朱 丹,張春花,習加喜,梁秋云,劉華鋼*(.廣西醫(yī)科大學,南寧 500;.廣西百色市人民醫(yī)院,百色 5000;.廣西壯族自治區(qū)人民醫(yī)院,南寧 500)
細胞凋亡(apoptosis)或稱程序性細胞死亡(PCD)是受基因控制的一種主動性細胞自殺過程,從形態(tài)學、生化和分子水平上與細胞壞死有明顯的區(qū)別[1]。細胞凋亡是細胞本身主動參與的一種生理性調節(jié)方式,生命有機體在生長發(fā)育過程中離不開細胞的增殖、分化和凋亡,它們相互協(xié)調,共同維持正常有機體的生長平衡,如果平衡被打破,細胞凋亡受抑或過度,且機體不能重新恢復平衡,將會導致某些疾病的發(fā)生,如:腫瘤[2]、艾滋病和動脈粥樣硬化和自身免疫性疾病等。課題組前期對金黃扶正散進行了大量研究,發(fā)現(xiàn)該方可增強免疫抑制小鼠的免疫功能[3-4],同時研究發(fā)現(xiàn),免疫抑制時小鼠的免疫臟器指數(shù)下降,說明免疫抑制時脾臟的淋巴細胞減少。因此,本研究擬采用TUNEL法對金黃扶正散干預的免疫抑制小鼠脾臟組織進行檢測,進一步觀察小鼠脾細胞形態(tài)學的改變并進行探討。
1.1 儀器 光學顯微鏡(DMR)、病理圖像分析儀(Q550)、721型分光光度計(上海精密科學儀器有限公司)、小型染色缸等。
1.2 試藥 金黃扶正散由黃芪、金銀花、大棗、浮小麥組成。制備方法:取金銀花粉碎成細粉,備用,黃芪、浮小麥、大棗加水煎煮2次,每次1.5h,合并煎煮液,濾過,濾液濃縮至相對密度為1.20~1.25(70℃)的清膏,加入金銀花細粉,混勻,烘干,粉碎,分裝(每1g成藥相當于生藥材4.01g)。考馬斯亮藍(南京建成生物工程研究所,批號20110511);乳酸脫氫酶測定試劑盒(南京建成生物工程研究所,批號20110511);酸性磷酸酶測定試劑盒(南京建成生物工程研究所,批號20110514);TUNEL細胞凋亡檢測試劑盒(試劑盒含TdT 10×、熒光素標記的dUTP 1×、標記熒光素抗體的HRP,德國Roch Applied Sci-enc公司);Proteinase K工作溶液;TdT酶反應液;Streptavidin-HRP溶 液;DAB 工 作 液;SSC 溶 液;H2O2;二甲苯;梯度乙醇(體積分數(shù)100%,95%,90%,80%,70%);蘇木素;甲基綠;雙蒸水。
1.3 實驗動物 SPF級昆明種小白鼠60只,雌雄各半,體質量13~15g,廣西醫(yī)科大學動物實驗中心提供,生產(chǎn)許可證號:SCXK(桂)2009-2002。
2.1 動物分組及給藥 取小鼠60只,隨機分成6組,每組10只,分別為:正常對照組(生理鹽水灌胃0.02mL·g-1,連續(xù)10d);環(huán)磷酰胺組(生理鹽水灌胃0.02mL·g-1,連續(xù)10d,同時隔天皮下注射環(huán)磷酰胺30mg·kg-1);陽性對照組(每天灌胃左旋咪唑劑25mg·kg-1,連續(xù)10d,給藥后隔天皮下注射環(huán)磷酰胺30mg·kg-1);金黃扶正散高、中、低劑量組(每天分別灌胃金黃扶正散5.08,2.54和1.27g·kg-1(分別相當于臨床劑量的6,12和24倍),連續(xù)10d,給藥后隔天皮下注射環(huán)磷酰胺30mg·kg-1)。
2.2 乳酸脫氫酶(LDH)和酸性磷酸酶(ACP)活性測定 將脾臟用冰冷的生理鹽水漂洗干凈,放入10mL的離心管內,用移液槍取相當于每個組織質量的19倍冰冷生理鹽水于離心管中,將離心管置于冰浴中充分勻漿,即可制成5%組織勻漿。將勻漿液以3 000r·min-1離心10min,取上清液備用。按LDH、ACP試劑盒說明進行測定。
2.3 TUNEL法檢測細胞凋亡
2.3.1 標本處理 小鼠處理后,取脾,40mL·L-1多聚甲醛固定,常規(guī)脫水,石蠟包埋,切片,采用TUNEL染色法觀察細胞凋亡情況。
2.3.2 實驗操作 將石蠟組織切片置于染色缸中,用二甲苯浸洗2次,每次10min;用梯度乙醇(體積分數(shù)100%,95%,90%,80%,70%)各浸洗1次,每次5min;PBS漂洗2次;用Proteinase K工作液在37°C處理組織15min;PBS漂洗2次;制備TUNEL反應混合液,處理組用50μL TdT+450μL熒光素標記的dUTP液混勻。玻片干后,加50μL TUNEL反應混合液(陰性對照組僅加50μL熒光素標記的dUTP液)于標本上,加蓋玻片或封口膜在37℃暗濕盒中孵育60min。PBS漂洗3次;可以加1滴PBS在熒光顯微鏡下計數(shù)凋亡細胞(激發(fā)光波長為450~500nm,檢測波長為515~565nm);玻片干后加50μL converter-POD于標本上,加蓋玻片或封口膜在37℃暗濕盒中孵育30min。PBS漂洗3次;在組織處加50~100μL DAB底物,反應15~25℃×10min;PBS漂洗3次;拍照后再用蘇木素或甲基綠復染,幾秒后立即用自來水沖洗。梯度酒精脫水、二甲苯透明、中性樹膠封片。
