袁 梅,譚適娟,孫建光
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水稻內生固氮菌分離鑒定、生物特性及其對稻苗鎘吸收的影響
袁 梅1,譚適娟2,孫建光1
(1中國農業科學院農業資源與農業區劃研究所/農業部農業微生物資源收集與保藏重點實驗室,北京100081;2湖南省郴州桂陽縣農業局,湖南郴州 424400)
【目的】分離鑒定湖南水稻內生固氮菌,研究水稻內生固氮菌的系統發育,分析測定分離菌株的生物學特性,探討接種水稻內生固氮菌對稻苗鎘(Cd)吸收的影響。【方法】表面滅菌水稻植株樣品后采用低氮培養法分離水稻內生細菌,采用PCR擴增、測序檢測菌株基因確認分離物是固氮菌,通過16S rRNA基因序列測定、比對初步鑒定菌株,分析菌株系統發育,通過溫室盆栽試驗探討接種水稻內生固氮菌對稻苗Cd吸收的影響。【結果】從8個湖南水稻植株樣品中分離到19株內生固氮菌,這些菌株在系統發育地位上屬于4屬13種。分離到的19株內生固氮菌中有大約1/3的菌株產生蛋白酶和纖維素酶的能力較強,在48℃生長良好,在產孢液體培養基上生長良好(OD>1.0),在固體產孢培養基上產孢率高(60%—90%),產堿能力也相對較強(pH 8.5—9.0)。有1/6的內生固氮菌(3個菌株)分別對立枯絲核菌、禾谷鐮孢、擬枝孢鐮孢具有拮抗性,抑菌率為42%—55%。有大約2/3的菌株對抗生素相對比較敏感,對殺菌劑耐性強。測定的4個代表菌株對檢測過的78種碳源中的7種利用較好,它們是乳酸鈉、蔗糖、葡萄糖、甘油、蘋果酸、丙氨酸、葡萄糖醛酰胺。試驗的19株內生固氮菌中有6個菌株促進水稻苗期Cd吸收,與對照相比植株Cd含量增加6.41%—38.45%;其他13個菌株抑制水稻苗期Cd吸收,與對照相比植株Cd含量減少2.06%—34.46%?!窘Y論】從湖南水稻分離到19株內生固氮菌,系統發育地位屬于、、、4屬13種。部分菌株產堿能力強,產孢率高,可在48℃高溫下生長,產蛋白酶、纖維素酶,拮抗立枯絲核菌、禾谷鐮孢、擬枝孢鐮孢,具有良好應用前景。接種水稻內生固氮菌可以顯著影響水稻苗期Cd吸收,提示采用微生物方法阻控稻田Cd污染是一個非常值得研究、探討的途徑。
水稻;內生固氮菌;生物特性;Cd
【研究意義】水稻植株體內棲息著大量內生菌,對于植株健康生長起著重要作用[1]。內生固氮菌是植物內生菌的一個主要類群,不僅有固氮作用,還能促進植物生長,提高植物抗病、抗逆[2]。礦山開采、不潔肥料等原因造成了稻田Cd污染,影響食品安全和生態安全[3-4]。研究發現內生菌能夠提高水稻幼苗對Cd脅迫的抗性[5],探索內生固氮菌對稻苗Cd吸收的影響,對于防控稻田Cd污染具有積極意義?!厩叭搜芯窟M展】水稻是內生固氮菌研究相對較多的作物,許多年前人們就已經建立了有效的水稻內生固氮菌分離方法,并且測得水稻內生固氮菌的數量在105—108cfu/g DW[6]。近年來,水稻內生菌成為研究熱點,水稻內生固氮菌的分離鑒定工作得到加強,新的水稻內生固氮菌也不斷被發現[7-8],接種固氮菌對于水稻氮素營養改善等具有生產實際意義的研究結果得到證實[9]。