張小喬 李 鸝 陳 敏 霍江濤 潘慶敏 嚴(yán) 潔
與其他中樞神經(jīng)系統(tǒng)(central nervous system,CNS)損傷性疾病一樣,缺血性腦卒中后中樞神經(jīng)難以再生是導(dǎo)致偏癱等嚴(yán)重后遺癥的主要原因,如何促進(jìn)損傷神經(jīng)的再生修復(fù)一直是神經(jīng)科學(xué)研究的熱點(diǎn)和難點(diǎn)。目前的研究表明,造成CNS損傷后缺乏再生能力的主要原因是CNS神經(jīng)元所生存的外部微環(huán)境中存在的髓磷脂相關(guān)抑制物的作用。現(xiàn)已確認(rèn)的中樞神經(jīng)髓鞘來源的主要抑制因子有以下三種:Nogo-A、髓磷脂相關(guān)糖蛋白(MAG)和少突膠質(zhì)細(xì)胞髓磷脂糖蛋白(OMgp),三者在CNS中分別由少突膠質(zhì)細(xì)胞和一些神經(jīng)元產(chǎn)生,存在于髓鞘的內(nèi)外環(huán)和少突膠質(zhì)細(xì)胞的表面,它們具有誘導(dǎo)生長錐塌陷和抑制軸突生長的功能,它們被證實(shí)與相同的神經(jīng)元受體NgR 結(jié)合而介導(dǎo)軸突再生抑制作用[1]。作為三個(gè)結(jié)構(gòu)不同的軸突生長抑制分子的共同受體,NgR 是提高CNS再生能力治療研究方面的重要突破口。本實(shí)驗(yàn)研究擬在制備缺血性腦梗死大鼠模型的基礎(chǔ)上選擇NgR 基因作為治療的靶點(diǎn),利用RNA 干擾(RNA interference,RNAi)技術(shù)下調(diào)NgR 基因的表達(dá),觀察其對(duì)腦梗死大鼠神經(jīng)功能恢復(fù)及皮質(zhì)脊髓束可塑性的影響,為腦缺血后神經(jīng)再生探索一種基于RNA 的藥物治療新途徑。
質(zhì)粒pGenesil(武漢晶賽生物技術(shù)有限公司),生物素化葡聚糖胺(Biotinylated dextran amine,BDA)神 經(jīng) 示 蹤 試 劑 盒(Invitrogen 公 司),兔 抗GAP-43單克隆抗體(1:200稀釋)、山羊抗兔多克隆抗體(1:500稀釋)、兔鏈霉親和素-生物素-過氧化物酶復(fù)合物(strept-avidin-biotin complex,SABC)試劑盒(Sigma,USA),兔抗NgR IgG(Santa Cruz,USA),蛋白質(zhì)marker(Promega 公司),Western blot檢測(cè)試劑盒(Amersham 公司);Olympus光學(xué)顯微鏡,HPIAS-1000型彩色計(jì)算機(jī)圖像分析系統(tǒng),SPSS16.0統(tǒng)計(jì)分析軟件包。
根據(jù)Elbashir等的設(shè)計(jì)原則[2],應(yīng)用BLOCK-iTTMRNAi Designer設(shè)計(jì)軟件設(shè)計(jì)并選取了兩個(gè)分別對(duì)應(yīng)于NgR mRNA(GenBank accession No:NM_053613)序列上468、1392 起始位點(diǎn)的siRNA作用靶序列(1:GCAGTACCTCTACCTACAAGA;2:GGTACTTTGGACAGTGCTTGG)及一個(gè)無 關(guān) 序 列(ACGACTGATACTATGGATACA),經(jīng)BLAST 分析該序列與大鼠其他基因無明顯同源性。化學(xué)合成編碼的shRNA 由21bp及BamHⅠ/HindⅢ位點(diǎn)粘末端堿基等組成的寡聚脫氧核糖核酸模板,連接至質(zhì)粒pGenesil 1中U6啟動(dòng)子下游BamHⅠ/H indⅢ位點(diǎn),酶切鑒定后對(duì)U6啟動(dòng)子區(qū)和克隆序列區(qū)測(cè)序(武漢晶賽生物工程技術(shù)有限公司)。構(gòu)建所得兩種RNA 干擾質(zhì)粒和一種無關(guān)對(duì)照質(zhì)粒分別命名為pNgR-shRNA1、pNgR-shRNA2和pCon。用鑒定正確的質(zhì)粒轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)菌DH5α,挑取單克隆菌落進(jìn)行小量擴(kuò)增提取質(zhì)粒酶切鑒定正確后再行大量擴(kuò)增(堿裂解法),硅藻土柱層析法純化,滅菌TE(pH 8.0)溶解后凍存于-20 ℃?zhèn)溆谩?/p>
