MicroRNA-195與Smad7靶向關系的研究

孔彪，沈冬麗，芮濤，張國輝

（江蘇大學附屬人民醫院心內科，江蘇鎮江212002）

MicroRNA-195與Smad7靶向關系的研究

孔彪，沈冬麗，芮濤，張國輝

（江蘇大學附屬人民醫院心內科，江蘇鎮江212002）

目的：構建含有Smad7基因3′-UTR區的熒光素酶報告基因載體，利用雙熒光素酶報告基因驗證MicroRNA195與其潛在靶基因Smad7的靶向關系。方法：PCR擴增出Smad7基因3′-UTR區片段，以此構建含3′-UTR的熒光素酶報告基因載體（wild type，WT）；將miRNA-195與熒光素酶報告重組子共轉染至293T細胞中，雙熒光素酶報告基因系統檢測熒光素酶活性；構建含Smad7基因3′-UTR突變體（mutant，Mut）的熒光素酶報告基因質粒，檢測熒光素酶活性變化。結果：測序結果表明，含有Smad7基因3′-UTR區的熒光素酶報告基因載體構建正確；熒光素酶活性實驗表明，與對照組相比，miRNA-195可使含Smad7基因3′-UTR區的熒光素酶報告重組子的熒光素酶活性降低40%左右；而定點突變Smad7基因3′-UTR的熒光素酶報告重組子熒光活性未有明顯變化。結論：成功構建了Smad7基因3′-UTR區的熒光素酶報告基因載體，而miRNA-195可以直接作用于Smad7基因3′-UTR區，抑制其熒光素酶活性。

MicroRNA195；Smad7基因；熒光素酶報告基因；3′-UTR

微小RNA（miRNA）是一種小的內源性非編碼RNA分子，大約由18～24個核苷酸組成。它可與靶基因mRNA的3′端非編碼區（3′-UTR）結合，通過翻譯水平的抑制或斷裂靶標mRNAs而調節基因的表達［1］。miRNA影響其目標蛋白的生物學功能，對細胞增殖與分化進行調節，并可加速細胞凋亡，從而實現對疾病病理生理進程的調控。國內外大量基礎和臨床研究已證實，多種miRNA在心血管疾病的發生發展過程中扮演重要角色［2-3］。van Rooij等［4］研究發現，心臟特異性的miRNA-195在哺乳動物的肥大心肌中表達上調。目前尚未確定miRNA-195作用的靶基因，其介導心臟病變的機制也不明確。利用Target scan 5.1預測軟件，我們發現Smad7是miRNA-195的潛在靶基因之一，本研究旨在利用熒光素酶實驗驗證二者間的靶向關系，為進一步研究心肌病心肌細胞肥大病理生理改變的機制奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

胚腎細胞HEK293T細胞株、大腸埃希菌TOP10菌株由本實驗室保存，miRNA mimics購買于上海吉碼公司，轉染試劑Fugene HD（Roche公司），經改造的雙熒光素酶報告基因質粒（pLUC載體）購自華安平康公司，引物由Invitrogen公司合成。PCR試劑盒（TaKaRa公司），質粒提取試劑盒（OMEGA公司），XhoⅠ、NotⅠ、T4DNA連接酶（Fermentas公司），雙熒光報告系統（Promega公司），細胞裂解液（Promega公司）。

1.2 方法

1.2.1 構建野生型和突變型Smad7熒光素酶報告基因質粒 Smad7基因3′-UTR序列從NCBI數據庫中獲得，設計成對PCR擴增引物。Smad7上游引物：5′-GTGGGGAGAAGAGGACAGGAC-3，下游引物：5′-GTGGTACCCACTTTCGCACA-3′。以基因組DNA作為模板進行PCR擴增反應，獲得3′-UTR基因片段。經1.5%瓊脂糖凝膠電泳分離PCR產物。將經NotⅠ和XhoⅠ酶切純化后的具有相同酶切位點的pLUC與3′-UTR PCR片段相連接，22℃連接2 h后轉化到感受態細胞TOP10，取適量轉化產物涂布于LB平板上，37℃培養箱倒置培養16 h，觀察菌落生長情況。將經菌落PCR和質粒PCR鑒定正確的克隆菌液送測序，驗證重組克隆插入片段的序列信息，含有目的序列的正確質粒命名為（Luc-Smad7-WT）。定點突變該Smad7 3′-UTR中的核心序列（UGCUGCU），構建含Smad7 3′-UTR突變體的熒光素酶報告基因質粒（Luc-Smad7-Mut）。