2.3.3 結果觀察 光鏡下觀察正常細胞核被染成藍色,胞核中有棕黃色顆粒者為陽性細胞,即凋亡細胞。可結合凋亡細胞形態(tài)特征來綜合判斷(未染色細胞變小,胞膜完整但出現(xiàn)發(fā)泡現(xiàn)象,晚期出現(xiàn)凋亡小體,貼壁細胞出現(xiàn)鄒縮、變圓、脫落;而染色細胞呈現(xiàn)染色質濃縮、邊緣化,核膜裂解,染色質分割成塊狀/凋亡小體)。凋亡細胞計數(shù)方法:200倍光鏡下計數(shù)5個視野陽性細胞數(shù)目,求其平均值。結合HE染色,選取無細胞壞死的5個視野,用病理圖像分析儀對陽性細胞進行計數(shù),每視野計數(shù)1 000個,以陽性細胞所占百分比為凋亡指數(shù)(apoptosis index,AI),取5個視野AI均值進行統(tǒng)計分析。
2.4 統(tǒng)計學處理 數(shù)據(jù)分析用SPSS16.0統(tǒng)計軟件處理,計量資料以±s表示,組間比較采用方差分析,P<0.05認為差異有統(tǒng)計學意義。
3.1 金黃扶正散對免疫抑制小鼠脾臟組織中LDH和ACP活性的影響 與正常對照組比較,環(huán)磷酰胺組可明顯降低LDH和ACP的活性(P<0.01);給藥后,金黃扶正散低、中、高劑量組可明顯提高免疫抑制小鼠的 LDH 活性和 ACP活性(P<0.01,P<0.05)。見表1。
表1 金黃扶正散對免疫抑制小鼠脾臟組織中LDH和ACP活性的影響Tab.1 Effects of Jinhuangfuzheng Powders on LDH,ACP activitics of spleen in immunosuppressed mice(±s,n=10)

表1 金黃扶正散對免疫抑制小鼠脾臟組織中LDH和ACP活性的影響Tab.1 Effects of Jinhuangfuzheng Powders on LDH,ACP activitics of spleen in immunosuppressed mice(±s,n=10)
注:與對照組比較*P<0.05,**P<0.01;與環(huán)磷酰胺模型組比較△P <0.05,△△P<0.01
組別 劑量/g·kg-1 LDH/U·gprot-1 ACP/U·gprot-1對照 —10 204.5±1 480.5 288.2±37.7環(huán)磷酰胺 — 8 395.6±1 161.7* 239.3±39.9*左旋咪唑 0.025 9 789.3±645.5△△ 304.5±63.8△金黃扶正散 1.27 9 811.5±1 382.7△ 298.7±58.4△金黃扶正數(shù) 2.54 9 663.2±1 285.6△ 323.5±59.6△△金黃扶正數(shù) 5.08 9 454.9±790.4△ 326.0±47.0△△
3.2 脾細胞凋亡形態(tài)學的改變 見圖1。正常對照組脾細胞凋亡細胞數(shù)較少,細胞形態(tài)正常。與正常對照組比較,CTX組可見單個散在分布的凋亡細胞,形成凋亡小體,凋亡細胞胞核著棕黃色或棕褐色,核固縮或染色質濃聚附邊;金黃扶正散高、中劑量組凋亡現(xiàn)象較輕,凋亡細胞較少,金黃扶正散低劑量組凋亡細胞較中、高劑量組多,有散在凋亡小體。
3.3 對凋亡指數(shù)的影響 與正常對照組比較,CTX組凋亡指數(shù)顯著性提高(P<0.05);金黃扶正散中、高劑量組凋亡指數(shù)與CTX組比較顯著性下降(P<0.01,P<0.05)。金黃扶正散低劑量組凋亡指數(shù)與CTX組比較無顯著差異(P>0.05)。見表2。

圖1 實驗各組脾細胞凋亡觀察結果(×400)A.對照組;B.環(huán)磷酰胺組;C.左旋咪唑組;D.金黃扶正散低劑量組;E.金黃扶正散中劑量組;F.金黃扶正散高劑量組Fig.1 The results of spleen cell apoptosis in each group(×400)A.control group;B.CTX group;C.levamisole group;D.Jinhuangfuzheng Powders low group;E.Jinhuangfuzheng Powders middle group;F.Jinhuangfuzheng Powders high group
