袁紅霞 邱振宇 周 盾
(錦州醫科大學附屬第一醫院,遼寧 錦州 121001)
姜黃素對5/6腎切除鼠鞘氨醇激酶1和轉化生長因子-β1表達的影響
袁紅霞 邱振宇 周 盾
(錦州醫科大學附屬第一醫院,遼寧 錦州 121001)
目的探討姜黃素對5/6腎切除大鼠腎臟損害的保護作用及相關機制。方法 將36只SD大鼠隨機分為對照組,5/6腎切除組和姜黃素治療組,每組12只。10 w后檢測各組大鼠24 h尿蛋白定量、血肌酐(SCr)及尿素氮(BUN)的水平;光鏡觀察各組大鼠腎組織病理改變,免疫組化法檢測腎組織鞘氨醇激酶(SPHK)1和轉化生長因子(TGF)-β1的表達。ELISA檢測各組大鼠血清中TGF-β1的分泌水平。結果 姜黃素治療組大鼠24 h尿蛋白定量、SCr和BUN水平明顯低于5/6腎切除組(P<0.05)。免疫組化檢測可見5/6腎切除組大鼠SPHK1和TGF-β1表達明顯增加(P<0.05),姜黃素治療組上述指標的表達均受到明顯抑制(P<0.05)。姜黃素治療組大鼠血清TGF-β1的分泌水平明顯低于5/6腎切除組,但仍高于對照組(P<0.05)。結論 姜黃素能減輕5/6腎切除大鼠腎臟病理改變,其機制可能是通過抑制TGF-β1的表達和分泌,進而影響SPHK1的表達而發揮作用。
姜黃素;5/6腎切除;鞘氨醇激酶1;轉化生長因子-β1
腎小球硬化、腎小管間質纖維化是各種腎臟疾病發展至終末期的不可逆病變,其間涉及炎性細胞浸潤、細胞因子活化、細胞增殖及細胞外基質聚集等錯綜復雜的病理生理過程〔1〕。姜黃素是從姜科植物根莖姜黃中提取的一種植物多酚,有抗氧化、抗炎、促進免疫調節等藥理作用。近年研究顯示,姜黃素具有抗腎纖維化的作用〔2~4〕。本實驗通過建立5/6腎切除大鼠動物模型,觀察大鼠腎組織鞘氨醇激酶(SPHK)1和轉化生長因子(TGF)-β1的表達及姜黃素對其表達的影響。
1.1 動物及試劑 健康成年雄性SD大鼠36只(遼寧醫學院實驗動物中心提供),體質量250~300 g。姜黃素(Sigma公司),兔抗大鼠SPHK1多克隆抗體(Abgent公司),兔抗大鼠TGF-β1多克隆抗體(Santa Cruz公司),SP免疫組化檢測試劑盒(北京中杉金橋生物技術有限公司)。大鼠血清TGF-β1 ELISA試劑盒(沈陽博瑞德科技有限公司)。
1.2 方法
1.2.1 動物分組及模型建立 大鼠適應性飼養1 w后,隨機分為3組:對照組,5/6腎切除組和姜黃素治療組,每組12只。5/6腎切除組大鼠在麻醉和無菌條件下切除左腎上、下極約2/3腎組織,術后1 w,麻醉下切除右腎,兩次手術共切除腎臟約5/6。姜黃素治療組處理方法同5/6腎切除組,并于第2次腎切除后1 w開始行姜黃素150 mg·kg-1·d-1灌胃10 w。對照組和5/6腎切除組給予等體積飲用水灌胃。
1.2.2 標本采集與處理 10 w后,代謝籠收集24 h尿液并記錄尿量;靜脈采血5 ml檢測血肌酐(SCr)、尿素氮(BUN)的水平及TGF-β1的分泌水平,后處死各組大鼠,留取腎臟組織標本,用10%甲醛固定,常規石蠟包埋,切片。①24 h尿蛋白定量:雙縮脲法檢測各組大鼠24 h尿蛋白定量。②腎功能指標:全自動生化分析儀檢測各組大鼠血清血SCr和BUN水平。③組織學檢查:取各組大鼠腎組織標本石蠟切片行HE和PAS染色,觀察腎組織病理形態學改變。④免疫組織化學檢測SPHK1和TGF-β1:采用SP法。石蠟切片4 μm。陰性對照用PBS代替一抗,檢測SPHK1和TGF-β1的表達。結果進行半定量分析,每張標本隨機選取5個視野,計算視野內染色區域的平均吸光度,以均值計算每個標本的吸光度,最后以每組的均值進行比較。⑤酶聯免疫吸附法(ELISA)檢測血清中TGF-β1的水平:按照試劑盒提供的操作步驟進行實驗。
1.3 統計學方法 采用SPSS18.0軟件進行單因素方差分析及t檢驗。
2.1 干預后各組大鼠24 h尿蛋白定量、SCr和BUN水平 干預10 w后,與對照組相比,5/6腎切除組24 h尿蛋白定量、SCr和BUN水平均明顯增加(P<0.05)。與對照組相比,姜黃素治療組24 h尿蛋白定量、SCr和BUN水平仍增高,但較5/6腎切除組顯著降低(P<0.05)。見表1。


