卡波肉瘤相關皰疹病毒ORFK12蛋白初步研究

汪小五，曾憲聰，陳 偉，張 瑩，吳 悅，杜愛能，劉璐璐，王林定

卡波肉瘤相關皰疹病毒ORFK12蛋白初步研究

汪小五，曾憲聰，陳 偉，張 瑩，吳 悅，杜愛能，劉璐璐，王林定

目的研究卡波肉瘤相關皰疹病毒（KSHV）ORFK12基因在大腸桿菌的表達及表達的蛋白在普通人群中檢測KSHV的感染情況。方法設計一對特異性引物，以BCBL-1細胞總DNA為模板，采用PCR方法擴增KSHV ORFK12基因。構建含目的基因的重組質粒命名為PQE-80L-K12和誘導蛋白表達。采用ELISA法和Western blot法篩查臨床收集的血清標本中感染KSHV的情況。結果異丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷（IPTG）誘導后的PQE-80L-K12重組菌經十二烷基硫酸鈉—聚丙烯酰胺凝膠電泳（SDS-PAGE）顯示有一個約10 ku的融合表達蛋白為ORFK12蛋白。采用ELISA法和Western blot法檢測顯示ORFK12蛋白能與KSHV陽性血清反應。結論KSHV ORFK12基因在大腸桿菌中表達，表達的ORFK12蛋白在實驗室檢測感染KSHV有一定的輔助作用。

卡波肉瘤相關皰疹病毒；ORFK12基因；ORFK12蛋白

卡波肉瘤相關皰疹病毒（Kaposi′s sarcoma-associated herpesvirus，KSHV）是由美國哥倫比亞大學華裔病理學家Chang等于1994年對卡波肉瘤（Kaposi′s sarcoma，KS）組織中特異DNA進行檢測時發現的，是雙鏈DNA病毒［1－2］。經研究［3］顯示KSHV是KS、原發滲液性淋巴瘤（primary effusion lymphoma，PEL）、多中心卡斯特慢病（multicentric Castleman disease，MCD）的病原體。K12基因編碼的蛋白被稱為卡波濟蛋白，它是KSHV感染潛伏期所特有的蛋白［4］，幾乎在所有的KS紡錘樣細胞和潛伏感染的原發滲液性淋巴瘤細胞中表達［5］。筆者通過對KSHV K12基因進行基因擴增，誘導其表達，表達蛋白檢測與血清的反應情況，為研究KSHV的致病機制提供實驗依據。

1 材料與方法

1.1 材料來源細胞系BCBL-1、表達載體PQE-80L質粒、宿主大腸桿菌DH5a、BL21（DE3）為本實驗室保存；pEASY-T1 simple cloning kit購自北京全式金生物技術有限公司；Ni-NTA購自美國GE公司。

1.2 工具酶和試劑BamHⅠ、SalⅠ購自美國Fermentas公司；質粒小抽提取試劑盒購自美國Axygen有限公司；PVDF膜購自美國Bio-Rad公司；辣根過氧化物酶（HRP）標記山羊抗人IgG抗體、堿性磷酸酶（ALP）標記的山羊抗人IgG購自武漢博士德生物工程有限公司。

1.3 重組T質粒的構建和重組質粒PQE80-L-K12的構建及表達與純化

1.3.1 PCR引物的設計與合成 參照NCBI上的K12序列設計引物如下，上游引物：5′-TTGGATCCATGGATAGAGGCTTAACG-3′；下游引物：5′-TTGTCGACTTAGTGCGCGCCCGTTGC-3′（下劃線部分分別為BamHⅠ、SalⅠ的酶切位點），以BCBL-1細胞總DNA為模板，按照設計好的K12序列的上、下游引物送至上海生工生物公司合成。PCR反應條件：95℃變性5 min，然后94℃1 min，50℃30 s，72℃1 min熱循環35次，最后72℃延伸10 min。PCR產物經1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定，大小正確，用膠回收試劑盒切膠回收PCR產物。

