白慧麗, 李寶林, 何 方, 張汝益, 嚴樹涓, 劉 晨, 楊丹丹, 施 瓊
(重慶醫(yī)科大學(xué)檢驗醫(yī)學(xué)院臨床檢驗診斷學(xué)教育部重點實驗室,重慶400016)
肝癌是世界上癌癥死亡的三大原因之一,在我國居于第二位。肝癌預(yù)后差的主要原因是門靜脈侵襲引起的高發(fā)肝內(nèi)轉(zhuǎn)移[1],因此,控制肝癌轉(zhuǎn)移是改善病人預(yù)后的重要課題。而早在100多年以前,學(xué)者[2]基于乳腺癌的器官特異性轉(zhuǎn)移中的臨床觀察,提出了著名的“種子與土壤”學(xué)說,該學(xué)說證實了腫瘤發(fā)生發(fā)展及轉(zhuǎn)移的整個過程都與其所處的微環(huán)境密切相關(guān)。
骨髓基質(zhì)細胞(marrow stromal cells,MSCs)也被稱為間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells,MSCs)[3],是腫瘤基質(zhì)的重要組成成分,在體內(nèi)可以通過分泌多種生長因子來影響腫瘤的生長,其中趨化因子CCL5即受激活調(diào)節(jié)的正常T細胞表達和分泌因子(regulated upon activation,normal T-cell expressed and secreted,RANTES),是 T細胞和單核細胞的CC類趨化細胞因子,其受體有CCR1、CCR3和CCR5。大量研究表明MSCs可以刺激腫瘤細胞分泌CCL5。Stormes等[4]認為高表達 CCL5的腫瘤細胞具有更強的轉(zhuǎn)移能力。CCL5/CCR5在很多實體瘤中已有研究,包括乳腺癌、黑色素瘤、胃癌、卵巢癌、子宮頸癌、結(jié)腸癌、前列腺癌和腎癌等[5]。研究發(fā)現(xiàn)CCL5及其受體CCR1和CCR5在肝纖維化的進展中發(fā)揮很重要作用[6]。MSCs對腫瘤的影響可為促進作用也可為抑制作用,而對肝癌細胞的作用及機制尚未闡明。因此,本研究采用人骨髓基質(zhì)細胞HS-5為研究對象,分別利用HS-5細胞條件培養(yǎng)基 (HS-5 cell-conditioned medium,HS-5-CM)和HS-5細胞處理肝癌細胞SMMC-7721,旨在探討MSCs對肝癌細胞的作用和機制,以及腫瘤微環(huán)境中趨化因子CCL5及其受體分泌的變化,為臨床應(yīng)用提供更廣闊的空間。
1.1 細胞株 人肝癌細胞株SMMC-7721和人正常肝細胞株LO2由重慶醫(yī)科大學(xué)臨床檢驗診斷學(xué)教育部重點實驗室前期保存?zhèn)溆茫斯撬杌|(zhì)細胞株HS-5購自ATCC。
1.2 主要試劑 DMEM高糖培養(yǎng)基和胎牛血清購自HyClone;逆轉(zhuǎn)錄PCR和定量PCR SYBR Premix Ex Taq購自TaKaRa;引物由TaKaRa合成;MTT試劑、基質(zhì)膠購自Sigma;Human CCL5 ELISA檢測試劑盒購自RayBio;Western blotting及蛋白質(zhì)提取相關(guān)試劑購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;PI3K特異性抑制劑LY294002、抗Akt抗體和抗p-Akt473抗體購自Cell Signaling;抗CCR1、CCR3和CCR5抗體購自Abcam;抗β-actin抗體購自Santa Cruz;Ⅱ抗山羊抗鼠IgG和山羊抗兔IgG購于北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;化學(xué)發(fā)光試劑盒購自Millipore;蘇木精、伊紅等試劑為進口分裝或國產(chǎn)分析純。
2.1 共培養(yǎng)體系的建立 采用具有PET膜的Transwell小室(孔徑為0.4μm)進行間接共培養(yǎng):將HS-5細胞接種于 Transwell小室 1×105cells/well,SMMC-7721細胞接種于6孔板2×105cells/well,待細胞8 h貼壁后,將小室懸掛6孔板上。Control組:SMMC-7721細胞;co-culture組:SMMC-7721細胞+HS-5細胞。2組均更換為雙無DMEM培養(yǎng)基,培養(yǎng)3 d。
