

摘要:目的 研究化療藥物對人肺細胞癌A549抑制基因Livin基因的影響。方法 將不同化療藥物濃度按100、50、25、12.5、6.25、、3.13、1.56、0.78ug/ml,與A549共同培養,分別作用24、48、72h,MTT檢測細胞凋亡結果;real time PCR檢測Livin mRNA的表達,以及Western blots檢測Livin蛋白的變化。結果 不同濃度化療藥物與A549培養后,細胞凋亡率與化療的濃度增加而升高以及Livin基因的表達也明顯的改變(P<0.01)。結論 化療藥物通過抑制肺癌細胞A549 Livin基因表達,抑制細胞增殖,促進細胞凋亡。
關鍵詞:化療藥物;肺癌細胞;Livin基因
隨著吸煙人群的增加(包括吸入二手煙)及大氣污染的加重,肺惡性腫瘤的發病率逐年增加;治療目前除手術切除外,主要為化療與放療,但化療藥物的耐受性往往影響化療藥物的療效;目前研究發現Livin基因與腫瘤的耐受性有一定的關系[1,2],因此,我們選用常見的化療藥物作用于肺癌細胞株,觀察Livin基因表達的改變,探討Livin基因與細胞凋亡的相互關系。
1資料與方法
1.1一般資料 江蘇省無錫市人民醫院腫瘤科提供化療藥物依托鉑苷、卡鉑、多柔比星。中科院上海生化與細胞生物學研究所提供人肺癌細胞株(A549)。
1.2實驗用儀器與試劑 96孔細胞培養板(Costar, Denmark);細胞培養箱(NAPCO,USA);倒置相差顯微鏡(OLYMPUS,JAPAN)。DMEM培養基(GIBCO,USA)(每L含10%小牛血清、L-谷氨酰胺0.33mg,青霉素100U、鏈霉素100U、pH7.4);胰蛋白酶(MERCK,USA);二甲基亞砜(DMSO)(Merck,Germany),無水乙醇(分析純,上海振興化學試劑廠,批號:20021200365);Livin(abcam USA)、碘化丙啶(PI) (Sigma,USA),南京生物工程公司提供引物。
1.3 方法
1.3.1體外培養實驗用細胞株 用含10%小牛血清的DMEM培養液培養、傳代人肺癌細胞株(A549)。
1.3.2 實驗分組 正常對照組;依托鉑苷、卡鉑、多柔比星濃度按100、50、25、12.5、6.25、3.13、1.56、0.78ug/ml,與A549共同培養,分別作用24、48、72h。
1.3.3 MTT法檢測化療藥物對細胞活力的影響 使用0.25%胰酶消化培養至第3代的各組A549細胞后,吹制成單個細胞懸液(細胞密度為1.0×104),分別接種到96孔板中(不含細胞的血清(為消除血清物質對光吸收值的影響)(1~2列)、空白組細胞懸液(3~4列);模型組細胞懸液(5~6列);不同濃度的測試藥物組細胞懸液(7~12列)),于37℃、5%二氧化碳的培養箱放置并作用24h、48h、72h后,每孔再加入MTT溶液20ul,繼續孵育4h后終止培養。小心吸棄上清液,小孔加入DMSO 200μl溶解結晶物并振蕩10min后在酶標儀上測定各孔的吸光值。
1.3.4 RT-PCR 檢測Livin mRNA的表達 根據美國NCBI 的Genbank 提供的Livin 和β-actin mRNA 序列, 設計引物序列如下: ①LivinSense: 5′-TGAGGAGTTGCGTCTGGC-3′;Antisense: 5′-GGCTGCGTCTTCCGGTTC-3′。②β-actin(BC004251) Sense: 5′-CTTAGTTGCGTTACACCCTTTC-3′; Antisense: 5′-CACCTTCACCGTTCCAGTTT-3′。PCR應體系均為15ul,其中含cDNA模板2.5ul,SYBR Green 7.5ul,引物 0.6ul,去離子水4.4ul,95℃預變性5min,94 ℃45sec,56℃45sec,72 ℃50sec,35個循環;比較Ct法(△△Ct法)分析結果。
