許青蓮, 邢亞閣*, 車振明, 蔣 麗, 張麗珠, 蔡義民
(1.西華大學生物工程學院食品生物技術重點實驗室,四川成都 610039;2.日本農業科學國際研究中心,日本筑波 30528686)
嗜酸乳桿菌(Lactobacillus acidophilus)是動物腸道有益微生物之一,可以維持腸道正常菌群的生態平衡,增強機體免疫力,促進消化,合成氨基酸和維生素等。嗜酸乳桿菌還可阻止病原菌對腸道的入侵和定植,防止多種疾病和不良反應的發生,在機體中發揮著重要的生理作用。但是,由于嗜酸乳桿菌對環境因素(氧、水分和高溫)、機械擠壓、熱激以及胃酸等都非常敏感,穩定性較差,極大地限制了它的廣泛應用(趙瑞香,2007)。
微囊化技術是用特殊手段將固體、液體、氣體等物質包埋在一個微小封閉的膠囊內的技術,改變物質的色澤、形狀、耐熱性和儲藏性等(吳曉,2011)。目前,利用微囊化制備技術保護益生菌是國內外研究的熱點之一,它能顯著提高益生菌抗熱、抗壓和抗胃酸能力,使其以活性狀態到達腸道,發揮功效。該技術還能保護益生菌免受噬菌體的侵害,提高其在冷凍干燥過程中的存活,增加貯藏過程中的穩定性(張志焱,2012)。
本研究以多孔淀粉、甘油、葡萄糖、甘露醇四種不同物質作為保護劑,利用真空冷凍干燥技術制成微膠囊,研究這四種不同保護劑對制作微生態制劑的影響,并對其外觀形態和穩定性能等進行了研究。
1.1 主要試驗材料、試劑與儀器 嗜酸乳桿菌,購于中國工業微生物菌種保藏管理中心(CICC 6075);多孔淀粉由遼寧立達生物科技有限公司提供;甘油由常州市無明化工有限公司提供;葡萄糖由常州市金文化工有限公司提供;甘露醇由鄭州康源化工有限公司提供;Heto lyolab3000型冷凍干燥機 (丹麥Heto公司);JSM-7500F掃描電鏡(日本電子株式會社)。
1.2 試驗方法
1.2.1 嗜酸乳桿菌微生態制劑制備工藝 取樣品菌粉1 g,溶于100 mL 2%葡萄糖溶液(已滅菌)中,37℃靜置活化30 min,然后以無菌方式按5%的接種量接種于MRS液體培養基(已滅菌)中,搖勻,(37±1)℃恒溫培養 18 h。將離心后的菌體用滅菌后的生理鹽水適當稀釋,調整活菌濃度至108cfu/mL,以備用。在無菌操作條件下,稱取一定量的保護劑于燒杯中,加入濃度為108cfu/mL菌懸液50 mL,用氫氧化鈉和鹽酸調整pH值為6.0后,在20℃無菌條件下振蕩40 min,至完全吸附,加入2%海藻酸鈉溶液(無菌),攪拌均勻。用膠頭滴管將制作好的保護劑溶液擠入2%的氯化鈣溶液(無菌)中,固化30 min成膜。用3.5%氯化鈣溶液浸泡10 min進行硬化。過濾取得樣品,用清水漂去表面的氯化鈣殘液,再用滅菌的生理鹽水(0.85%)洗滌微膠囊表面菌體。在-40℃的超低溫冰箱中預凍4 h以上,然后在溫度為-58℃的冷凍干燥機進行冷凍干燥24 h,使其水分含量小于3%,即得嗜酸乳桿菌微生態制劑,將凍干后的微膠囊進行真空包裝,在4℃冰箱中保藏。
1.2.2 單因素試驗 多孔淀粉用量對包埋率的影響:配制活菌濃度為108cfu/mL 50 mL的菌液于250 mL燒杯中,調pH為6.0,加入無菌的多孔淀粉作為保護劑,加入量分別為2.0、3.0、4.0、5.0、6.0 g,然后按1.2.1所述工藝制備微生態制劑,分析不同淀粉加入量對包埋率的影響。
葡萄糖用量對包埋率的影響:配制活菌濃度為108cfu/mL 50 mL的菌液于250 mL燒杯中,調pH為6.0,加入無菌的葡萄糖作為保護劑,加入量分別為 2.0、3.0、4.0、5.0、6.0 g, 然后按 1.2.1 所述工藝制備微生態制劑,分析不同葡萄糖加入量對包埋率的影響。
甘油用量對包埋率的影響:配制活菌濃度為108cfu/mL 50mL的菌液于250 mL燒杯中,調pH為6.0,加入無菌的甘油作為保護劑,加入量分別為 1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL, 然后按 1.2.1 所述工藝制備微生態制劑,分析不同的甘油加入量對包埋率的影響。
甘露醇用量對包埋率的影響:配制活菌濃度為108cfu/mL 50 mL的菌液于250 mL燒杯中,調pH為6.0,加入無菌的甘露醇作為保護劑,加入量分別為 1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL, 然后按 1.2.1 所述工藝制備微生態制劑,分析不同的甘露醇加入量對包埋率的影響。
1.2.3 正交試驗 根據單因素試驗結果,選擇多孔淀粉、葡萄糖、甘油、甘露醇用量4個因素分別設置了3個水平,并特設了一個零水平,因素與水平見表1。