2.2 HS-5-CM的制備 將細胞密度為70%的HS-5細胞接種于直徑為10 cm的培養(yǎng)皿中,待貼壁后,PBS洗3次,更換為10 mL無血清的DMEM高糖培養(yǎng)基,每24 h收集1次上清,并更換為新鮮無血清的DMEM高糖培養(yǎng)基,收集3 d,混勻,1 000 r/min離心15 min,取上清配制50%HS-5-CM(HS-5-CM∶無血清DMEM培養(yǎng)基為1∶1)和100%HS-5-CM于 -20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
2.3 MTT檢測HS-5-CM對SMMC-7721細胞增殖能力的影響 SMMC-7721細胞以500 cells/well接種于96孔板中,每組6個平行孔,待細胞貼壁后PBS洗3次,加入無血清培養(yǎng)液100μL,control組:SMMC-7721細胞;50%HS-5-CM組:SMMC-7721細胞 +50%HS-5-CM;100%HS-5-CM組:SMMC-7721細胞+100%HS-5-CM。分別于 0 d、1 d、2 d、3 d 對SMMC-7721細胞進行 MTT檢測,每孔加入20μL MTT(5.0 g/L),繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸盡孔內(nèi)培養(yǎng)液,加入150μL/well DMSO,輕搖振蕩10 min,使紫色結(jié)晶物充分溶解,于酶標儀492 nm處檢測各孔的吸光度(absorbance,A),重復(fù)3次取平均值。
2.4 劃痕實驗檢測HS-5-CM對SMMC-7721細胞遷移能力的影響 SMMC-7721細胞以2×105cells/well接種于6孔板中,細胞密度達到90%時,用0.5 mm中性筆尖行“一”字劃痕,PBS洗3次,更換為含不同濃度HS-5-CM完全培養(yǎng)基2 mL,倒置顯微鏡下觀察照相,此時記為0 h;37℃、5%CO2飽和濕度孵箱中繼續(xù)培養(yǎng),48 h時在同一觀察點觀察劃痕愈合情況。實驗分組同上,通過測量多個點劃痕寬度,比較各組的細胞愈合情況,計算平均劃痕愈合率。劃痕愈合率(%)=(0 h劃痕寬度-48 h劃痕寬度)/0 h劃痕寬度×100%,重復(fù)3次取平均值。
2.5 Transwell實驗檢測HS-5-CM對SMMC-7721細胞遷移和侵襲能力的影響 將對數(shù)生長期SMMC-7721細胞制成無血清的單細胞懸液,細胞密度4×107cells/L,取400μL接種在Transwell小室的上室中(做侵襲實驗需要鋪基質(zhì)膠,基質(zhì)膠與預(yù)冷的雙無
DMEM培養(yǎng)基按1∶7的比例鋪設(shè)),下室中加入600 μL含20%血清的培養(yǎng)液。實驗分組同上,24 h后取出小室,用濕棉簽拭去微孔膜上層細胞,無水乙醇固定20 min,蘇木精和伊紅各染色20 min。置于載玻片上在顯微鏡下計數(shù),每個小室至少計數(shù)10個視野,每組3個平行孔,計算均值,實驗重復(fù)3次。
2.6實時熒光定量RT-PCR(qRT-PCR)檢測SMMC-7721細胞中CCL5及其受體mRNA表達 Trizol法提取各組SMMC-7721細胞總RNA,按試劑盒的方法逆轉(zhuǎn)錄,以逆轉(zhuǎn)后的cDNA進行PCR擴增。通過Primer Premier 5軟件設(shè)計引物,引物序列見表1。反應(yīng)體系為:cDNA 2 μL,SyberGreen Mix 10 μL,上、下游引物各0.8 μL,ddH2O 6.4 μL。反應(yīng)條件為:95 ℃ 30 s,95 ℃ 5 s,60℃ 20 s,72℃ 20 s,共40個循環(huán)。所有樣本結(jié)果以GAPDH的表達做相對定量分析。數(shù)據(jù)分析采用比較Ct法(ΔΔCt),相對表達量 =2-ΔΔCt=2-(ΔCtco-culture-ΔCtcontrol)=2-[(Ct co-culture-Ct GAPDH)-(Ct control-Ct GAPDH)]。實 驗 分 組:control組為SMMC-7721細胞;co-culture組為SMMC-7721細胞+HS-5細胞。