Sparague-Dawley健康成年雄性大鼠,由湖北醫(yī)藥學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,體重200~250 g,鼠齡12 W,隨機(jī)取18只大鼠作為正常對(duì)照組,常規(guī)飼養(yǎng)至相應(yīng)時(shí)間點(diǎn)取材。其余大鼠在制作局灶性腦梗死模型后隨機(jī)分為pNgR-shRNA1 組、pNgR-shRNA2組、pCon 組及模型組,每組各18 只。pNgRshRNA1組、pNgR-shRNA2 組、pCon 組 大 鼠 分 別在腦梗死后當(dāng)天大鼠蘇醒后于梗死側(cè)側(cè)腦室注射相應(yīng)的RNA 干擾質(zhì)粒(3 mg/kg),模型組不作處理。
參照Zea Longa線栓法制作大鼠左側(cè)大腦中動(dòng)脈閉塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)腦梗死模型[3]。大鼠腹腔注射10%水合氯醛(350 mg/kg體重)麻醉,仰臥固定于手術(shù)臺(tái)上,經(jīng)頸正中稍偏左切口,分離、暴露左側(cè)頸總動(dòng)脈、頸內(nèi)動(dòng)脈及頸外動(dòng)脈,結(jié)扎頸總動(dòng)脈近段、頸外動(dòng)脈根部及分支,在頸總動(dòng)脈近分叉處剪一小口,經(jīng)此插入直徑0.20 mm頭端圓鈍的漁線,經(jīng)頸總動(dòng)脈分叉處通過頸內(nèi)動(dòng)脈入顱至大腦中動(dòng)脈的起始部以阻斷大腦中動(dòng)脈血流,插入深度為(19.0±0.5)mm,結(jié)扎頸總動(dòng)脈,縫合皮膚。制模成功的標(biāo)準(zhǔn)為大鼠蘇醒后表現(xiàn)為提尾時(shí)右側(cè)前肢內(nèi)收屈曲;同側(cè)Horner征;爬行時(shí)向右劃圈;站立時(shí)右側(cè)傾倒。凡具有上述四項(xiàng)體征者列入研究對(duì)象。
各組大鼠在腦梗死后第1、7、14 d應(yīng)用改良的神經(jīng)功能缺損評(píng)分(modified Neurological Severity Scores,mNSS)方法進(jìn)行神經(jīng)功能評(píng)定[4]。神經(jīng)功能按受損嚴(yán)重程度分為0~18分,0分為正常,18分為最嚴(yán)重神經(jīng)功能缺失。mNSS 根據(jù)一系列的運(yùn)動(dòng)、感覺、反射和平衡試驗(yàn)進(jìn)行評(píng)分。每給1分表明大鼠不能完成規(guī)定的試驗(yàn)或反射,因此評(píng)分越高,表明神經(jīng)功能損害越嚴(yán)重。
各組取6只大鼠在腦梗死后第7d神經(jīng)功能評(píng)定結(jié)束后用過量的10%水合氯醛深度麻醉,開胸經(jīng)左心室插管至升主動(dòng)脈,先用100 ml生理鹽水快速?zèng)_洗血液,接著用4%多聚甲醛PBS 400 ml灌注固定,然后將大鼠斷頭取腦,置4%多聚甲醛中后固定過夜,之后石蠟包埋,行連續(xù)冠狀位切片。取相同層面的標(biāo)本行免疫組化SABC法檢測(cè)GAP-43表達(dá)水平:切片常規(guī)脫蠟至水后加入3%H2O2甲醇溶液,室溫10 min;加入正常山羊血清封閉,室溫20 min;然后分別加入兔抗GAP-43 單克隆抗體,置濕盒4 ℃過夜;生物素標(biāo)記的二抗,室溫10 min;鏈酶親和素-過氧化物酶溶液,室溫10 min;然后滴加新鮮配制的DAB-H2O2顯色液,室溫顯色5~10 min;自來水沖洗,脫水、透明、中性樹膠封片;組織標(biāo)本置光鏡下觀察(放大倍數(shù)10×20)、照像,采用HPIAS-1000圖像分析系統(tǒng)測(cè)定梗死灶周圍頂葉皮質(zhì)陽性表達(dá)物的吸光度值(OD 值);每張切片隨機(jī)取5 個(gè)非重疊視野進(jìn)行測(cè)定然后取其均值。