1.3.2 重組T質粒的構建 切膠回收的PCR產物PCR-K12與pEASY-T1載體用T4連接酶16℃連接過夜，連接產物轉化大腸桿菌DH5a感受態細胞，鋪板于氨芐（Amp）抗性的LB培養基平板上（鋪板前在LB培養基平板上均勻涂布8 μl的500 mmol／L IPTG和40 μl的20 mg／ml半乳糖苷酶（X-gal）混合液，用于藍白斑篩選），置于37℃恒溫培養箱倒置培養過夜。次日挑取白斑單菌落轉接于3 ml含Amp的LB培養基上37℃恒溫搖床200 r／min培養過夜后提取質粒，用BamHⅠ、SalⅠ做雙酶切鑒定。酶切正確的重組T質粒做基因測序進一步鑒定。

1.3.3 重組質粒PQE-80L-K12的構建 PQE-80L表達載體和測序正確重組T質粒用BamHⅠ、SalⅠ同時做雙酶切，回收雙酶切后的PQE-80L的載體和目的基因ORFK12用T4連接酶連接。連接產物轉化大腸桿菌BL21感受態細胞，其后的構建過程如構建重組T質粒過程一樣，同樣提取質粒做雙酶切和測序鑒定。

1.3.4 目的蛋白誘導表達及表達蛋白純化 經鑒定的重組PQE-80L-K12轉化菌接種于3 ml含有Amp青霉素的LB液體培養基中，置于37℃恒溫搖床200 r／min培養過夜后。將過夜培養物取60 μl轉入3 ml含Amp青霉素的LB液體培養基中（轉種比例1∶50），培養3 h后，取出1 ml培養物作為誘導前樣品后，按1∶1 000比例加入IPTG誘導劑，其終濃度為1 mmol／L。37℃、200 r／min搖床繼續培養8 h，再取1 ml培養物作為誘導后的樣品。誘導前樣本和誘導后樣本SDS-PAGE電泳分析蛋白表達情況，確認蛋白已表達后，次日擴大培養（500 ml LB培養液）。

表達蛋白制備：收集擴大培養的表達菌體（500 ml LB培養液），在4℃、7 000 r／min離心15 min，棄上清液，用100 ml裂解緩沖液（非變性）裂解沉淀，蛋白酶抑制劑PMSF至終濃度為1 mmol／ml，加入溶菌酶至終濃度1 mg／ml。冰上放置40 min。用超聲波細胞破碎儀破碎細胞，功率300 W，超聲3 s間隔10 s，破碎3次。于4℃以8 000 r／min離心15 min之后，用滅菌的移液槍將上清液移至50 ml的離心管里，再用0.45 μm的濾膜過濾即為上清粗蛋白，留下的沉淀加50 ml變性的裂解緩沖液室溫溶解，8 000 r／min離心15 min后取上清液并且用0.45 μm的濾膜過濾后即為包涵體粗蛋白。10 μl的上清粗蛋白和10 μl的包涵體粗蛋白樣品經SDSPAGE電泳確定目的蛋白的表達位置。

用10倍柱體積的超純水清洗柱子，將已預處理好的Ni-NTA懸浮液混勻填裝柱子，體積約1.5 ml。將包涵體蛋白樣品或者上清蛋白樣品經過Ni-NTA柱進行純化。依次用5倍柱體積的裂解緩沖液，5倍柱體積的洗脫緩沖液過柱，洗脫雜蛋白。最后用5倍柱體積的洗脫液緩沖液洗脫吸附在Ni柱中的目的蛋白，分管收集樣品。純化的蛋白經SDSPAGE電泳鑒定。

