ dTTP為 1∶2) 0.1 mmol,加ddH2O至40 μL,14 ℃反應(yīng)2 h,加2 μL 0.5 mol/L EDTA 80 ℃保溫5 min終止反應(yīng)。切口平移標(biāo)記的DNA片段用2%的瓊脂糖檢測。

1.2.3 原位雜交及檢測 原位雜交及信號檢測參照Li等[15]的方法并略作修改。染色體制片65 ℃烤片后,經(jīng)Rnase A(37 ℃,1 h)處理,接著用2×SSC配制的70%甲酰胺溶液70 ℃處理2.5 min,用75%乙醇、95%乙醇和無水乙醇在-20 ℃各脫水5 min,然后置室溫下干燥。每張片子加入40 μL雜交液,含100 ng標(biāo)記的DNA、50%的去離子甲酰胺(Sigma)、10%的硫酸葡聚糖(Sigma)、0.1% SDS、2×SSC、4 000 ng sssDNA,用22 mm×22 mm的蓋玻片蓋片,90 ℃共變性5 min,于保溫皿中37 ℃雜交24~48 h。雜交后的片子在42 ℃用2×SSC配制的20%甲酰胺溶液洗2次,每次5 min,接著用2×SSC在室溫及37 ℃各洗10 min,1×PBS室溫洗1次,加入Streptavidin-Cy3,37 ℃下溫育30 min,再用1×PBS室溫洗3次,每次5 min。

1.2.4 圖像檢測及分析 染色體制片用5 μL/mL 的熒光染料DAPI(4′,6-diamidino-2-phenylindole)復(fù)染,加抗淬滅劑Vectorshield(Vector Lab),用Olympus BX60 顯微鏡觀察熒光原位雜交信號,用Photometrics SenSys CCD(charge coupled device)1400E照相裝置和Metamorph 4.6.3(Universal Imaging Crop)軟件俘獲圖像,用Photoshop 7.0.1軟件進(jìn)行圖片處理。

2 結(jié)果與分析

以中花8號基因組的總DNA為探針對其自身染色體進(jìn)行雜交,圖1顯示了中花8號自身基因組熒光原位雜交(self-GISH)結(jié)果。對染色體中期分裂相雜交結(jié)果進(jìn)行分析,結(jié)果(圖1a)顯示雜交信號密集的沿所有染色體的長軸分布,單從雜交信號就可以看出染色體的輪廓,染色體著絲粒區(qū)、近著絲粒區(qū)和部分DAPI深染區(qū)域存在強(qiáng)烈標(biāo)記的雜交信號。在強(qiáng)烈標(biāo)記區(qū)域能觀察到交替分布的弱標(biāo)記區(qū)域。同時(shí)可以觀察到染色體遠(yuǎn)端的信號偏弱,染色體上存在少數(shù)未被雜交的區(qū)域。增強(qiáng)的信號散布于輕度標(biāo)記的或非標(biāo)記的染色體區(qū),表現(xiàn)出染色體的非均勻雜交。大部分DAPI深染的染色質(zhì)區(qū)域有明顯增強(qiáng)的信號,但是還有幾個(gè)DAPI著色深的異染色質(zhì)區(qū)域沒有雜交信號。

為了排除DAPI著色深的異染色質(zhì)區(qū)域沒有雜交信號是由于染色質(zhì)凝縮程度過高而導(dǎo)致探針無法與目標(biāo)區(qū)域的DNA雜交,對染色質(zhì)凝縮程度較低的間期細(xì)胞核的雜交信號進(jìn)行了分析。結(jié)果(圖1b)表明,雜交信號分布于核區(qū)所有范圍。增強(qiáng)的雜交信號和輕度標(biāo)記的雜交信號交替分布,但可以觀察到增強(qiáng)的信號集中分布于核的一側(cè),增強(qiáng)的雜交信號和輕度標(biāo)記的雜交信號分別占據(jù)間期核的不同區(qū)域。大部分DAPI著色深的異染色質(zhì)區(qū)域有明顯增強(qiáng)的信號,但還是有幾個(gè)DAPI著色深的異染色質(zhì)區(qū)域沒有檢測到雜交信號,這說明染色質(zhì)凝縮程度并不是決定這幾個(gè)區(qū)域能否雜交的關(guān)鍵因素。

3 討論

擬南芥、甘藍(lán)、大麥等其他植物[3,7,8,16-18]自身基因組熒光原位雜交圖型與轉(zhuǎn)座子、反轉(zhuǎn)座子等重復(fù)DNA 序列的FISH圖型相似,證實(shí)了基因組熒光原位雜交信號主要來自重復(fù)DNA 序列。有研究認(rèn)為,自身基因組熒光原位雜交圖型能在一定程度上反映植物基因組重復(fù)序列和基因在染色體水平上的組織情況,雜交信號強(qiáng)烈的區(qū)域應(yīng)當(dāng)富含重復(fù)序列,為異染色質(zhì)區(qū)域即基因貧乏區(qū);輕度標(biāo)記或者非標(biāo)記的區(qū)域則應(yīng)當(dāng)是常染色質(zhì)區(qū)即基因富集區(qū)[7,19]。擬南芥、水稻、高粱等自身基因組熒光原位雜交結(jié)果顯示,基因組中的重復(fù)序列集中分布在近著絲粒的異染色質(zhì)區(qū)域,基因則分布在染色體遠(yuǎn)端缺乏重復(fù)序列的常染色質(zhì)區(qū)域,這與用其他方法分析的結(jié)論基本吻合[20,21]。