各組取6只大鼠在腦梗死后第7 d神經(jīng)功能評(píng)定結(jié)束后用過量的10%水合氯醛深度麻醉后快速斷頭取腦,在顯微鏡下用鋒利刀片切取左側(cè)梗死灶周圍頂葉腦組織,勻漿離心后取上清液Bradford法測(cè)定蛋白質(zhì)含量。取20μg樣本經(jīng)SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳后,轉(zhuǎn)印蛋白至(polyvinylidene difluo-ride,PVDF)PVDF膜,脫脂奶粉封閉,加兔抗NgR單克隆抗體或抗β-actin 單克隆抗體(滴度為1∶1000),置4 ℃過夜,加HRP 標(biāo)記的山羊抗兔IgG(滴度為1∶1000),置室溫1 h,曝光顯像,采用凝膠圖像處理系統(tǒng)進(jìn)行掃描拍照,應(yīng)用BandScan V5.0版凝膠圖像軟件分析各目標(biāo)條帶灰度值(A值),以NgR/β-actin表示NgR 相對(duì)水平。
參照季達(dá)峰等報(bào)道的方法[5]。大鼠于腦梗死后第14 d用水合氯醛麻醉,將大鼠頭部固定在立體定位儀上,以前囟為參照點(diǎn),沿矢狀縫作一矢狀中線,分別在前囟中心前1.0mm、前囟中心、前囟中心后1.0mm、前囟中心后2.0mm 水平上,距中線左右各1.5 mm、2.5 mm 分別鉆直徑約0.5 mm 的孔,共8個(gè)孔;將微量注射器固定在立體定向注射儀上,以定位好的孔作為注射點(diǎn),將10% BDA 溶液緩慢注射到每個(gè)孔中,每次劑量0.2μl,每個(gè)孔分別在距大腦皮層表面1.0mm 和2.0mm 處各注射一次;每注射一個(gè)層面等待2 min,再進(jìn)針,第二個(gè)層面注射完畢后,留針5 min,后緩慢退針;注射完畢后用骨蠟封住針眼,縫合頭皮;在大鼠BDA 注射注射2周后灌注取出腦及頸段脊髓,在中腦大腦腳及C1-3水平行連續(xù)冠狀位冰凍切片,片厚30μm;切片入1∶1000抗生物素蛋白-生物素-過氧化物酶復(fù)合溶液(用含0.3%Triton X-100 的0.01 mmol/L PBS 稀 釋)中孵育3 h,DAB 顯色,中性樹膠封片;每只大鼠在大腦腳水平及C1-3水平各取連續(xù)的3張切片在顯微鏡下觀察照像,采用HPIAS圖像分析系統(tǒng)計(jì)數(shù)5 個(gè)非重疊視野中BDA 染色陽性纖維的數(shù)目并取其平均值。
腦梗死后第1d,pNgR-shRNA1 組、pNgRshRNA2組、pCon 組及模型組mNSS 評(píng)分無明顯差異(P>0.05)。腦梗死后第7、14 d,pNgR-shRNA1組、pNgR-shRNA2 組mNSS評(píng)分明顯低于pCon組及模型組(P<0.05),而pCon組及模型組mNSS評(píng)分無明顯差異(P>0.05)(圖1)。

圖1 神經(jīng)功能缺損評(píng)定 各組與pCon組及模型組比較,#P<0.05,△P<0.05
各組大鼠梗死周邊區(qū)大腦皮質(zhì)均可見GAP-43陽性表達(dá)細(xì)胞,其表達(dá)位于細(xì)胞胞漿,呈細(xì)顆粒狀。雖與正常對(duì)照組相比,腦梗死各組表達(dá)水平均有明顯增高(P<0.05),但是與pCon組及模型組相比,pNgR-shRNA1組、pNgR-shRNA2 組 梗 死 灶 周 圍腦組織GAP-43的表達(dá)進(jìn)一步增強(qiáng),差異明顯(P<0.05)(表1及圖3)。
表1 各組大鼠腦梗死周邊區(qū)大腦皮質(zhì)GAP-43的表達(dá)(±s,OD 值)及NgR 相對(duì)表達(dá)量(±s,NgR/β-actin)

表1 各組大鼠腦梗死周邊區(qū)大腦皮質(zhì)GAP-43的表達(dá)(±s,OD 值)及NgR 相對(duì)表達(dá)量(±s,NgR/β-actin)