表1 因素與水平
1.2.4 包埋率測定 包埋的活菌數與原始活菌數的比率即為包埋率。微膠囊包埋效果的測定采用曹永梅等(2002)的方法進行?;罹嫈狄罁礼B 4789.35-2010標準進行。
1.2.5 形態表征 在掃描電鏡樣品臺上貼上雙面膠,均勻粘貼少量微生態制劑粉末。然后噴金,采用JSM-7500F SEM觀察,電壓為12kV,觀察微生態制劑的形貌。
1.2.6 貯存穩定性分析 將凍干的微生態制劑分別置于0、4、25、37℃的條件下貯存6周,每隔一周取樣,測定微生態制劑中的活菌數,以此來評價其貯存穩定性和最佳貯存溫度。
2.1 單因素試驗
2.1.1 多孔淀粉用量對微膠囊化的影響 由圖1可知,隨著多孔淀粉用量的增加,包埋率先增加后降低,當多孔淀粉用量在5 g時,制劑的包埋效果最好。多孔淀粉顆粒的孔洞對嗜酸乳桿菌有一定的容納數量,即飽和度,當達到該飽和度時,多孔淀粉添加量的增加不會引起包埋率的增加。另外當多孔淀粉用量較低或較高時,會使制成的微囊粒徑過小或過大,造成微膠囊的收集困難,使包埋率降低。因此,添加多孔淀粉作單一保護劑時,選擇4 g較適宜。

圖1 多孔淀粉用量對微膠囊化的影響
2.1.2 葡萄糖用量對微膠囊化的影響 由圖2可知,隨著葡萄糖用量的增加,包埋率先增加后降低。當葡萄糖用量為5 g時,此時的包埋率最高,為52.5%,當葡萄糖的用量增加時,包埋率隨著用量的增加而降低。因此,單一添加葡萄糖作為保護劑時,選擇4 g較適宜。

圖2 葡萄糖用量對微膠囊化的影響
2.1.3 甘油用量對微膠囊化的影響 由圖3可知,當加入甘油小于4.0 mL時,隨著甘油量的增加,微生態制劑中的活菌數也相應的增加,包埋率呈現增高的趨勢。其主要原因在于:甘油在溶液中易結合水分子,發生水合作用,使溶液的黏性增加,從而弱化了水的結晶過程,減輕了細胞外溶質濃度升高所造成的細胞損傷,達到了保護的目的。在載體中加入細胞保護劑甘油,加強了冷凍干燥和復水后微囊中細胞的活性(Favaro-Trindade等,2011)。因此,添加甘油作為單一保護劑時,選擇4.0 mL較適宜。

圖3 甘油用量對微膠囊化的影響
2.1.4 甘露醇用量對微膠囊化的影響 由圖4可知,當加入的甘露醇用量小于3.0 mL時,隨著甘露醇量的增加,微膠囊中的活菌數也相應的增加,包埋率也有所增加,當加入甘露醇用量大于3.0 mL時,隨著甘露醇量的增加,微膠囊中的活菌數反而減小,包埋率也隨之下降。因此,添加甘露醇作單一保護劑時,選擇3.0 mL較適宜。