1.4 ELISA法篩查臨床血清標本包被：上述純化的含目的蛋白樣品用pH 9.6的包被緩沖液稀釋到1 ng／μl，將其作為抗原，在96孔酶標板中加入50 μl，4℃包被過夜；洗板：PBS-T洗板5次；封閉：每孔加入250 μl含5%脫脂奶粉和1%山羊血清的PBS溶液，37℃孵育1 h；洗板：PBS-T洗板5次；第一抗體結合：利用本實驗室制備的KSVH ORF65、ORF73 和ORFK8.1蛋白作為抗原從蚌埠地區普通人群血清中篩選的KSHV陽性，陰性血清（包括32份陽性和32份陰性）作為一抗，其血清按1∶100比例稀釋，每孔加入50 μl，37℃孵育1 h；洗板：PBS-T洗板5次；第二抗體結合：采用AP標記的山羊抗人的抗體作為二抗，按1∶2 000比例每孔加入50 μl，37℃孵育1 h；洗板：PBS-T洗板5次；顯色：以p-NPP作為顯色劑，用顯色緩沖液稀釋到1 mg／ml后每孔加入50 μl，37℃孵育15 min，加入3 mol／L NaOH溶液終止反應，用酶標儀測405 nm處的吸光度（optical density，OD）值。每份樣本重復3次。分析純化的目的蛋白與血清里的相應抗體的反應情況。結果判定：以陰性樣品OD值平均值加上5倍標準差（standard deviation，STD）為Cut-Off值。樣品OD值高于Cut-Off值則認為該血清與ORFK12基因表達的蛋白有反應。有反應的陽性血清和無反應的陰性血清用于Western blot實驗進一步確認其與血清的反應情況。

1.5 Western blot法鑒定ORFK12蛋白與血清的反應性純化了的目的蛋白經SDS-PAGE分離后轉移至PVDF膜上，PVDF膜放在封閉液中封閉2 h，與1∶100稀釋的從以上利用ELISA法篩選出的10份有反應的陽性血清和無反應的陰性血清隨機各取3份作為一抗4℃孵育過夜。再與HRP標記的山羊抗人IgG抗體（1∶20 000）室溫孵育1 h，將化學發光底物試劑加至PVDF膜上。把X線片覆蓋在膜上壓緊曝光，拍照觀察結果。

2 結果

2.1 KSHV ORFK12基因PCR擴增PCR擴增產物在1%瓊脂糖凝膠上出現了約183 bp大小的條帶，與預期的183 bp擴增片段大小一致。見圖1A。

2.2 重組T質粒酶切和測序鑒定重組轉化菌經LB液體培養基過夜培養后提取質粒。質粒用BamHⅠ、SalⅠ做雙酶切后經1%瓊脂糖凝膠電泳，在瓊脂糖凝膠上出現兩條特異性條帶，其中一條約為5 100 bp，還有一條約為183 bp，證明KSHV ORFK12基因已經與T載體連接成功。酶切有目的條帶的重組T質粒拿到公司進行測序，測序結果正確。見圖1B。

2.3 重組PQE-80L-K12質粒酶切和測序鑒定提取重組質粒，同樣用BamHⅠ、SalⅠ做雙酶切后經瓊脂糖凝膠電泳驗證，結果出現其中一條約為5 000 bp，還有一條約為183 bp，證明KSHV ORFK12基因已經PQE-80L表達載體連接成功。酶切有目的條帶的重組質粒拿到公司進行測序，測序結果正確。見圖1C。

圖1 ORFK12目的基因PCR擴增和重組質粒雙酶切鑒定

2.4 轉化、誘導及純化含目的基因KSHV ORFK12基因的表達質粒轉化到BL21受體菌中，經終濃度1 mmol／L IPTG誘導后，SDS-PAGE電泳鑒定，重組蛋白以包涵體形式表達。包涵體經0.45 μm的濾膜濾過后的包涵體粗蛋白經過Ni親和層析填料純化后得到了約10 ku的蛋白，箭頭處指的是表達的目的蛋白ORFK12蛋白。見圖2。

圖2 KSHV ORFK12蛋白的表達與純化

2.5 ELISA法篩查臨床血清情況以純化的蛋白作為抗原，采用ELISA法檢測64份血清樣本中KSHV感染情況的檢測，結果發現32份陽性血清中有10份檢測后OD值高于臨界值（Cut-Off值為0.705），32份陰性血清經檢測后OD值低于Cut-Off值。

2.6 Western blot鑒定ORFK12蛋白與血清的反應性純化的目的蛋白經SDS-PAGE分離后轉移至PVDF膜上，進行Western blot鑒定，純化的蛋白與KSHV陽性血清有反應印跡，與KSHV陰性血清沒有反應印跡，初步證明KSHV ORFK12基因表達蛋白與血清中相應抗體有反應性。見圖3。