注:與模型組及pCon 組比較,△P<0.05,▲P<0.05;與模型組比較,#P>0.05;與正常對(duì)照組比較,▽P<0.05,*P<0.05
組別 n GAP-43表達(dá)水平NgR/β-actin表達(dá)水平正常對(duì)照組 6 0.13±0.011 0.14±0.036模型組 6 0.32±0.024* 0.41±0.058*pCon組 6 0.29±0.022#▽ 0.42±0.065#▽pNgR-shRNA1組 6 0.45±0.031△ 0.26±0.043△pNgR-shRNA2組 6 0.43±0.040▲ 0.24±0.039▲
模型組及pCon組梗死周邊區(qū)大腦皮質(zhì)均可見一定水平的NgR 表達(dá),較正常對(duì)照組增高(P<0.05)。與模型組及pCon 組相比,pNgR-shRNA1組、pNgR-shRNA2 組NgR表達(dá)明顯降低(P<0.05)(表1及圖5)。
各組大鼠在病變側(cè)大腦腳水平及病變對(duì)側(cè)C1-3水平脊髓均可見BDA 染色陽性纖維,與正常對(duì)照組相比,其他各組陽性纖維的數(shù)目明顯減少(P<0.05)。與模型組及pCon 組相比,pNgR-shRNA1組、pNgR-shRNA2組大腦腳水平及C1-3水平BDA染色陽性纖維的數(shù)目明顯增多(P<0.05)。同時(shí)觀察 發(fā) 現(xiàn)pNgR-shRNA1 組、pNgR-shRNA2 組經(jīng)健側(cè)發(fā)出跨過中線的側(cè)枝神經(jīng)纖維也較模型組及pCon組明顯增加(圖2及圖4)。

圖2 各組大鼠BDA 皮質(zhì)脊髓束順行示蹤 各組與pCon組及模型組比較,P<0.05
在針對(duì)CNS損傷后髓磷脂相關(guān)抑制物的研究中目前主要通過應(yīng)用Nogo-A 抗體NI-l、髓磷脂或cDNA 疫苗、抗NgR 競(jìng)爭(zhēng)性肽段等。國外相繼有多位學(xué)者通過立體定向腦內(nèi)注射或鞘內(nèi)注射的方式將NI-l應(yīng)用到腦缺血大鼠的體內(nèi),結(jié)果表明接受治療的大鼠神經(jīng)功能有明顯恢復(fù),皮質(zhì)脊髓束傳導(dǎo)纖維有明顯的再生及發(fā)生可塑性調(diào)節(jié)[6,7]。另有研究顯示,應(yīng)用一種NgR 受體拮抗劑NEP1-40 能夠阻止其與Nogo-A 結(jié)合,NgR 不能被激活,于是發(fā)現(xiàn)軸突損傷減輕,再生增強(qiáng)[8]。這些中和性抗體或競(jìng)爭(zhēng)性肽雖然不同程度上對(duì)抗了髓磷脂相關(guān)抑制因子的作用,促進(jìn)軸索再生,但NI-1只能阻斷Nogo的軸突生長抑制作用,髓磷脂或cDNA 疫苗難以通過血腦屏障到達(dá)損傷局部,而且應(yīng)用Nogo-A 抗體或髓磷脂疫苗治療不能阻斷Nogo、MAG、OMgp等所有抑制分子的作用。盡管分子途徑的NgR 抗體或抗NgR 競(jìng)爭(zhēng)性肽段封閉Nogo蛋白與NgR 的結(jié)合,可能同時(shí)減輕這三個(gè)髓磷脂相關(guān)抑制因子的作用,但因其易受環(huán)境因素的影響,且肽段到達(dá)損傷部位的效率不高、作用時(shí)間短暫而限制了其在包括腦缺血在內(nèi)的中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷疾病中的實(shí)際應(yīng)用。RNAi是由雙鏈RNA 介導(dǎo)的、在轉(zhuǎn)錄后mRNA 水平關(guān)閉相應(yīng)序列基因表達(dá)的過程。在此過程中,基因可以進(jìn)行正常轉(zhuǎn)錄,但不能正常積累mRNA,從而使基因在轉(zhuǎn)錄后mRNA 水平失活。通過RNAi技術(shù)直接沉默相關(guān)基因的表達(dá)來克服神經(jīng)再生抑制因子的作用無疑是一種合理的選擇。