組別24h尿蛋白定量(mg/24h)BUN(mmol/L)SCr(μmol/L)對照組12 63±6 425 44±1 2254 00±5 295/6腎切除組177 30±13 011)10,20±1 171)98 50±13 991)姜黃素治療組85 33±9 071)2)7 74±1 151)2)69 75±8 661)2)
與對照組比較:1)P<0.05;與5/6腎切除組比較:2)P<0.05,下表同
2.2 各組大鼠腎組織病理改變 HE和PAS染色結果顯示,對照組大鼠腎小球毛細血管襻開放較好,腎小管上皮細胞排列整齊,間質無明顯改變。5/6腎切除組可見腎小球系膜細胞增生,腎小囊擴張,囊壁增厚,球囊粘連,毛細血管襻面積縮小;腎小管閉塞,腎小管上皮細胞腫脹、顆粒變性、壞死、脫落,腎小管擴張明顯,可見蛋白管型,個別小管萎縮,可見間質纖維化和炎性細胞浸潤。姜黃素治療組病變較5/6腎切除組明顯減輕。見圖1。
2.3 各組大鼠腎組織中SPHK1和TGF-β1的表達 對照組大鼠腎小球和腎小管可見少量SPHK1和TGF-β1染色顆粒,5/6腎切除組SPHK1和TGF-β1表達明顯增加,姜黃素治療組SPHK1和TGF-β1蛋白表達與之相比明顯減少,但高于對照組(P<0.05)。見表2,圖2、圖3。
2.4 各組大鼠血清TGF-β1水平 5/6腎切除組TGF-β1水平〔(249.5±45.33)pg/ml〕和姜黃素治療組〔(115.7±38.52)pg/ml〕明顯高于對照組〔(50.18±20.54)pg/ml,P<0.05〕;與 5/6腎切除組比較,姜黃素治療組TGF-β1水平降低(P<0.05)。

圖1 各組大鼠腎組織HE和PAS染色(×400)

表2 各組大鼠腎組織SPHK1和TGF-β1的表達

圖2 各組大鼠腎組織SPHK1的表達(×200)

