李忠平 俞曉藝 段松嵐 沙亞飛
翼狀胬肉是一種臨床常見眼表疾病,翼狀胬肉影響淚膜功能。糖尿病是一種臨床常見內科疾病,可引起眼部的多種并發癥,如視網膜病變、青光眼、白內障、角膜病變等,多為嚴重致盲性眼病。近年來研究表明糖尿病也可以影響患者的淚膜功能,從而進一步并發糖尿病性眼表疾病,直接影響了糖尿病患者的視覺及生活質量[1]。本研究探討手術前后翼狀胬肉合并糖尿病對患者淚膜功能的影響。
1.1 一般資料 選取2008年10月至2010年12月在我院治療的單側翼狀胬肉90例患者,其中單純翼狀胬肉患者30例30只眼(治療組A),年齡35~78(54.2±15.5)歲;翼狀胬肉合并I型糖尿病患者30例30只眼(治療組B),年齡39~78(55.3±13.8)歲;翼狀胬肉合并Ⅱ型糖尿病患者30例30只眼30只眼(治療組C),年齡35~79(56.7±17.4)歲。另選取90例非翼狀胬肉者作為對照,其中正常人30例30只眼(對照組A),年齡36~78(51.5±14.3)歲;單純Ⅰ型糖尿病患者30例30只眼(對照組B),年齡33~76(58±12.3)歲;單純Ⅱ型糖尿病患者30例30只眼(對照組C),年齡34~74(55.5±12.0)歲。各組間年齡比較差異無統計學意義(P>0.05)。
1.2 淚膜功能檢查 分別于術前3周和術后3個月對各組進行淚膜功能檢查,包括淚液分泌(Schirmer-I)試驗、淚膜破裂時間(BUT)、淚液羊齒狀物試驗(MFT)、角膜染色評分(CFS)及淚液清除率(TCR)檢查。①Schirmer-I試驗:淚液濾紙條,于前端5 mm處對折,置于下瞼中外三分之一結膜囊內,受試者閉眼5 min后取出濾紙條,測量濾紙淚液浸濕長度(mm),正常值為10~20 mm,小于10 mm為異常。②BUT測定:滴2 μl的1%熒光素鈉于下瞼結膜囊內,受試者眨眼數次后睜眼,用裂隙燈顯微鏡的鈷藍色散光,記錄由瞬目后睜眼開始到淚膜出現第1個干斑的時間,即BUT,每例受試者重復測量3次,取平均值。正常值為15~45 s,小于10 s為異常。③MFT試驗:用毛細管從受試者淚河中取2 μl淚液樣本滴在載玻片上,室溫下干燥15 min,置于400倍顯微鏡下觀察評級。按照Rolando分級法[2]分級。④CFS試驗:定性反應角結膜上皮破壞程度,將角結膜分為4個象限,每個象限根據染色程度和面積分為四個等級:0分:無染色;1分:散布點狀染色;2分:密集點狀染色;3分:片狀染色。⑤TCR檢查:在受試者結膜囊內滴入10 μl 0.5%熒光素和0.4%鹽酸奧布卡因5 μl 5 min后,進行Schirmer實驗,每次Schirmer試驗1 min,分別進行3次,所得結果與標準圖進行對比,觀察濾紙染色情況,TCR正常者在第一條濾紙后染色即開始消退[3]。
1.3 手術方法 由同一手術者對翼狀胬肉合并糖尿病的患者60只眼進行翼狀胬肉切除聯合角膜緣干細胞移植術。
1.4 統計學方法 所得數據采用SPSS 13.0軟件進行統計學分析。Schirmer-I試驗結果、BUT結果、角膜熒光素染色試驗結果采用單因素方差分析,MFT試驗采用秩和檢驗及χ2檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
各組術前 Schirmer-I試驗、BUT、CFS、MFT結果見表 1。術前各組之間Schirmer-I試驗結果比較差異無統計學意義(P>0.05)。除對照組A外,各組BUT時間均為異常,即小于10 s,除對照組B外,其他各組與對照組A比較差異均有統計學意義(P<0.05);治療組C與對照組C和治療組A比較差異有統計學意義(P<0.05)。CFS除對照組B外,其他各組與對照組A比較差異均有統計學意義(P<0.05);治療組B與對照組B比較差異有統計學意義(P<0.05),治療組C與對照組C比較差異有統計學意義(P<0.05)。術前MFT采用秩和檢驗,各組之間MFT等級分布不全相同,差異均有統計學意義(P<0.05),進一步采用χ2檢驗對比兩組間差異,對照組B與對照組A比較差異無統計學意義(P>0.05),對照組C、治療組A、治療組B及治療組C與對照組A比較差異均有統計學意義(P<0.05),治療組B與對照組B比較差異有統計學意義(P=0.033)。術前TCR檢查除對照組外均為異常。