Zubair Ahmed等的研究證實(shí)對(duì)體外培養(yǎng)的背根神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元采用RNAi技術(shù)能有效沉默NgR、p75NTR及Rho-A mRNA,和對(duì)照組相比,其蛋白的表達(dá)分別下降100%、70%、和100%,上述基因沉默后背根神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元軸突再生明顯增強(qiáng)[9]。本研究結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染RNAi質(zhì)粒組腦梗死大鼠NgR 表達(dá)明顯降低,提示抑制NgR 表達(dá)的RNA 干擾作用是成功和有效的。有研究結(jié)果表明,局灶性腦梗死后6 h,Nogo-A及NgR 的表達(dá)即開始升高,24 h達(dá)到高峰,持續(xù)7 d左右逐漸恢復(fù)到基礎(chǔ)水平[10]。本研究選擇在大鼠腦梗死蘇醒后即注射RNA 干擾質(zhì)粒,考慮在此時(shí)間段進(jìn)行干預(yù),其效果最佳。

圖3 各組大鼠腦梗死周邊區(qū)大腦皮質(zhì)GAP-43表達(dá)水平(SABC×200倍)

圖4 各組病變側(cè)大腦腳水平及病變對(duì)側(cè)C1-3水平脊髓BDA 染色陽性纖維數(shù)(×400倍)

圖5 Western blot檢測(cè)各組大鼠梗死周邊區(qū)大腦皮質(zhì)NgR 表達(dá)水平 A 為正常對(duì)照組;B為模型組;C 為pCon組;D 為pNgR-shRNA1 組;E 為pNgR-shRNA2組
腦梗死后神經(jīng)重塑是其功能恢復(fù)的重要機(jī)制,而神經(jīng)再生是其重塑的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ)之一。神經(jīng)再生主要是軸突再生,即受損的軸突重新芽生,或周圍未受損的軸突發(fā)芽,實(shí)現(xiàn)重新支配;或者樹突分支增加、延長,可以提供更多接觸面重建軸-樹連接[11]。生長 相 關(guān) 蛋 白43(growth-associated protein 43,GAP-43)是位于神經(jīng)元軸突生長錐中的組織特異性磷酸蛋白,主要作用是啟動(dòng)生長錐的形成,引導(dǎo)、促進(jìn)軸突生長。軸突出芽時(shí)GAP-43的表達(dá)增高,腦梗死后其表達(dá)時(shí)程發(fā)生變化,在24 h開始升高,7 d達(dá)高 峰[12]。本 實(shí) 驗(yàn) 中 發(fā) 現(xiàn)NgR-shRNA1 組、pNgR-shRNA2組梗死灶周圍腦組織GAP-43 表達(dá)明顯增強(qiáng),提示RNA 干擾下調(diào)NgR 的表達(dá)后因缺血受損的神經(jīng)元軸突再生明顯增加,神經(jīng)重塑增強(qiáng)。
腦梗死后皮質(zhì)脊髓束的可塑性變化既包括病側(cè)神經(jīng)纖維再生,也包括健側(cè)發(fā)出側(cè)枝進(jìn)行代償。本實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)RNA 干擾抑制NgR 表達(dá)的兩組大鼠病變側(cè)BDA 陽性神經(jīng)纖維數(shù)目明顯增多,且發(fā)現(xiàn)經(jīng)健側(cè)發(fā)出跨過中線的側(cè)枝神經(jīng)纖維也明顯增加,這種皮質(zhì)脊髓束可塑性變化的增強(qiáng)是RNA 干擾抑制NgR 表達(dá)后促進(jìn)神經(jīng)功能恢復(fù)的重要基礎(chǔ)。
1 Liu BP,F(xiàn)ournier AE,GrandPre T,et a1.Myelin-associated glycoprotein as a functional ligand for the Nogo-66 receptor.Science,2002,297(5584):1190-1193.