圖4 甘露醇用量對微膠囊化的影響
2.2 正交試驗結果與分析
2.2.1 試驗結果直觀分析 由表2可見,零水平所代表的單因素試驗的最優值即A2B2C3D1所得的包埋率值最大,為63.1%,而通過極差分析所得的最適條件是A3B2C2D1,即正交試驗中的第5組,包埋率為62.5%。利用正交試驗所選用的4種壁材制備微膠囊,在包埋過程中,溶液中的嗜酸乳桿菌菌體先到達多孔淀粉顆粒周圍,然后在通過甘油、葡萄糖和甘露醇等保護劑的作用下,再通過吸附力進入顆粒內部的孔洞中,對嗜酸乳桿菌起到很好的保護作用(Nag等,2011)。

表2 正交試驗結果直觀分析
2.2.2 方差分析 通過對試驗結果的極差分析可以看出,4種因素的主次順序依次是:多孔淀粉用量(A)> 甘油用量(C)>甘露醇用量(D)>葡萄糖用量(B)。通過對試驗結果進行二次方差分析,結果如表3所示,可以明顯看出,因素A和C對結果具有顯著性影響,也就是說制備微膠囊所選用的4種壁材中,多孔淀粉用量和甘露醇用量對微膠囊的包埋率影響最大。

表3 方差分析結果
2.2.3 驗證性試驗 為了優選出制備微膠囊的最佳因素組合,分別以單因素試驗的最優值即A2B2C3D1和通過極差分析所得的最優條件即A3B2C2D1進行3次重復性試驗,所得包埋率結果如表4所示。

表4 微膠囊化壁材工藝驗證 %
由表4可以看出,因素組合為A3B2C2D1的方案可行,所以制備微膠囊所選用壁材的最佳工藝條件為:50 mL菌懸液中,采用多孔淀粉用量為6 g、葡萄糖5 g、甘油3.0 mL、甘露醇3.0 mL,此種方案所制備的微膠囊包埋率相對最高。
2.3 掃描電鏡 對嗜酸乳桿菌微生態制劑樣品進行形態觀察,發現嗜酸乳桿菌被保護劑包覆而形成球狀顆粒,且微膠囊大小均勻,其表面比較致密,微生態制劑顆粒表面上有很多小孔,多孔淀粉上的這些小孔具有吸附作用,對嗜酸乳桿菌起到了很好的保護作用。但在掃描照片中仍出現了少量的團聚。這應該是在微膠囊的制作過程中攪拌速率過小、或壁材量稍多、或保護劑之間的粘連作用等,造成微膠囊有一定的團聚。
2.4 貯存穩定性分析 將制得的微生態制劑樣品[活菌數為(2.5±0.5)×108]和裸菌[活菌數為(1.0±0.5)×108] 分別放在 0、4、25、37 ℃的環境中(環境無特殊要求)保存,每隔一定時間對兩種樣品的活菌數進行計算,試驗結果如表5和表6。由表5可知,制劑組中,隨著儲藏時間的延長所有制劑樣品的活菌數均逐漸下降,但在4℃下貯存時,所計數得到的活菌數下降較為緩慢,相比于其他溫度下的保存結果,要適于保存。由表6可知,裸菌組中,所有樣品計數得到的活菌數下降劇烈,各溫度下3周后基本無存活,在25℃和37℃下,2周就基本無存活。因此,制劑的穩定性明顯高于裸菌,在4℃的環境中,嗜酸乳桿菌的活性保存的比較好。

表5 微生態制劑的貯存穩定性 cfu/g
目前,微生態制劑已經在食品加工及各種養殖業中得到廣泛應用,但南方鲇飼用微囊化嗜酸乳桿菌微生態制劑的研究少見。壁材選擇和制備工藝參數的優化是決定微膠囊性能的關鍵因素。因此,本研究重點優化選擇適宜的壁材和濃度,利用真空冷凍干燥技術制備微膠囊,優化工藝參數,通過掃描電鏡照片分析表明,嗜酸乳桿菌被均勻的包裹,且大小均勻,有著很好的包裹率,經過穩定性分析,表明制劑的貯藏穩定性明顯高于裸菌,且所制得的微生態制劑在4℃下貯存時,穩定性較好。

表6 裸菌的貯存穩定性 cfu/g
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