術后3個月治療組B及治療組C與術前各項檢查結果見表2。治療組B術后與術前比較,Schirmer-I試驗差異無統計學意義(P>0.05)。BUT、CFS及MFT結果與術前比較差異均有統計學意義(P<0.05);TCR結果正常。治療組C術后與術前比較,Schirmer-I試驗差異無統計學意義(P>0.05)。BUT、CFS及MFT結果與術前比較差異均有統計學意義(P<0.05或<0.01);TCR結果正常。
表1 各組術前淚膜功能試驗結果[,(例,%)]

表1 各組術前淚膜功能試驗結果[,(例,%)]
注:與對照組A比較,aP<0.05;與治療組A比較,bP<0.05;與對照組B比較,cP<0.05;與對照組C比較,dP<0.05;Schirmer-I:淚液分泌;BUT:淚膜破裂時間;CFS:角膜染色評分;MFT:淚液羊齒狀物試驗
組別 例數 Schirmer-I(mm/5 min,)BUT(s,)CFS(分,)MFT Ⅰ、Ⅱ(%)MFTⅢ、Ⅳ(%)對照組A 30 17.15±1.30 12.88±0.50 2.43±0.59 25(83.3) 5(16.7)對照組B 30 15.09±1.51 9.96±0.42 3.43±0.51 24(80.0) 6(20.0)對照組C 30 16.81±1.22 6.43±0.39a 7.91±0.51a 12(40.0)a 18(60.0)a治療組A 30 15.53±1.09 9.15±0.39a 8.45±0.72a 16(53.3)a 14(46.7)a治療組B 30 16.91±0.55 8.59±0.47a 9.08±0.48ac 13(43.3)ac 17(56.7)ac治療組C 30 15.98±0.83 4.92±0.51abd 10.31±0.94ad 11(36.7)a 19(63.3)a
表2 術前及術后翼狀胬肉合并I/Ⅱ型糖尿病組試驗結果比較[,(例,%)]

表2 術前及術后翼狀胬肉合并I/Ⅱ型糖尿病組試驗結果比較[,(例,%)]
注:與本組術前比較,aP<0.05,bP<0.01;Schirmer-I:淚液分泌;BUT:淚膜破裂時間;CFS:角膜染色評分;MFT:淚液羊齒狀物試驗
組別 例數 Schirmer-I(mm/5 min,)BUT(s,)CFS(分,)MFTⅠ、Ⅱ(%)MFT Ⅲ、Ⅳ(%)治療組B 術前 30 16.91±0.55 8.59±0.47 9.08±0.48 13(43.3) 17(56.7)術后 15.83±0.99 11.49±0.53a 4.39±0.62a 22(73.3)a 8(26.7)a治療組C 術前 30 15.98±0.83 4.92±0.51 10.31±0.94 11(36.7) 19(63.3)術后 16.23±1.69 9.94±0.71a 7.12±0.83a 18(60.0)b 12(40.0)b
淚膜具有保護、潤滑、營養眼表結構的重要功能,多種嚴重眼表疾病及全身性疾病都可能影響淚膜穩定性,從而進一步引發各種嚴重眼病。翼狀胬肉是一種臨床常見眼表疾病,尤其高發于低緯度、沿海及紫外線輻射較高地區,發展到一定程度可嚴重影響患者視力及眼部不適感,即使手術也難以痊愈及有效防止復發[4],目前有研究表明,翼狀胬肉影響淚膜功能,使淚膜的穩定性下降,糖尿病患者淚膜穩定性較差,翼狀胬肉合并糖尿病可進一步加重患者淚膜功能損傷。
本研究結果顯示,術前除對照組A外,其他各組淚膜破裂時間均小于10 s,其中治療組C與對照組C和治療組A比較差異有統計學意義(P<0.05)。提示翼狀胬肉進一步縮短Ⅱ型糖尿病淚膜破裂時間。角膜熒光素染色定性實驗結果顯示,除對照組A及對照組B外,其他各組角膜上皮破壞嚴重,其中治療組B與對照組B比較差異均有統計學意義(P<0.05),治療組C與對照組C比較差異有統計學意義(P<0.05)。說明翼狀胬肉使I、Ⅱ型糖尿病患者角膜上皮損傷加重。術前除對照組B外,其他各組與對照組A比較淚液羊齒狀物試驗結果差異均有統計學意義,此外治療組B與對照組B比較差異有統計學意義(P<0.05),說明翼狀胬肉使羊齒樣黏液減少,羊齒樣黏液減少是造成淚膜功能不全的重要病因之一[5]。
