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重離子束-紫外線復合誘變選育高產Lovastatin土曲霉菌株

2013-02-13 08:15:30宋紅平安曉娟李師翁
食品科學 2013年3期
關鍵詞:產量

宋紅平,李 梅,馮 琳,安曉娟,李師翁*

(蘭州交通大學化學與生物工程學院,甘肅 蘭州 730070)

Lovastatin是1979年Endo[1]從紅曲霉(Monascus ruber)的培養液中分離出的一種能夠強力抑制膽固醇合成的生物活性物質,已知其主要產生菌有Monascus ruber、Aspergillus terreus、Penicillium citrinum等。Lovastatin的主要作用是在體內競爭性的抑制膽固醇合成的限速酶3-羥-3-甲基戊二酰輔酶A還原酶(3-hydroxy-3-methylglutaryl CoA,HMG-CoA)的活性,從而阻斷內源性膽固醇的合成,使膽固醇的合成大大減少[2]。Lovastatin具有多重的藥理作用,對多種慢性疾病有顯著療效,如代謝性綜合癥、多種位點專一性癌變、骨質疏松、老年性癡呆、帕金森癥、多種組織硬化和風濕性關節炎等[3]。

目前,誘變育種是工業微生物菌種選育的有效方法,常見的誘變方法有物理誘變、化學誘變、空間技術誘變和復合誘變等。紫外線誘變主要原理是使DNA分子形成嘧啶二聚體,二聚體出現會減弱雙鍵間氫鍵的作用,并引起雙鏈結構扭曲變形,阻礙堿基間的正常配對,從而引起突變堿基轉換(conversion)、顛換(transversions)、移碼突變(frameshift mutations)或缺失(deletions)等,靳建忠等[4]利用紫外線誘變出芽短梗霉選出高產普魯蘭糖白化突變菌株。紫外線與物理、化學方法復合誘變已廣泛應用于微生物育種中,周波等[5]利用紫外線與化學誘變劑復合誘變篩選出一株高產紅曲黃色素菌株。重離子束作為一種新的輻射誘變育種源,在新品種選育中具有重要的獨特應用效果。重離子束可導致水稻的miRNA和特異性miRNAs發生改變,通過基因表達顯示出不同的性狀[6]。本實驗室利用蘭州重離子加速器重離子裝置產生的重離子束對A.terreusCA99的孢子進行了輻照,結果發現重離子束能使土曲霉孢子發生變異。為了進一步提高Lovastatin的產量,本實驗在前面實驗的基礎上,以菌株A.terreusCA99為出發菌株,用重離子束和紫外復合誘變的方法對A.terreusCA99進行誘變,以期獲得高產Lovastatin菌株。

1 材料與方法

1.1 出發菌株

土曲霉(Aspergillus terreusCA99),由中國農業大學微生物生理研究室提供。

1.2 培養基

斜面/平板培養基為PDA培養基;種子培養基(g/L):葡萄糖50、玉米粉10、氯化鈉2、磷酸二氫鉀0.5、硫酸鎂0.5,pH值自然;發酵培養基(g/L):玉米粉10、氯化鈉2、硝酸鈉2、磷酸二氫鉀0.5、硫酸鎂0.5,甘油30mL,pH值自然。

1.3 孢子懸液的制備

將菌株CA99在PDA培養基上30℃活化培養5~6d,用無菌水沖洗菌種斜面, 移入三角瓶中,并加入1~2滴0.02%的Triton X-100及玻璃珠,180r/min振蕩1h,4層無菌濾紙過濾,在血球計數板下計數,制成1×106個/mL的孢子懸液。

1.4 重離子束誘變

重離子束誘變在中國科學院近代物理研究所蘭州重離子研究裝置(HIRFL)上進行。以40mm能量為80MeV/u12C6+重離子束垂直輻照孢子懸液,劑量分別為5、10、15、20、25、30Gy,每個劑量設置3個平行,劑量數據獲取及樣品更換由計算機控制[7]。將重離子束誘變處理過的孢子懸液稀釋至10-3和10-4,吸取100μL涂布于PDA平板培養基上,每一稀釋倍數設置3個平行,以未誘變的孢子懸液為對照,30℃避光培養5d,計算致死率。