表1 擴增基因引物序列Table 1.The sequences of PCR primers for each gene
2.7 ELISA測定SMMC-7721細胞培養(yǎng)液中CCL5蛋白表達水平 收集各組SMMC-7721細胞培養(yǎng)上清,收集上清24 h前終止共培養(yǎng)并更換為新鮮無血清培養(yǎng)基,1 000 r/min離心15 min,收集上清液,按照Human CCL5 ELISA試劑盒說明書進行操作,450 nm處檢測各孔吸光度值(A),使用Curve Expert軟件根據(jù)標準曲線計算各組細胞中CCL5表達水平。數(shù)據(jù)取3次重復(fù)的平均值。
2.8 Western blotting測定 共培養(yǎng) 3 d后,提取SMMC-7721細胞總蛋白,BCA法檢測蛋白濃度。取200μg蛋白質(zhì)樣品,與5×上樣緩沖液混合,沸水煮8 min變性,經(jīng) SDS-PAGE、轉(zhuǎn)膜、封閉。加入Ⅰ抗(1∶1 000),4 ℃ 孵 育 過 夜,洗 膜,加 入 Ⅱ 抗(1∶5 000),37 ℃孵育1 h,洗膜,化學(xué)發(fā)光顯影,以 βactin作為內(nèi)參照進行吸光度分析,實驗重復(fù)3次。
數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,采用t檢驗比較兩組間差異的顯著性,兩組以上比較采用單因素方差分析。采用SSPS 16.0統(tǒng)計軟件分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
MTT結(jié)果顯示,細胞培養(yǎng)第1天、第2天時50%HS-5-CM和100%HS-5-CM組A492值較control組增加不明顯;第3天時50%HS-5-CM和100%HS-5-CM組A492值較control組分別增加12.43%(P>0.05)和43.29%(P<0.05),見圖1。這說明HS-5-CM可以促進SMMC-7721細胞的增殖能力。

Figure 1.Effects of HS-5-CM on the proliferation of SMMC-7721 cells measured by MTT assay.Mean ± SD.n=3.*P <0.05 vs control group.圖1 MTT測定HS-5-CM對SMMC-7721細胞增殖的影響
劃痕實驗結(jié)果顯示,50%HS-5-CM組和100%HS-5-CM組的細胞劃痕在48 h愈合率分別是65.35% ±2.46%和88.99% ±2.59%,與control組(52.73% ±2.53%)比較差異顯著 (P<0.01),見圖2A。Transwell實驗結(jié)果顯示,control組中 SMMC-7721細胞穿過小室膜的細胞數(shù)為(32±3)個,50%HS-5-CM組和100%HS-5-CM組則分別為(80±4)個和(124±4)個,均較control明顯增加(P<0.01),見圖2B。這說明HS-5-CM明顯促進SMMC-7721細胞的遷移。

Figure 2.Effects of HS-5-CM on the migration of SMMC-7721 cells.A:the migration of SMMC-7721 cells measured by wound-healing assay(×100);B:the migration of SMMC-7721 cells measured by Transwell assay(×150).Mean±SD.n=3.**P <0.01 vs control group.圖2 HS-5-CM對SMMC-7721細胞遷移的影響
Control組中穿過基質(zhì)膠的細胞數(shù)為(45±5)個,50%HS-5-CM組和100%HS-5-CM組則分別為(87±3)個和(110±7)個,100%HS-5-CM組較control組明顯增加(P<0.01),見圖3。這提示 HS-5-CM明顯促進SMMC-7721細胞的侵襲。