術后翼狀胬肉合并 I、Ⅱ型糖尿病患者與術前相比,Schirmer-I試驗結果差異無統計學意義(P>0.05),BUT、CFS及MFT結果與術前比較差異均有統計學意義(P<0.05),說明翼狀胬肉切除聯合角膜緣干細胞移植術使可使翼狀胬肉合并糖尿病患者淚膜功能得到改善,從試驗結果及文獻推斷,淚膜功能的改善可能與手術恢復眼表結構有關[6]。翼狀胬肉切除聯合角膜緣干細胞移植術是目前治療翼狀胬肉最有效的療法之一,該方法能有效祛除病變、恢復角膜功能,與普通藥物治療相比能明顯降低復發率,并且由于采用自體角膜緣干細胞移植,因此具有取材方便、無排斥反應等優點[7,8]。
綜上所述,翼狀胬肉合并糖尿病對患者淚膜功能產生影響,通過翼狀胬肉切除聯合角膜緣干細胞移植術可使患者淚膜功能得到改善,目前本研究僅隨訪了術后3個月的淚膜功能,翼狀胬肉切除聯合角膜緣干細胞移植術對翼狀胬肉復發的研究已有大量報道[9-12],但對于翼狀胬肉合并糖尿癥患者術后淚膜功能的長期隨訪研究還未見報道,可進行進一步的深入研究。
[1]Inoue K,Okugawa K,Amano S,et al.Blinking and superficial punctate keratopathy in patients with diabetes mellitus. Eye(Lond),2005,19(4):418-421.
[2]Rolando M,Baldi F,Calabria G.Tear mucus crystallization in children with cystic fibrosis.Ophthalmologica,1988,197(4):202-206.
[3]Xu KP,Yagi Y,Toda I,et al.Tear function index.A new measure of dry eye.Arch Ophthalmol,1995,113(1):84-88.
[4]Hill JC,Maske R.Pathogenesis of pterygium.Eye(Lond),1989,3(Pt 2):218-226.
[5]謝懷林,林育華,王善潔,等.Graves病患者淚膜功能研究.中國醫師進修雜志,2008,31(5 c):10-12.
[6]Kheirkhah A,Hashemi H,Adelpour M,et al.Randomized trial of pterygium surgery with mitomycin C application usingconjunctival autograftversus conjunctival-limbalautograft. Ophthalmology,2012,119(2):227-232.
[7]袁潔,郝卓建,蔡欣,等.翼狀胬肉旋轉撕脫聯合自體角膜緣干細胞移植的臨床研究.中國醫師進修雜志,2009,32(3):53-55.
[8]李淑珍.翼狀胬肉顯微逆行切除聯合自體角膜緣干細胞移植術.中國醫師進修雜志,2010,33(24):27-28.
[9]Gris O,Güell JL,del Campo Z.Limbal-conjunctival autograft transplantation for the treatment of recurrentpterygium.Ophthalmology,2000,107(2):270-273.
[10]Nieuwendaal CP,van der Meulen IJ,Mourits M,et al.Long-term follow-up of pterygium surgery using a conjunctival autograft andTissucol.Cornea,2011,30(1):34-36.
[11]Marcovich AL,Bahar I,Srinivasan S,et al.Surgical management of pterygium.Int Ophthalmol Clin,2010,50(3):47-61.
[12]Baradaran-Rafii A,Eslani M,Jamali H,et al.Postoperative Complications of Conjunctival Limbal Autograft Surgery.Cornea,2012,10. [Epub ahead of print].