1.5 紫外線誘變

將重離子誘變篩選得到的高產菌株制備孢子懸液,無菌超凈工作臺中吸取孢子懸浮液5mL于帶磁力攪拌子的平皿中,打開皿蓋,置于磁力攪拌器上,15W紫外燈垂直距離15cm處,磁力攪拌下照射時間分別為30、60、90、120、150、180s。將紫外線照射后的孢子懸液稀釋至10-3和10-4,吸取100μL涂布于PDA平板培養基上,每個稀釋倍數設置3個平行,以未誘變的孢子懸液為對照,30℃避光培養5d,計算致死率。

1.6 誘變菌株的初篩和復篩

將經過輻照處理的孢子懸液稀釋至10-3和10-4,吸取100μL涂布在固體平板培養基上,每個稀釋度涂布3個平皿,在30℃的恒溫培養箱中培養3~4d,挑取生長較快的單菌落接入試管斜面培養基保存。將初篩得到的菌株接入20mL液體種子培養基中,30℃搖瓶培養24h,再以10%的接種量接入50mL液體發酵培養基中,30℃、150r/min搖瓶培養15d,測定發酵液中Lovastatin的含量,篩選產量高的菌株。

1.7 Lovastatin產量的測定

1.7.1 定性分析

薄層層析法:將搖床培養15d的菌株發酵液經超聲波和乙酸乙酯提取后,再經過柱層析分離,提取純化后的Lovastatin樣品和標準品一起進行硅膠薄層層析,再經過磷鉬酸染色后觀察斑點的位置和大小。紫外分光光度法:將提純后的Lovastatin樣品用75%乙醇溶解后,以75%的乙醇為對照,用紫外分光光度計進行掃描,掃描波長范圍226~260nm。如果在231、238、246nm波長附近有最大吸光度,表明有Lovastatin存在。紅外光譜法:將Lovastatin標準品和突變A.terreusUV150-3發酵液提取獲得的Lovastatin樣品,分別用KBr壓片后用紅外光譜分析儀VERTEX 70進行紅外光譜檢測。

1.7.2 定量測定

按照文獻[7]方法進行,采用雙波長紫外分光光度法,排除樣品中色素的干擾,在246nm和254nm雙波長處快速測定發酵液中Lovastatin的含量。

2 結果與分析

2.1 重離子束誘變結果

圖1 重離子照射對A.terreus CA99孢子的致死率Fig.1 Effect of heavy-ion irradiation on the spores survival of A.terreus CA99

由圖1可知,重離子束輻照強烈影響A.terreusCA99孢子的生活力,致死率隨輻照劑量的增加而增加,輻照劑量大于20Gy時,致死率增加的速度減緩,30Gy時致死率達99.9%。通常情況下,將存活率大于30% (致死率大于70%)的輻照劑量,作為誘變育株的參考劑量,重離子對土曲霉的致死率在70%以上的有效致死劑量在15~30Gy。

圖2 重離子輻照后初篩的16株菌株的Lovastatin產量Fig.2 Lovastatin yields of 16 strains screened by heavy-ion irradiation

由圖2可知,重離子束輻照后的孢子經過初篩得到的16株菌株,通過液體搖瓶發酵復篩,得到7株Lovastatin產量高于出發菌株A.terreusCA99的誘變菌株,產量明顯提高的是A.terreusZ30-3、A.terreusZ15-6、A.terreusZ15-7和A.terreusZ15-9,其中A.terreusZ15-9的產量最高,為735.00mg/L,是出發菌株(171.20mg/L)的4.29倍。因此,將A.terreusZ15-9進行下一步的紫外誘變。