在本研究中,中花8號自身基因組熒光原位增強(qiáng)的信號主要位于DAPI深染區(qū)、著絲粒區(qū)、近著絲粒區(qū),說明這些區(qū)域主要由重復(fù)DNA構(gòu)成。增強(qiáng)的信號散布于輕度標(biāo)記的或非標(biāo)記的染色體區(qū)域,說明基因區(qū)成簇分布在小的染色體區(qū)域并由重復(fù)序列間隔開。這與其他具有大基因組植物的組織模式基本一致[7,18,19]。

DAPI是雙鏈DNA 特異性染料,與富含AT堿基對區(qū)域結(jié)合量大而發(fā)出較強(qiáng)的熒光,一般推測DAPI深染區(qū)是異染色質(zhì)區(qū)。花生染色體的DAPI帶紋特征可以為花生染色體的識別和鑒定提供特征,為研究花生的起源提供更多的染色體資料[11]。值得注意的是,在花生自身基因組原位雜交過程中,有幾個(gè)DAPI著色深的異染色質(zhì)區(qū)域還是沒有檢測到雜交信號。玉米核仁組織區(qū)和染色質(zhì)紐在自身基因組原位雜交中也出現(xiàn)陰性信號[7]。類似的情況在其他幾個(gè)植物中也檢測到[18,22,23]。有學(xué)者認(rèn)為這是重復(fù)序列自我封阻阻止了某些小部分的重復(fù)DNA在特定雜交條件下與對應(yīng)染色體區(qū)域的雜交。從本實(shí)驗(yàn)中期染色體和間期核雜交的結(jié)果來看,某些高度重復(fù)序列在染色質(zhì)包裝的早期就形成了復(fù)雜的高級結(jié)構(gòu),封阻了探針的進(jìn)入和雜交。

已有很多證據(jù)表明,重復(fù)序列對基因的調(diào)控和表達(dá)有一定的作用,異染色質(zhì)的高級結(jié)構(gòu)可能對染色質(zhì)的包裝起到支持和腳手架的作用[24]。所以花生染色體上基因區(qū)與重復(fù)DNA序列區(qū)的分布特征為理解花生基因的組織和進(jìn)化動(dòng)力提供了一些有益數(shù)據(jù)。

參考文獻(xiàn):

[1] GAUT B S. Evolutionary dynamics of grass genomes[J]. New phytologist,2002,154:15-28.

[2] LYNCH M,CONERY J S.The origins of genome complexity[J].Science,2003,302:1401-1404.

[3] BRANDES A, THOMPSON H, DEAN C, et al. Multiple repetitive DNA sequences in the paracentromeric regions of Arabidopsis thaliana L.[J]. Chromosome Research,1997,5:238-246.

[4] 藍(lán)偉偵,何光存,吳士筠,等.利用水稻 C0t-1 DNA和基因組 DNA對栽培稻、藥用野生稻和疣粒野生稻基因組的比較分析[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,39(6):1083-1090.

[5] 段峰森,劉 虹,陳 雁,等. 利用 C 基因組DNA和C0t-1 DNA對藥用野生稻,大穎野生稻基因組的比較分析[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,50(12):2548-2552.

[6] 邱小芬,劉 虹,覃 瑞,等.利用栽培稻基因組DNA對非洲野生稻進(jìn)行染色體熒光原位雜交分析[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2010,29(5):537-540.

[7] SHE C, LIU J, DIAO Y, et al. The distribution of repetitive DNAs along chromosomes in plants revealed by self-genomic in situ hybridization[J]. Journal of Genetics and Genomics, 2007,34:437-448.

[8] 湯佳立,戚大石,張 俞,等.熒光原位雜交技術(shù)分析栽培種甘薯(Ipomoea batatas cv. Xushu No. 18)染色體[J]. 遺傳,2010,32(2):177-182.

[9] TEMSCH E M, GREILHUBER J. Genome size variation in Arachis hypogaea and A. monticola re-evaluated[J]. Genome,2000,43:449-451.

[10] 王建波,利容千,曾子申.花生屬三種植物的核型研究[J].作物學(xué)報(bào),1988,14(4):1-8.

[11] 佘朝文,張禮華,蔣向輝.花生的熒光顯帶和rDNA熒光原位雜交核型分析[J].作物學(xué)報(bào),2012,38(4):754-759.

[12] 徐延浩,李立家.花生45S rDNA和5S rDNA的染色體定位研究[J].武漢植物學(xué)研究,2010,28(6):649-653.

[13] SEIJO J G, LAVIA G I, FERNANDEZ A, et al. Physical mapping of the 5S and 18S-25S rRNA genes by FISH as evidence that Arachis duranensis and A. ipaensis are the wild diploid progenitors of A. hypogaea (Leguminosae)[J]. American Journal of Botany,2004,91:1294-1303.

