姚林華 胡奕 鄧中民 張玲 張國新
[摘要] 目的 檢查胃癌組織及癌旁組織中HCCR、pERK及pELK1的表達,探討之間的相關性。 方法 通過免疫組化方法檢測60例胃癌及癌旁組織中HCCR、pERK及pELK1的表達情況。 結果 HCCR、pERK及pELK1在胃癌組織中的陽性表達率分別為75.0%(45/60)、73.3% (44/60)及71.7%(43/60),均高于其在癌旁組織中的表達,差異均有統計學意義(P<0.05)。 結論 HCCR、pERK及 pELK1三者之間具有一定的協調表達率,在腫瘤組織中表達明顯增高,可用來作為胃癌臨床免疫組化的輔助指標。
[關鍵詞] 胃癌;HCCR;pERK;pELK1
[中圖分類號] R735.2 [文獻標識碼] A [文章編號] 1673-9701(2014)24-0001-03
韓國學者KIM首先在人宮頸癌中發現了人宮頸癌基因(human cervical cancer oncogene,HCCR),并在隨后的研究中發現在多系統腫瘤中都有過表達,比如消化系統腫瘤、血液系統惡性腫瘤、生殖系統腫瘤等,人惡性腫瘤的發生、發展被認為有多種機制參與,而癌基因在其中作用較大,相關研究發現HCCR在消化系統腫瘤中的早期肝癌及乳腺癌中高表達[1]。那么研究HCCR在腫瘤細胞中的信號表達調控則非常重要,ERK/MAPK信號通路是目前較為常見的腫瘤調控通路,此次檢測HCCR、pERK及pELK1相關蛋白在胃癌及癌旁組織中的表達,初步評價三者之間是否存在相關性,為更好的研究HCCR表達調控打好基礎。
1 資料與方法
1.1試劑
鼠抗人pERK、pELK1:Cellsiganal公司;鼠抗人HCCR多抗:本實驗制備[2];免疫組化試劑盒購自福州邁新公司。
1.2 組織標本
所需組織標本取自2008年12月~2011年9月在南京醫科大學附屬第一醫院,共60例胃癌組織及其相應的癌旁組織,所有組織經病理證實為胃癌及癌旁未浸潤,年齡39~81歲,平均(61.2±5.7)歲。所有標本均經4%中性甲醛溶液固定,石蠟包埋。
1.3方法
采用免疫組織化學染色SP法,將切好的組織芯片放置在60℃烘烤箱中,使切片緊密結合,約30 min后進行第二步常規二甲苯脫蠟,梯度酒精脫水,滅活內源性過氧化物酶:3%過氧化氫37℃孵育10 min,PBS沖洗3次,每次5 min;后在壓力鍋中加熱至沸騰0.01M檸檬酸鹽緩沖液,以便抗原修復組織芯片,加熱使噴氣持續2 min,后自然冷卻組織芯片,并達20 min 以上,再用冷水沖洗缸子,加快冷卻至室溫。PBS洗3次,每次放置5 min,后放置4℃孵育一抗過夜,鼠抗HCCR(1∶100)、兔抗pERK及pELK1(1∶100),PBS代替一抗作陰性對照;按照免疫組化SP法完善余下操作。DAB顯色5 min左右,三類附有不同一抗的組織芯片在顯微鏡下掌握染色程度,按照不同的DAB染色時間分別用水沖洗終止顯色,并使用蘇木素復染15 s,加入0.1%鹽酸分化。梯度酒精脫水之后,透明,封片,拍照。結果判斷:依照細胞陽性著色程度(抗原含量)可分為:弱陽性(+)為1分;中等陽性(++)為2分;強陽性(+++)為3分。依照陽性細胞數量,可分為:弱陽性(+),指陽性細胞總數25%以下;中等陽性(++),指陽性細胞總數25%~49%;強陽性(+++) ,指陽性細胞總數50%以上。采用積分綜合計量,計算公式為:(+)%×1 +(++)%×2+(+++)%×3;總數值<1.0者為(+),1.0~1.5者為(++),>1.5者為(+++)。
1.4 統計學處理
應用SPSS 11.1軟件處理,計量資料用均數±標準差(x±s)表示;計數資料用率表示,組間比較用χ2檢驗,P< 0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 HCCR、pERK及pELK1蛋白在胃癌組織中的表達
HCCR、pERK及pELK1陽性表達主要位于細胞胞膜和胞漿(圖1)。HCCR在胃癌組織中陽性表達率為75.0%(45/60),而pERK及pELK1陽性表達率分別為73.3%(44/60)及71.7%(43/60),HCCR的表達略高于另外兩項,三者均高于在癌旁組織中的表達(P<0.05)。見表1。
2.2 HCCR、pERK及pELK1表達與患者的臨床特點分析
研究發現入組的胃癌患者中男性明顯多于女性,但pELK1、HCCR、pERK表達與性別無明顯統計學差異。患者的年齡、淋巴結轉移與否、腫瘤細胞的分化程度與三種蛋白的表達陽性率無明顯差異(表2),三種蛋白在腫瘤中同時陽性表達為53.33%(32/60),提示三者之間具有一定程度的協同表達。
3 討論