圖3 各組大鼠腎組織TGF-β1的表達(×200)
本實驗采用SD大鼠5/6腎切除誘導腎小球硬化模型,10 w后觀察到血肌酐、尿素氮和24 h尿蛋白定量升高,光鏡觀察腎小球系膜細胞增生,系膜基質增多,毛細血管襻面積縮小;腎小管閉塞,個別小管萎縮,可見間質纖維化。說明本實驗所采用的模型已出現腎小球硬化的病理改變。
1磷酸鞘氨醇(S1P)作為SPHK1的下游代謝產物,能調節細胞增殖、分化、遷移、接觸和黏附、存活以及血管的形成,調控多種細胞的生物學活性〔5,6〕。最近,越來越多的研究證實,SPHK1在糖尿病腎病、多囊腎等腎臟病變腎組織表達增加并促進腎臟硬化〔7~9〕。本研究發現,對照組大鼠腎組織中可見少量SPHK1表達,5/6腎切除組SPHK1表達明顯增加,說明SPHK1參與了腎局灶硬化和腎小管擴張,但具體機制不清。
姜黃素是姜黃的主要活性成分,具有廣泛的藥理作用。國外學者研究發現,在5/6腎切除誘導的慢性腎衰竭模型大鼠中,姜黃素能顯著降低SCr、BUN及尿蛋白的水平,減輕腎局灶硬化和腎小管擴張〔3,10〕,這與本實驗的研究結果相一致。Ghosh等〔4〕在糖尿病腎病模型中研究發現,姜黃素能明顯下調SPHK1的表達和活性,使TGF-β1的過度表達受到抑制。另有研究證實,TGF-β1能促進SPHK1的活性和表達,促使細胞外基質的沉積〔11〕。TGF-β1是導致動物腎臟纖維化的關鍵性細胞因子,它能促進系膜細胞肥大,細胞外基質增多、降解減少,最終導致腎小球硬化。本研究發現,在5/6腎切除組大鼠腎組織中TGF-β1表達增多,血清分泌水平升高,提示TGF-β1和SPHK1可能共同參與了腎組織的病變。給予姜黃素治療后,大鼠腎組織中SPHK1和TGF-β1的表達減少,血清中TGF-β1的分泌水平顯著下降,說明姜黃素通過TGF-β1/SPHK1通路起到了對5/6腎切除大鼠腎臟的保護作用。
綜上,本研究表明姜黃素能改善5/6腎切除大鼠受損的腎臟結果和功能,降低蛋白尿,延緩慢性腎功能衰竭的發生和發展。其腎臟保護作用的機制可能是抑制TGF-β1的表達和分泌,進而影響SPHK1的表達而發揮作用。
1 El Nahas AM,Muchaneta-Kubara EC,Essaway M,etal.Renal fibrosis:insights into pathogenesis and treatment〔J〕.Int J Biochem Cell Biol,1997;29(1):55-62.
2 Gaedeke J,Noble NA,Border WA.Curcumin blocks multiple sites of the TGF-β signaling cascade in renal cells〔J〕.Kidney Int,2004;66(1):112-20.
3 Tapia E,Zatarain-Barrón ZL,Hernández-Pando R,etal.Curcumin reverses glomerular hemodynamic alterations and oxidant stress in 5/6 nephrectomized rats〔J〕.Phytomedicine,2013;20(3):359-66.
4 Ghosh SS,Massey HD,Krieg R,etal.Curcumin ameliorates renal failure in 5/6 nephrectomized rats:role of inflammation〔J〕.Am J Physiol Renal Physiol,2009;296(5):F1146-57.
5 Sheu JJC,Lee CC,Hua CH,etal.LRIG1 modulates aggressiveness of head and neck cancers by regulating EGFR-MAPK-SPHK1 signaling and extracellular matrix remodeling〔J〕.Oncogene,2013;33(11):1375-84.
6 Beckham TH,Cheng JC,Lu P,etal.Acid ceramidase induces sphingosine kinase 1/S1P receptor 2-mediated activation of oncogenic Akt signaling〔J〕.Oncogenesis,2013;2(6):e49.
7 Ren S,Babelova A,Moreth K,etal.Transforming growth factor-β2 upregulates sphingosine kinase-1 activity,which in turn attenuates the fibrotic response to TGF-β2 by impeding CTGF expression〔J〕.Kidney Int,2009;76(8):857-67.
8 Natoli TA,Husson H,Rogers KA,etal.Loss of GM3 synthase gene,but not sphingosine kinase 1,is protective against murine nephronophthisis-related polycystic kidney disease〔J〕.Hum Mol Genet,2012;21(15):3397-407.
9 Geoffroy K,Troncy L,Wiernsperger N,etal.Glomerular proliferation during early stages of diabetic nephropathy is associated with local increase of sphingosine-1-phosphate levels〔J〕.FEBS Lett,2005;579(5):1249-54.
10 Ghosh SS,Krieg R,Massey HD,etal.Curcumin and enalapril ameliorate renal failure by antagonizing inflammation in 5/6 nephrectomized rats:role of phospholipase and cyclooxygenase〔J〕.Am J Physiol Renal Physiol,2012;302(4):F439-54.
11 Yamanaka M,Shegogue D,Pei H,etal.Sphingosine kinase 1 (SPHK1) is induced by transforming growth factor-beta and mediates TIMP-1 up-regulation〔J〕.J Biol Chem,2004;279(52):53994-4001.
〔2015-06-17修回〕
(編輯 苑云杰/曹夢園)
遼寧省教育廳科研項目(No.L2012312)
周 盾(1967-),女,教授,碩士,碩士生導師,主要從事腎小球硬化的發病及機制研究。
袁紅霞(1979-),女,講師,博士,碩士生導師,主要從事感染與免疫性疾病的發病機制及治療研究。
R59
A
1005-9202(2016)24-6093-03;
10.3969/j.issn.1005-9202.2016.24.022