圖3 Western blot檢測ORFK12蛋白與KSHV＋和KSHV-血清

3 討論

KSHV又稱人類皰疹病毒8型病毒，屬于γ皰疹病毒亞科，是雙鏈DNA病毒［6］。KSHV在部分非洲和歐洲尤其是意大利和南部地中海國家比較常見。目前我國對KSHV的研究才開始不久，有研究［7］表明新疆地區經典型KS的發病率較高，而其他地區和民族的KS病例則比較罕見。KS是一種在感染AIDS患者中常見的腫瘤，致病機制很復雜［4］。KSHV的研究已經有不少報道如ORFK8.1基因、ORFK73基因［1，8-10］。針對于KSHV編碼的蛋白可以分為潛伏感染相關蛋白和裂解感染相關蛋白［11］。

筆者通過PCR技術、ELISA法和Wersten blot法［1］構建含有目的基因的T載體和PQE-80L表達載體并檢測了重組蛋白與血清抗體反應情況。利用KSHV ORF65、ORF73和ORFK8.1蛋白為抗原從蚌埠地區普通人群血清中篩查出陽性血清和陰性血清各32份。以ORFK12蛋白為抗原，用ELISA法篩查此64份血清，待測樣品OD值高于Cut-Off值則判定為陽性，結果在32份經KSHV ORF65、ORF73和ORFK8.1蛋白為抗原篩查出的陽性血清中有10份的陽性血清OD值高于Cut-Off值即有反應，其中有22份沒有反應，即用ORFK12基因表達的蛋白從普通人群中篩選出KSHV陽性血清明顯有漏檢情況［7］，說明ORFK12蛋白為抗原ELISA法篩查普通人群KSHV感染的靈敏度低。而經KSHV ORF65、ORF73和ORFK8.1蛋白為抗原篩查出的32份陰性血清OD值都低于Cut-Off值，這說明ORFK12蛋白為抗原的ELISA法篩查普通人群感染KSHV特異性很強。ORFK12蛋白雖然用于流行病調查存在一定的局限性，不足以用于KSHV的檢測，但可以作為輔助檢查，因為其ELISA的特異性良好。ORFK12基因編碼的蛋白是潛伏期感染相關蛋白，有研究［12］表明ORFK12基因是誘導腫瘤形成的基因，卡波齊蛋白在90%艾滋病患者的KS中都表達，KSHV K12的表達對于KS發病具有較強的特異性。該研究通過驗證ORFK12基因能夠成功表達ORFK12蛋白，而且確定該蛋白與血清相應抗體有反應，為KSHV致病機制的研究提供了一定依據。

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Preliminary study of Kaposi′s sarcoma-associated herpesvirus ORFK12 protein

Wang Xiaowu，Zeng Xiancong，Chen Wei，et al
（Dept of Microbiology，Anhui Medical University，Hefei 230032）

ObjectiveTo study the expression of ORFK12 gene of KSHV in E.coli and obtain KSHV seroprevalence in the general population in using the expressed protein.MethodsA pair of primers was designed to amplify ORFK12 gene by PCR，using the total DNA of BCBL-1 cells as template.Recombinant plasmid with the target gene was named PQE-80L-K12 and induced to express.In this study，antibodies to one protein of KSHV （ORFK12）were tested by indirect ELISA and Western blot.ResultsAfter using IPTG to induce express，PQE-80L-K12 recombinant bacteria had a fusion of 10 Ku protein by SDS-PAGE electrophoresis.10 specimens were tested.ConclusionIt is preliminarily proved that KSHV ORFK12 gene can express in E.coli，and ORFK12 protein infection KSHV plays certain supplementary role in laboratory tests.

Kaposi′s sarcoma-associated herpesvirus；ORFK12 gene；ORFK12 protein

R 373.4

1000－1492（2014）05－0565－04

2013－11－25接收

國家自然科學基金（編號：81271837）；安徽省教育廳自然科學基金（編號：KJ2012A161）；安徽醫科大學博士科研經費資助項目（編號：XJ200914）

安徽醫科大學微生物學教研室，合肥 230032

汪小五，女，碩士研究生；

王林定，男，教授，碩士生導師，責任作者，E-mail：wanglinding＠ahmu.edu.cn