2.2 紫外線誘變結果

圖3 紫外線照射時間對A.terreus Z15-9孢子的致死率Fig.3 Effect of ultraviolet irradiation time on the spores survival of A.terreus Z15-9

由圖3可知,紫外線對菌株的致死率與照射強度和照射時間有關。在15W紫外燈垂直距離15cm處照射,隨著紫外線照射時間的延長,菌株A.terreusZ15-9的致死率不斷增大,照射時間在100~180s范圍內,A.terreusZ15-9的致死率都大于80%,表明在此時間范圍進行輻照,誘變效果更好。

圖4 紫外線誘變后初篩得到的19株菌株的LovastatinFig.4 Lovastatin yields of 19 mutants screened by ultraviolet radiation

由圖4可知,紫外線照射后經初篩得到19株菌株,通過搖瓶發酵進行復篩,得到3株產Lovastatin產量高于出發菌株A.terreusZ15-9誘變株,分別是A.terreusUV150-1、A.terreusUV150-3、A.terreusUV150-4,其中A.terreusUV150-3菌株的Lovastatin產量最高,為966.32mg/L是A.terreusZ15-9菌株(735.00mg/L)的1.31倍。因此,將A.terreusUV150-3作為最終菌株進行進一步研究。

將重離子誘變和紫外誘變后的菌株A.terreusUV150-3接種于PDA平板培養基中,培養5~6d后,有大量的土黃色的孢子產生,誘變后菌落生長較快,外周有大量白色菌絲產生。用接種針從斜面或發酵液中挑取少量菌絲,制作菌絲裝片,在顯微鏡下觀察,A.terreus的菌絲分支較多,為有隔菌絲,其內含物及孢子呈淺綠色,具典型的分生孢子梗。誘變后的菌株相比原菌株菌絲變細,內含物排列不規整,孢子和孢子梗的形態沒有發生變化。

2.3 A.terreus UV150-3菌株的液態培養特性

將A.terreusUV150-3菌株接種到發酵培養基中,進行液態搖瓶發酵,菌絲團成球狀,在發酵前3d左右菌球呈白色,整個發酵液呈淡綠色,隨著培養時間的延長,發酵液顏色逐漸變深,菌絲球也越來越大。發酵結束后,整個發酵液呈現土黃色略帶紅色。研究表明Lovastatin的生物合成與菌絲球的結構和大小有一定關系,緊湊的菌形和小菌絲球更有利于其合成,同時在繁殖期生物量也達到最高,最適菌絲球大小直徑在0.85~1.05mm之間,這與Lai等[8]的研究結果一致。Bizukojc等[9]研究發現當土曲霉孢子的菌落直徑小于1.5mm的菌絲球可以使Lovastatin的產量達到最大,孢子數量小于2×109個時生物量達到最大。

圖5 A.terreus UV150-3的生長曲線Fig.5 Growth curve of A.terreus UV150-3

由圖5可知,將A.terreusUV150-3接種于發酵培養基中,前3d每隔24h測定其生物量,之后每隔3d測定1次,并用雙波長紫外分光光度法測定其Lovastatin產量。菌株A.terreusUV150-3在前6d生長較快,9d以后菌株生長進入穩定期。

圖6 A.terreus UV150-3的產物曲線Fig.6 Lovastatin production of A.terreus UV150-3

由圖6可知,前6d Lovastatin產量較低,這一階段主要是菌株自身的生長,隨著培養時間的延長,發酵液中Lovastatin的產量也逐漸增加,當達到15d后,Lovastatin產量趨于穩定,造成此現象的原因是發酵培養基中的養分已被消耗,菌體代謝產物逐漸增多。文獻報道[10-12]中,土曲霉發酵產Lovastatin的最佳發酵時間在10d左右,本實驗中最佳發酵時間為15d。

2.4 A.terreus UV150-3發酵液中Lovastatin的定性分析

圖7 Lovastatin樣品與標準品的薄層層析Fig.7 Thin layer chromatography of lovastatin standard and lovastatin samples