1.2.2 miRNA-195與Luc-Smad7-WT/Luc-Smad7-Mut共轉染293T細胞 胰酶消化HEK293T細胞，計數，每1/96孔種2×104（100μL）細胞，將處理好的細胞均勻加于各孔中，置于37℃，5%CO2培養箱培養約24 h。每孔添加的試劑量：0.2μg Luc-Smad7-WT/Luc-Smad7-Mut，0.3μL Fugene HD，0.45μgmiRNA mimics，miRNA NC作為對照，一組實驗3個復孔。30μL Opti-MEM培養基稀釋質粒，最后加入0.9μL Fugene HD，混勻后室溫靜置15 min。將混合物取10μL均勻滴加于每孔細胞中，每3個孔為一實驗組，置于37℃，5%CO2培養箱繼續培養。

1.2.3 熒光素酶活性檢測 轉染完成48 h后，采用Luciferase Reporter Assay System進行檢測。吸除轉染各孔內的培養基，于各孔中加入80μL稀釋后的1×細胞裂解液，置于脫色搖床上振蕩1 h，收集各孔的細胞裂解液，12 000 r/min，離心1 min沉淀雜質。取上述細胞裂解液于不透明96孔板各孔中，按照說明書依次加入螢火蟲熒光素酶及海腎熒光素酶底物，通過Tecan Infinite F200/M200型多功能酶標儀檢測。

1.3 統計學方法

2 結果

2.1 miRNA-195與Smad7基因3′-UTR區互補結合位點預測

從Target scan 5.1預測軟件獲取miRNA-195與Smad7基因3′-UTR區互補結合位點，并以此構建miRNA-195種子區突變體（種子區突變為相互互補的堿基），見圖1。

圖1 m iRNA195與Smad7靶位點配對示意圖

2.2 Smad7基因3′-UTR區的PCR擴增

以基因組DNA作為模板進行PCR擴增反應，獲得Smad7基因3′-UTR基因片段384 bp，DNA凝膠電泳結果顯示與預計大小相符（圖2）。

圖2 Smad7基因3′-UTR區的PCR擴增結果

2.3 熒光素酶報告基因載體的構建

上述3′-UTR PCR片段純化后經NotⅠ和XhoⅠ雙酶切處理，克隆到具有相同酶切位點的pLUC載體中，將經PCR鑒定為陽性的重組質粒進行進一步酶切鑒定，結果顯示重組質粒含有與Smad7基因3′-UTR基因片段大小相符合的插入片段（384 bp，圖3）。重組克隆插入片段經測序鑒定證實為Smad7基因3′-UTR區（圖略）。

圖3 熒光素酶報告基因載體的構建

2.4 miRNA-195對Smad7基因3′-UTR區的調控

結果表明，rno-miR-195與含Smad7基因3′-UTR片段的雙熒光素酶報告基因共轉染驗證實驗相對于負對照（mimics NC與含Smad7基因3′-UTR片段的雙熒光素酶報告基因共轉染）有極顯著性差異（t=13.291，P=0.006），同時熒光比值為負對照的56.30%。說明rno-miR-195對Smad7 3′-UTR的基因表達水平有顯著抑制作用（圖4）。

rno-miR-195與含Smad7基因3′-UTR突變體片段的雙熒光素酶報告基因共轉染驗證實驗相對于負對照（mimics NC與含Smad7基因3′-UTR突變體片段的雙熒光素酶報告基因共轉染）差異無統計學意義（t=0.626，P=0.595），同時熒光比值為負對照的103.02%。說明rno-miR-195對Smad7基因3′-UTR突變體的基因表達水平無抑制作用（圖4）。

圖4 m iRNA-195對Smad7基因3′-UTR的表達調控

3 討論

糖尿病心肌病（diabetic cardiomyopathy，DCM）是糖尿病患者的主要心臟并發癥之一，以心肌肥大和心肌纖維化為主要特征性病理改變，是導致糖尿病患者心血管系統疾病的高發生率和高病死率的重要原因，其發病機制、診斷治療已成為基礎和臨床研究的熱點。近年來，對心臟相關的miRNAs及多種病理條件下miRNAs差異性表達的研究，揭示了它在心血管疾病中重要的調節作用。miRNA-195參與了多種病因引起的心肌肥大的病理生理過程［3］。刁雪紅等［5］研究發現，miRNA-195在糖尿病小鼠模型的心肌組織中的表達明顯上調。而本課題組前期工作中同樣發現在高糖培養的心肌細胞中，miRNA-195表達也上調，因此推測miRNA-195在高糖引起的心肌細胞肥大中發揮重要作用，但其靶基因及其在糖尿病心肌病發生、發展過程中的作用機制尚不清楚。

我們利用生物信息學軟件預測miRNA-195潛在靶基因，結果發現miRNA-195種子序列可與Smad7的3′-UTR片段上的一段堿基序列完全配對。Smad7可通過阻斷TGF-β1受體與受體調節型Smad s或共同調節型Smads的結合抑制TGF-β1信號通路的傳導，從而阻斷TGF-β1的生物學效應［6］。研究發現，糖尿病大鼠心肌組織中Smad7表達減少，且其變化與糖尿病心臟病變相關，提示Smad信號系統失衡可能與糖尿病心肌病發生發展存在密切關聯。同時發現TGF-β1介導的心肌重構可被Smad7阻斷，說明以Smad7為代表的抑制型Smad s可發揮保護作用［7］。