胃癌是常見的消化道腫瘤,目前在各種腫瘤中發病率最高,尤其在我國西北及東部地區,一般發病年齡在50歲以上,但有年輕化的趨勢,所以研究胃癌的發病機制,特別是胃癌的早期階段特異性指標非常重要。HCCR是新近發現的原癌基因之一,它因首先在人宮頸癌中發現而得名,定位于人染色體12q,其分為HCCR-1和HCCR-2兩種亞型。對于基因的研究主要涉及在腫瘤組織及腫瘤細胞的表達,對于該基因的功能學特點等方面。對HCCR基因序列的研究發現在啟動子區有多個轉錄因子結合區,比如E2F、ELK1、Barx等,我們的前期研究發現EGF能夠使腫瘤細胞中HCCR表達增強,如在胰腺腫瘤細胞中,EGF通過p13K/Akt/mTOR激活HCCR表達,使腫瘤細胞的生物學活性增強,而腫瘤細胞的生物學功能亦加強[3]。而在肝癌細胞中發現,HCCR可以增強腫瘤細胞的增殖及細胞分裂,并且也是通過p13K/Akt通路[4]。一般目前認為腫瘤細胞的應答機制較復雜,往往有幾條通路參與,并都占有一定的地位,而且往往不同腫瘤細胞的發生機制亦有差別,對于EGF促進腫瘤細胞的生物學研究較多,比較經典的有ERK(p42/p44 MAPK)信號通路。ERK(p42/p44 MAPK)信號通路要通過幾種方式傳導:①Ras的激活[5];②Ca2+對受體酪氨酸激酶Ras的激活[6];③蛋白激酶C對ERK通路的活化[7];④G蛋白對ERK的激活[8],ERK1傳導引起細胞分化及增殖的信號。
HCCR過表達能夠抑制P53基因功能的表達,從而達到致腫瘤效應,進一步的研究發現,HCCR綁定蛋白3能夠負向調節p21及Bax,從而影響p53的功能[9]。在早期小細胞肝癌(直徑<2 cm)的診斷上,目前臨床上常規的檢查方法具有一定的局限性,往往造成檢出率較低,而腫瘤的治療關鍵在于早期診斷,早期治療,通過使用HCCR與AFP聯合檢測可以大幅度的提高早期小細胞肝癌的檢出率[10]。在食管癌的檢測中發現,HCCR在腫瘤組織中高表達,生存期的分析發現,HCCR高表達的食管癌患者預后較低表達的患者差,提示HCCR可作為食管癌患者預后分析的指標[11]。
對于HCCR的啟動子區使用生物信息學手段已經找到多種轉錄因子的結合區,如ELK1等,故可以通過免疫組化的方法找到ELK1、HCCR及pERK表達是否存在相關性,進一步的研究如細胞生物學干預,通過阻斷ERK通路是否影響HCCR的表達等,都能夠證實ERK通路在HCCR表達中的作用,而對于HCCR表達調控的詳細研究,有利于揭示該癌基因的真正特點。此次免疫組織化學檢測在胃癌組織中HCCR、pERK及pELK1表達較癌旁組織明顯增高,而且存在一定的相關性,提示HCCR的表達調控可能與ERK/ELK1通路有關,我們將進一步研究該通路調節HCCR表達的分子生物學機制。
[參考文獻]
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(收稿日期:2014-01-22)
HCCR過表達能夠抑制P53基因功能的表達,從而達到致腫瘤效應,進一步的研究發現,HCCR綁定蛋白3能夠負向調節p21及Bax,從而影響p53的功能[9]。在早期小細胞肝癌(直徑<2 cm)的診斷上,目前臨床上常規的檢查方法具有一定的局限性,往往造成檢出率較低,而腫瘤的治療關鍵在于早期診斷,早期治療,通過使用HCCR與AFP聯合檢測可以大幅度的提高早期小細胞肝癌的檢出率[10]。在食管癌的檢測中發現,HCCR在腫瘤組織中高表達,生存期的分析發現,HCCR高表達的食管癌患者預后較低表達的患者差,提示HCCR可作為食管癌患者預后分析的指標[11]。
對于HCCR的啟動子區使用生物信息學手段已經找到多種轉錄因子的結合區,如ELK1等,故可以通過免疫組化的方法找到ELK1、HCCR及pERK表達是否存在相關性,進一步的研究如細胞生物學干預,通過阻斷ERK通路是否影響HCCR的表達等,都能夠證實ERK通路在HCCR表達中的作用,而對于HCCR表達調控的詳細研究,有利于揭示該癌基因的真正特點。此次免疫組織化學檢測在胃癌組織中HCCR、pERK及pELK1表達較癌旁組織明顯增高,而且存在一定的相關性,提示HCCR的表達調控可能與ERK/ELK1通路有關,我們將進一步研究該通路調節HCCR表達的分子生物學機制。
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(收稿日期:2014-01-22)
HCCR過表達能夠抑制P53基因功能的表達,從而達到致腫瘤效應,進一步的研究發現,HCCR綁定蛋白3能夠負向調節p21及Bax,從而影響p53的功能[9]。在早期小細胞肝癌(直徑<2 cm)的診斷上,目前臨床上常規的檢查方法具有一定的局限性,往往造成檢出率較低,而腫瘤的治療關鍵在于早期診斷,早期治療,通過使用HCCR與AFP聯合檢測可以大幅度的提高早期小細胞肝癌的檢出率[10]。在食管癌的檢測中發現,HCCR在腫瘤組織中高表達,生存期的分析發現,HCCR高表達的食管癌患者預后較低表達的患者差,提示HCCR可作為食管癌患者預后分析的指標[11]。
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