圖8 Lovastatin樣品的紫外掃描圖譜(75%乙醇)Fig.8 UV spectrum of lovastatin sample (in 75% ethanol)

從圖7薄層層析圖可以看出,與標準品有相同位移的洗脫液表明有Lovastatin的存在。由圖8紫外掃描可看出,用75%乙醇溶解經柱層析得到的Lovastatin樣品,在230、238nm和246nm處有3個紫外吸收峰,這與文獻報道[13]的用紫外檢測Lovastatin在229、237nm和246nm波長處有最大吸收峰相同。Lovastatin的紅外光譜在3550、2970、1696cm-1和1220cm-1處有特征吸收峰[13],本實驗在室溫下用溴化鉀壓片法測定Lovastatin樣品和標準品的紅外光譜(圖9),A.terreusUV150-3菌株產生的Lovastatin樣品的紅外光譜特征吸收峰為3539.98、2928.53、1700.37、1219.63cm-1,與標準Lovastatin特征吸收峰3540.63、2965.37、1699.64、1220.01cm-1一致。因此,通過薄層層析、紫外掃描圖譜及紅外圖譜可以得出A.terreusUV150-3菌株的發酵液中含有Lovastatin。

圖9 Lovastatin樣品與標準品的紅外吸收光譜Fig.9 IR spectra of lovastatin samples and lovastatin standard (KBr)

2.5 A.terreus UV150-3的遺傳穩定性

為了考察誘變菌株的遺傳穩定性,對菌株A.terreusUV150-3連續傳代培養5代,每代進行搖瓶發酵,并重復3次測定Lovastatin的產量及生物量。由表1可知,培養5代A.terreusUV150-3發酵液中Lovastatin的產量穩定在960mg/L左右,生物量也比較穩定,說明菌株A.terreusUV150-3有較好的遺傳穩定性。

表1 A.terreus UV150-3產Lovastatin遺傳穩定性(±s, n=3)Table 1 Genetic stability of A.terreus UV150-3 (±s, n=3)

表1 A.terreus UV150-3產Lovastatin遺傳穩定性(±s, n=3)Table 1 Genetic stability of A.terreus UV150-3 (±s, n=3)

指標 傳代次數1 2 3 4 5 Lovaststin產量/(mg/L)生物量/(g/100mL)966.32±5.11 0.639±0.009 970.12±7.03 0.640±0.010 953.35±10.33 0.647±0.013 962.90±9.80 0.644±0.007 959.20±2.34 0.645±0.004

3 討論與結論

目前,產Lovastatin的絲狀真菌有Monascus、Aspergillus和Penicillium等,其中以Monascus ruber、Monascus pilosus、Aspergillus terreus、Aspergillus flavipes等廣泛用于研究和生產。但Lovastatin的野生菌株一般產量都很低,因此運用誘變育種的方法來獲得優良菌株的研究越來越受到重視,并取得了一定的研究結果[14]。蔣世春[15]用微波等離子體(N+20W)誘變方法,篩選到一株最高產率為對照菌株的118.7%的高產菌株N-28,并進行傳代產量穩定性實驗,經發酵工藝條件優化,在培養過程中改變碳氮比例,添加適量的甲硫氨酸,最終Lovastatin的產率提高21.8%。陳芝等[16]將高產Lovastatin的A.terreus與低產的M.anka進行原生質體融合,篩選得到高產的融合子。近年來,基因工程技術的應用,大大提高了微生物菌種的選育的效率。但傳統的物理化學誘變方法,因其具有簡單、快速、有效等優點,至今仍被廣泛使用。本研究采用重離子和紫外線復合誘變的方法,對Aspergillus terreusCA99,通過初篩復篩選出了一株高產Lovastatin菌株A.terreusUV150-3,其產量高達966.32mg/L,較原始出發菌株A.terreusCA99 (171.20mg/L)提高了4.6倍,且遺傳穩定性良好。

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