2 Elbashir SM,Lendeckel W,Tuschl T.RNA interference is mediated by 2-and22-nucleotide RNAs.Genes Dev,2001,15(2):188-200.
3 Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al.Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats.Stroke,1989,20(1):84-91.
4 Wang ZL,Cheng SM,Ma MM.Intranasally delivered bFGF enhances neurogenesis in adult rats following cerebral ischemia.Neurosci Lett,2008,446(1):30-35.
5 季達(dá)峰,呂廣明,劉 蘇,等.生物素化葡聚糖胺順行追蹤標(biāo)記大鼠皮質(zhì)脊髓束.南通大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2008,28(5):336-341.
6 Seymour AB,Andrews EM,Tsai SY,et al.Delayed treatment with monoclonal antibody IN-1 1 week after stroke results in recovery of function and corticorubral plasticity in adult rats.J Cereb Blood Flow Metab,2005,25(10):1366-1375.
7 Tsai SY,Markus TM,Andrews EM,et al.Intrathecal treatment with anti-Nogo-A antibody improves functional recovery in adult rats after stroke.Exp Brain Res,2007,182(2):261-266.8 Hunt D,Mason MR,Campbell G,et al.Nogo receptor mRNA expression in intact and regenerating CNS neurons.Mol Cell Neurosci,2002,20(4):537-552.
9 Ahmed Z,Dent RG,Suggate EL,et al.Disinhibition of neurotrophin-induced dorsal root ganglion cell neurite outgrowth on CNS myelin by siRNA-mediated knockdown of NgR,p75NTR and Rho-A.Mol Cell Neurosci,2005,28(3):509-523.
10 Jiang W,Xia F,Han J,et al.Patterns of Nogo-A,NgR,and RhoA expression in the brain tissues of rats with focal cerebral infarction.Transl Res,2009,154(1):40-48.
11 Ueno Y,Chopp M,Zhang L,et al.Axonal outgrowth and dendritic plasticity in the cortical peri-infarct area after experimental stroke.Stroke,2012,43(8):2221-2228.
12 Gregersen R,Christensen T,Lehrmann E,et al.Focal cerebral ischemia induces increased myelin basic protein and growth-associated protein-43 gene transcription in peri-infarct areas in the rat brain.Exp Brain Res,2001,138(3):384-392.