qRT-PCR檢測結(jié)果顯示(圖4A),共培養(yǎng)3 d,與control組比,co-culture組 SMMC-7721細胞中 CCL5 mRNA表達增加69.39%(P<0.05);同樣,ELISA方法檢測SMMC-7721細胞上清中CCL5蛋白表達(圖4B),第 1天時 co-culture組較 control組增加4.22%,第2天增加7.84%,第3天增加57.13%(P<0.01),差異有統(tǒng)計學(xué)意義。這表明HS-5細胞可以增加SMMC-7721細胞中CCL5的表達。

Figure 3.Effects of HS-5-CM on the invasion of SMMC-7721 cells measured by Transwell assay(×150).Mean±SD.n=3.**P <0.01 vs control group.圖3 Transwell實驗測定HS-5-CM對SMMC-7721細胞侵襲的影響

Figure 4.The expression of CCL5 mRNA and protein in SMMC-7721 cells after co-cultured with HS-5 cells.A:CCL5 mRNA detected by qRT-PCR;B:CCL5 protein detected by ELISA assay.Mean ± SD.n=3.*P <0.05,**P <0.01 vs control group.圖4 SMMC-7721細胞與HS-5細胞共培養(yǎng)后SMMC-7721細胞中的CCL5 mRNA和蛋白的表達變化
qRT-PCR及Western blotting結(jié)果顯示,共培養(yǎng)3 d,co-culture組與control組相比,CCR1和CCR3 mRNA和蛋白表達變化不大,而CCR5 mRNA表達較control組明顯上升49.95%(P<0.01),蛋白水平較control組增加了1.77倍(P<0.01),見圖5。這說明HS-5細胞能增加SMMC-7721細胞中CCR5 mRNA和蛋白表達。

Figure 5.The expression of CCR1,CCR3 and CCR5 mRNA and proteins in SMMC-7721 cells after co-cultured with HS-5 cells for 3 d.A:CCR1,CCR3 and CCR5 mRNA detected by qRT-PCR;B:CCR1,CCR3 and CCR5 proteins detected by Western blotting.Mean±SD.n=3.**P <0.01 vs control group.圖5 SMMC-7721細胞與HS-5細胞共培養(yǎng)3 d后SMMC-7721細胞中CCR1、CCR3和CCR5 mRNA和蛋白表達變化
Western blotting結(jié)果顯示(圖6A),與control組相比,co-culture組的SMMC-7721細胞總Akt蛋白水平增加 98.68%(P<0.01),p-Akt473增加26.78%(P<0.05),差異有統(tǒng)計學(xué)意義。加入20μmol/L PI3K抑制劑 LY294002處理24 h后,co-culture組SMMC-7721細胞的總Akt和p-Akt473蛋白表達分別減少77.21%(P<0.01)和61.59%(P<0.01);control組 SMMC-7721細胞的 p-Akt473水平減少31.35%(P<0.05),但總Akt的蛋白水平變化不明顯。qRT-PCR(圖6B)和ELISA檢測(圖6C)顯示,LY294002減少了co-culture組 SMMC-7721細胞中CCL5 mRNA(P<0.01)和蛋白表達(P<0.05),但是LY294002對control組CCL5分泌影響不大。