表2 金黃扶正散對免疫抑制小鼠脾細胞凋亡指數(shù)的影響Tab.2 Influence of Jinhuangfuzheng Powders on apoptosis index in immunosuppressed mice (±s,n=10)

表2 金黃扶正散對免疫抑制小鼠脾細胞凋亡指數(shù)的影響Tab.2 Influence of Jinhuangfuzheng Powders on apoptosis index in immunosuppressed mice (±s,n=10)
注:與對照組比較*P<0.05,**P<0.01;與環(huán)磷酰胺模型組比較△P<0.05,△△P<0.01
組別 劑量/g·kg-1 凋亡指數(shù)(AI)對照 13.20±1.93△環(huán)磷酰胺 21.78±1.22*陽性藥 0.025 13.50±0.97△金黃扶正散 1.27 15.10±0.71金黃扶正散 2.54 13.25±0.90△金黃扶正散 5.08 12.20±0.63△△
乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)是細胞內葡萄糖酵解所必需的酶,其功能是催化乳酸脫氫成為丙酮酸或丙酮酸還原為乳酸,即參與了能量物質的有氧氧化與無氧酵解。LDH活性與巨噬細胞激活的程度相關,是巨噬細胞激活的標志之一[5]。酸性磷酸酶(acid phosphatase,ACP)是高等動物體內巨噬細胞溶酶體酶的標志,在體內直接參與磷酸基團的轉移和代謝,主要存在于人體的肝臟、脾臟、紅細胞、骨髓等部位,酸性磷酸酶活性的高低,反映了巨噬細胞被激活的程度。本研究結果表明,金黃扶正散對免疫抑制狀態(tài)下小鼠脾臟LDH和ACP水平有顯著影響,可明顯改善因免疫抑制而引起的小鼠脾臟酸性LDH和ACP水平的下降,提示金黃扶正散可能通過改善巨噬細胞的活化狀態(tài)提高機體的免疫功能。
末端脫氧核糖核苷酸轉移酶介導的缺口末端標記法技術(Terminal dexynucleotidyl transferase(TdT)-mediated dUTP nick end labeling,TUNEL)是用來檢測組織細胞在凋亡早期過程中細胞核DNA的斷裂情況。其原理是熒光素(fluorescein)標記的dUTP在脫氧核糖核苷酸末端轉移酶(TdT Enzyme)的作用下,可以連接到凋亡細胞中斷裂DNA的3’-OH 末端,并與連接辣根過氧化酶(HRP,horse-radish peroxidase)的熒光素抗體特異性結合,后者又與HRP底物二氨基聯(lián)苯胺(DAB)反應產(chǎn)生很強的顏色反應(呈深棕色),特異準確地定位正在凋亡的細胞,因而在光學顯微鏡下即可觀察凋亡細胞;由于正常的或正在增殖的細胞幾乎沒有DNA斷裂,因而沒有3-OH形成,很少能夠被染色。因此種方法特異性敏感性強,并且可以量化凋亡細胞和動態(tài)觀察凋亡細胞超微結構的變化,成為它應用于凋亡研究的優(yōu)勢所在[6-9]。
細胞凋亡的形態(tài)學特征是判斷細胞凋亡的基礎,形態(tài)特征的發(fā)生與凋亡的細胞內生化變化密切相關[10]。脾臟作為人體重要的外周免疫器官,在機體體液及細胞免疫方面發(fā)揮著重要作用。脾按解剖結構分為白髓及紅髓,白髓由密集的淋巴細胞組成,紅髓由脾索和血竇組成。血液中的病原體及異物經(jīng)血液循環(huán)帶至脾臟,被單核巨噬細胞過濾清除,或降解為抗原分子后,活化T及B細胞,進行特異免疫應答[11]。本實驗中采用TUNEL法檢測小鼠脾臟淋巴細胞的凋亡情況,觀察金黃扶正散對免疫抑制小鼠脾臟的細胞凋亡的作用。與正常對照組比較,CTX組小鼠脾淋巴細胞的凋亡數(shù)目明顯增多,凋亡細胞胞核著棕黃色或棕褐色,核固縮或染色質濃聚附邊,形成凋亡小體,凋亡指數(shù)有顯著性差異。使用金黃扶正散干預后,細胞凋亡數(shù)與模型組相比明顯減少,凋亡小體減少,凋亡現(xiàn)象減輕,能明顯改善免疫抑制小鼠脾細胞凋亡現(xiàn)象,使脾臟淋巴細胞凋亡維持在低水平。
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