[14] SONG Y C, GUSTAFSON J P. The physical location of fourteen RFLP markers in rice (Oryza sativa L.)[J]. Theoretical and Applied Genetics,1995,90:113-119.

[15] LI L, ARUMUGANATHAN K. Physical mapping of 45S and 5S rDNA on maize metaphase and sorted chromosomes by FISH[J]. Hereditas,2001,134:141-145.

[16] WEI W H, ZHANG S F, WANG L J, et al. Karyotyping of Brassica oleracea L. based on C0t-1 and ribosomal DNAs[J]. Botanical Studies,2007,48:255-261.

[17] ALIX K, RYDER C D, MOORE J, et al. The genomic organization of retrotransposons in Brassica oleracea[J]. Plant Molecular Biology,2005,59:839-851.

[18] KUIPERS A G J, VAN OS D P M, DE JONG J H et al. Molecular cytogenetics of Alstroemeria: identification of parental genomes in interspecific hybrids and characterization of repetitive DNA families in constitutive heterochromatin[J]. Chromosome Research,1997,5:31-39.

[19] SHIBATA F, HIZUME M. The identification and analysis of the sequences that allow the detection of Allium cepa chromosomes by GISH in the allodiploid A. wakegi[J]. Chromosoma,2002,111:184-191.

[20] ARABIDOPSIS G I. Analysis of the genome sequence of the flowering plant Arabidopsis thaliana[J]. Nature,2000,408:796-815.

[21] YU J, HU S, WANG J, et al. A draft sequence of the rice genome(Oryza sativa L. ssp. indica)[J]. Science,2002,296:79-92.

[22] BARDSLEY D, CUADRADO A, JACK P, et al. Chromosome markers in the tetraploid wheat Aegilops ventricosa analysed by in situ hybridization[J]. Theoretical and Applied Genetics,1999,102:300-304.

[23] FALISTOCCO E, TORRICELLI R, FALCINELLI M. Genomic relationships between Medicago murex Willd. and Medicago lesinsii E. Small. investigated by in situ hybridization[J]. Theoretical and Applied Genetics,2002,105:829-833.

[24] FRANSZ P, DE JONG J H, LYSAK M, et al. Interphase chromosomes in Arabidopsis are organized as well defined chromocenters from which euchromatin loops emanate[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences,2002,99:14584-14589.

主站蜘蛛池模板: 一本大道无码高清| 久久国产精品波多野结衣| 亚洲人人视频| 亚国产欧美在线人成| 日韩成人免费网站| 免费啪啪网址| 精品成人一区二区| 99视频在线免费| 夜夜爽免费视频| 欧美日韩另类在线| 波多野结衣亚洲一区| 天天躁夜夜躁狠狠躁躁88| 国产成人夜色91| 亚洲人成网站观看在线观看| 亚洲欧洲日韩综合| 日韩无码黄色网站| 国产成人免费高清AⅤ| 99在线视频网站| 日韩成人在线一区二区| 国产亚洲欧美在线视频| 国产又大又粗又猛又爽的视频| 亚洲精品亚洲人成在线| 欧美午夜小视频| 欧美亚洲国产一区| 99视频在线免费观看| 国产一区三区二区中文在线| 亚洲人成网站日本片| 婷婷久久综合九色综合88| 国产一级妓女av网站| 精品无码日韩国产不卡av| 91福利在线观看视频| 成人字幕网视频在线观看| 蜜桃视频一区二区| 亚洲日韩欧美在线观看| 国产日韩丝袜一二三区| 乱码国产乱码精品精在线播放| 国产女人爽到高潮的免费视频 | 54pao国产成人免费视频| 亚洲性色永久网址| 97色伦色在线综合视频| Jizz国产色系免费| 亚洲国产理论片在线播放| 久久国语对白| 91系列在线观看| 99伊人精品| 久久精品国产999大香线焦| 男女精品视频| 伊人久热这里只有精品视频99| 国产一级小视频| 久久国产V一级毛多内射| 波多野结衣在线一区二区| 国产成人精品2021欧美日韩| 青青草原国产精品啪啪视频| 国产精品亚洲专区一区| 国产精品第三页在线看| 激情网址在线观看| 一级成人a做片免费| AV片亚洲国产男人的天堂| 国产女人在线视频| 国产91麻豆免费观看| 亚洲第一在线播放| 欧美另类视频一区二区三区| 91黄色在线观看| 最新国产成人剧情在线播放| 欧美日韩亚洲国产| 四虎永久在线| 欧美成人精品在线| 亚洲人成网站在线播放2019| 国产第一页免费浮力影院| 97成人在线观看| 在线观看视频99| 黄网站欧美内射| 亚洲精品欧美日本中文字幕| 狼友视频一区二区三区| 久久黄色一级视频| 亚洲一区毛片| 国产全黄a一级毛片| 99视频在线免费| 99久久99这里只有免费的精品| a级毛片毛片免费观看久潮| 欧美a级在线| 毛片网站在线看|