1.3.5蛋白印跡(Western blots) 分析 常規細胞蛋白質的提取、定量, SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離。濕轉法轉膜后先后與5%BSA、一抗(濃度1∶1 000)、過氧化物酶偶聯的二抗(濃度1∶10 000) 孵育, 運用ECF化學發光顯影、熒光圖像掃描儀掃描存入電腦。
1.4數據分析 運用SPSS13.5統計軟件,以均數±標準差表示,采用單因素方差分析及t檢驗。
2結果
2.1對A549細胞凋亡的改變 實驗結果提示,A549細胞經化療藥物作用后,細胞的抑制明顯增高(P<0.01),并有劑量依賴性以及時間依賴性(見圖1~圖3)。
2.2各化療藥物組細胞Livin mRNA的表達 RT-PCR結果顯示,化療藥物多柔比星、卡鉑與A549細胞分別作用24h、48h后,Livin 基因表達量呈逐漸下降趨勢, 且濃度越高, 時間越長, 則表達量越少;72h后 Livin基因的表達量有增高趨勢;而依托鉑苷分別作用24、48、72h后, Livin 基因的表達量均呈逐漸下降趨勢, 且其幅度隨藥物濃度的增加而增加(圖4)。
2.3各化療藥物對A549細胞的Livin蛋白的影響 化療藥物采用IC50 的抑制濃度, 分別作用于A549細胞 24h、48h、72 h。化療藥物多柔比星、卡鉑作用細胞24h、48h,Livin 蛋白表達量呈逐漸下降;72h Livin蛋白表達量有增高趨勢;依托鉑苷作用72 h 后, Livin 蛋白的表達均逐漸下降, 且其幅度隨藥物濃度的增加而增加(圖5)。
3討論
肺癌目前是全世界腫瘤死亡原因的第一位。近年來,認識到大多數化療藥物是通過誘導細胞凋亡、抑制腫瘤細胞的增殖而實現治療作用。Livin 基因位于染色體20q13.3, 全長46 kb, 包含7 個外顯子和6 個內含子,它有兩種異構體:Livinα 和Livinβ。Livin 基因在胎盤和發育中的組織以及黑色素瘤、白血病、胃癌、肝癌、肺癌、乳腺癌、結腸癌等一些腫瘤組織中特異性高表達, 而在大多數正常組織中不表達或僅有少量表達[3,4],并且有研究認為,癌癥患者放化療的耐藥與Livin基因的表達水平有關[5]。Livin基因可以通過抗死亡受體途徑、抗線粒體途徑和激活JNK1 信號轉導等途徑發揮抑制細胞凋亡和抵抗腫瘤放化療作用[6]。
實驗結果顯示,A549經化療藥物多柔比星、卡鉑作用后,Livin基因表達初期呈降低, 但隨化療藥物作用時間的增加,Livin基因表達呈明顯上升;Livin基因早期不僅通過與procaspase-9直接結合抑制其活性,還可以通過抑制caspase-3 的活性, 阻斷其對procaspase-9 的正反饋激活,從而介導細胞凋亡通路;此外后期Livin基因作為一種酶抑制劑,通過BIR -結構域結合凋亡過程中激活的核心物質Caspases蛋白(如Caspase-3、Caspase-7 等)介導Caspases蛋白的失活和降解而發揮抗凋亡的作用;Livin基因表達規律與MTT檢測的細胞活力結果一致。依托鉑苷與Livin基因表達呈量效關系,作用效果優于多柔比星及卡鉑,在臨床上可以減少腫瘤細胞的耐受性。
綜合上述,對于非小細胞肺癌,Livin基因可能通過調節腫瘤細胞的凋亡影響腫瘤的轉歸, 并可能為肺癌診斷和治療提供新的方向。
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編輯/申磊