熒光素酶報告基因實驗作為一種重要的miRNA靶位點鑒定方法，常被用來驗證miRNA是否直接作用于其潛在靶基因的3′-UTR［8］。為了驗證Smad7是否直接受miRNA-195的調控，我們將含有大鼠miRNA-195種子序列的Smad7的3′-UTR片段克隆到報告基因載體中，得到Luc-Smad7-WT報告載體，并且構建了含有突變序列的載體Luc-Smad7-Mut。然后將構建成功的重組質粒和miRNA-195瞬時共轉染293T工具細胞，利用雙熒光素酶報告基因系統檢測Luciferase熒光值。若能觀察到含有Smad7基因3′-UTR片段的外源性質粒載體與miRNA-195寡核苷酸在工具細胞中相互作用，可認為該作用機制具有普遍性［9］。結果顯示，在293T細胞中，野生型Smad7 3′-UTR+miRNA-195報告基因載體的熒光素酶活性較對照組顯著降低，而種子區突變體則無顯著差異。后期，課題組在高糖培養的心肌細胞中通過轉染miRNA-195抑制劑，發現miRNA-195表達下調的同時，Smad7蛋白表達水平增加，推測miRNA-195通過TGF-β1/Smad通路參與糖尿病心肌病時的心肌肥大。上述結果充分證明Smad7確實為miRNA-195的靶基因。

綜上所述，miRNA-195可通過靶向抗心肌重構基因Smad7，調控其表達水平，參與糖尿病心肌病心肌細胞肥大的發生、發展過程。本研究進一步完善了糖尿病心肌病的發病機制。在未來的臨床研究中，miRNA-195或許可作為糖尿病心肌病新的治療靶點。

［1］ Bartel DP.MicroRNAs：genomics，biogenesis，mechanism，and function［J］.Cell，2004，116（2）：281-297.

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［3］ van Rooij E，Sutherland LB，Liu N，et al.A signature pattern of stress-responsive microRNAs that can evoke cardiac hypertrophy and heart failure［J］.Proc Natl Acad Sci U SA，2006，103（48）：18255-18260.

［4］ van Rooij E，Sutherland LB，Qi X，et al.Control of stress-dependent cardiac growth and gene expression by a MicroRNA［J］.Science，2007，316（5824）：575-579

［5］ 刁雪紅，申鍔.糖尿病小鼠心肌組織microRNA表達譜分析［J］.上海交通大學學報：醫學版，2010，10（2）：1194-1198.

［6］ Massaque J，Seoane J，Wotton D.Smad Transcription factors［J］.Genes Dev，2005，19（23）：2783-2810.

［7］ 李龍英，肖謙，高原，等.Smad3、Smad7在糖尿病大鼠心肌組織的表達［J］.中國老年學雜志，2009，29（2）：132-134.

［8］ Enright AJ，John B，Gaul U，et al.MicroRNA targets in Drosophila［J］.Genome Biol，2003，5（1）：R1.

［9］ 王瑜，付潔，程龍，等.靶向FHL1microRNA初步篩選研究［J］.軍事醫學，2013，37（6）：423-426.

Investigating the relationship between M icroRNA-195 and Smad7

KONG Biao，SHEN Dong-li，RUITao，ZHANGGuo-hui
（Department of Cardiology，the Affiliated People′s Hospital of Jiangsu University，Zhenjiang Jiangsu 212002，China）

Objective：The luciferase reporter vector containing 3′-UTR of Smad7 was constructed.Dual luciferase reporter gene system was applied to determine the association between miRNA-195 and its target gene Smad7.M ethods：The 3′-UTR of Smad7 fragment amplified by PCR was cloned into luciferase vector.MiRNA-195 and the luciferase reporters containing 3′-UTR（Smad7-3′UTR-WT）or mutant 3′-UTR（Smad7-3′UTR-Mut）of Smad7 were co-transfected into HEK293T cells and dual luciferase reporter gene system was applied to test luciferase activity.Results：DNA sequencing showed that the sequences of the cloned regions were correct.The luciferase activity of Smad7-3′UTR-WT plasmid treated with miRNA-195 was decreased to about 40%compared with control.Themutant3′-UTR were no longer repressed bymiRNA-195.Conclusion：The Smad7 3′-UTR luciferase reporter vector has been constructed successfully.MiRNA-195 can repress the luciferase activity of the reporter gene and had direct effect on Smad7 3′-UTR.

MicroRNA195；Smad7；luciferase reporter gene；3′-UTR

R393

A

1671-7783（2015）04-0286-04

10.13312/j.issn.1671-7783.150049

孔彪（1986—），男，碩士研究生；張國輝（通訊作者），博士，主任醫師，碩士生導師，E-mail：13338812776@189.cn

2015-03-19 ［編輯］何承志