MSCs作為一種新型的基因治療的靶細胞,已廣泛應(yīng)用于解決肝移植、肝細胞移植和人工肝等治療肝源短缺的問題。目前MSCs作為組織工程最有希望的種子細胞,具有多向分化潛能及低免疫源性等特點,而且諸多實驗研究表明MSCs在體內(nèi)外均能被誘導(dǎo)分化為肝細胞[7]。本課題應(yīng)用的HS-5細胞為永生化的人MSCs,解決了原代細胞不易提取、傳代次數(shù)少的問題。大多文獻報道MSCs存在雙向性,在白血病[8]、非霍奇金淋巴瘤[9]研究中 MSCs抑制腫瘤的增殖和發(fā)展,而在乳腺癌[10]、前列腺癌[11]研究中發(fā)現(xiàn)MSCs促進腫瘤生長和轉(zhuǎn)移。本實驗中采用HS-5-CM處理SMMC-7721細胞,發(fā)現(xiàn)HS-5-CM可以促進SMMC-7721細胞增殖、遷移和侵襲的能力,并采用間接共培養(yǎng)的方法,人為構(gòu)建腫瘤微環(huán)境使得MSCs向腫瘤細胞趨化,來驗證HS-5細胞對肝癌細胞SMMC-7721的作用,得出與HS-5-CM相似的結(jié)果。這可能為MSCs主要通過旁分泌細胞因子來誘導(dǎo)肝癌微環(huán)境的變化提供可能性依據(jù)。
有文獻報道MSCs的分布大多聚集在腫瘤部位[12],可能是因為腫瘤細胞可以分泌趨化因子、細胞因子來招募和激活大量的未分化的基質(zhì)細胞,反過來,基質(zhì)細胞也促進腫瘤細胞的侵襲和轉(zhuǎn)移[13]。越來越多的研究表明,趨化因子及其受體在腫瘤的發(fā)生發(fā)展,尤其是腫瘤轉(zhuǎn)移過程中具有重要作用[14]。Aldinucci等[15]證實CCL5/CCR5信號通路不僅能參與調(diào)控霍奇金淋巴瘤細胞的增殖,而且在維持霍奇金淋巴瘤的組織微環(huán)境中也發(fā)揮重要作用。本研究中SMMC-7721細胞的CCL5表達水平較低,共培養(yǎng)后,CCL5 mRNA和蛋白水平均有明顯增加,其受體CCR5也明顯增加。因此我們認為在構(gòu)建的腫瘤微環(huán)境體外模型中,CCL5有可能是通過CCR5起作用的。CCL5被稱為是一個存在于腫瘤細胞和基質(zhì)之間的中介者,而且CCL5也可以增加肝炎病人肝癌的發(fā)生風(fēng)險[16]。此研究中 ELISA測定培養(yǎng)上清中CCL5的表達增加,測定的培養(yǎng)基為終止共培養(yǎng)后的新鮮培養(yǎng)基,可以認為是HS-5細胞介導(dǎo)的微環(huán)境刺激了SMMC-7721細胞自身的CCL5分泌增加,那么HS-5細胞促進肝癌細胞SMMC-7721的侵襲和遷移能力是否與此有關(guān)還有待我們深一步的探討。此外Western blotting顯示,PI3K抑制劑可以抑制共培養(yǎng)后SMMC-7721細胞PI3K-Akt通路的Akt和p-Akt的升高。文獻指出 CCL5 可以激活 Gαi-PI3K-Akt[17],本課題的進一步研究得出PI3K抑制劑下調(diào)了共培養(yǎng)后SMMC-7721細胞CCL5的表達,這說明CCL5的升高在肝癌微環(huán)境中是通過PI3K-Akt通路發(fā)揮作用的。
綜上所述,本研究說明了HS-5細胞可以促進肝癌細胞SMMC-7721的增殖、遷移和侵襲能力,而且可以通過激活PI3K-Akt通路增加SMMC-7721細胞CCL5的分泌,幫助我們進一步研究趨化因子在腫瘤微環(huán)境中的作用提供方向,并為人工肝移植提供理論依據(jù)。

Figure 6.Expression of Akt,p-Akt473 and CCL5 in SMMC-7721 cells treated with PI3K inhibitor LY294002 after co-cultured with HS-5 cells.A:expression of Akt and p-Akt473 proteins detected by Western blotting;B:expression of CCL5 mRNA detected by qRT-PCR;C:secretion of CCL5 protein detected by ELISA assay.Mean±SD.n=3.#P<0.05,##P<0.01 vs control group;*P <0.05,** P <0.01 vs co-culture group.圖6 PI3K抑制劑LY294002對共培養(yǎng)后SMMC-7721的Akt、p-Akt473和CCL5表達的影響