目前,對水稻內生固氮菌進行批量分離鑒定和較為系統的生物特性研究較少,也未見到內生固氮菌對水稻植株Cd吸收的報道?!颈狙芯壳腥朦c】從Cd污染較重的地區湖南郴州桂陽縣采集水稻植株樣品,批量分離、鑒定內生固氮菌,分析菌株間的系統發育關系,系統研究菌株產堿、產孢、高溫生長,產蛋白酶、纖維素酶,拮抗病原真菌,對抗生素、殺菌劑耐性,碳源發酵利用等與農業生產應用密切的生物特性,探索菌株對水稻苗期生長及植株Cd吸收的影響。【擬解決的關鍵問題】探討水稻內生固氮菌的系統發育關系、生物特性及其對水稻苗期Cd吸收的影響。
試驗于2014年1月至2015年12月在北京和湖南省郴州桂陽縣完成。
1.1 樣品、試劑、培養基
1.1.1 樣品、試劑 2014年9月17日從湖南省郴州桂陽縣水稻田采集到水稻植株樣品8份,水稻為當地品種明珠絲苗,處于近成熟期。采樣方法為選擇不同水稻田塊的健壯植株帶根土整穴拔起,每個田塊采集2份,裝入塑料袋帶回實驗室保存在4℃,盡快進行菌株分離。
病原真菌靶標菌株立枯絲核菌()ACCC36246、禾谷鐮孢()ACCC36249、擬枝孢鐮孢()ACCC37402由中國農業科學院農業資源與農業區劃研究所鄧暉提供。
試驗所用試劑購自北京化學試劑公司和Sigma公司。
1.1.2 培養基 分離固氮菌多碳源低氮培養基(CCM)[10]:溶液Ⅰ:KH2PO40.2 g,NaCl 0.1 g,K2HPO40.8 g,Na2FeEDTA 28 mg,鉬酸鈉25 mg,酵母浸膏100 mg,甘露醇5 g,蔗糖5 g,乳酸鈉0.5 mL,蒸餾水900 mL。溶液Ⅱ:MgSO4·7H2O 0.2 g,CaCl2·2H2O 0.06 g,蒸餾水100 mL。將溶液Ⅰ、Ⅱ分別滅菌,冷卻至50℃左右混合,加入生物素(5 μg·L-1)和維生素(10 μg·L-1)各0.5 mL。分離固氮菌無氮培養基[11]:蔗糖10 g,NaCl 0.12 g,K2HPO4·3H2O 0.5 g,CaCO31 g,MgSO4·7H2O 0.2 g,蒸餾水1 L,pH 7.2。LB培養基:酵母膏5 g,蛋白胨10.0 g,NaCl 10.0 g,蒸餾水1 L,pH 7.0。牛肉膏蛋白胨培養基(液體):牛肉膏5.0 g,蛋白胨10.0 g,NaCl 5.0 g,蒸餾水1 L,pH 7.0。產孢液體培養基:(NH4)2SO42 g,NaCl 1 g,K2HPO41 g,MgSO4·7H2O 1 g,MnSO40.2 g,淀粉10 g,CaCO31 g,蒸餾水1 L,pH 7.0。產孢固體培養基:麥麩1 kg,豆粉400 g(預先混合),牛肉膏200 g,可溶淀粉10 g,酵母粉3 g,蔗糖20 g,磷酸二氫鉀20 g,尿素3 g(用400 mL蒸餾水溶解后加入),MnSO42 g(用100 mL蒸餾水單獨溶解后加入),蒸餾水2.5 L,pH 7.2。測定蛋白酶脫脂牛奶培養基:脫脂奶粉5 g溶于50 mL蒸餾水,瓊脂1.5 g溶于50 mL蒸餾水,兩者分別滅菌。待冷至45—50℃時,兩液混勻倒平板。測定纖維素酶CMC培養基:(NH4)2SO42 g,MgSO40.5 g,KH2PO4l g,NaCl 0.5 g,CMC-Na 10 g,瓊脂20 g,蒸餾水1 L,自然pH。耐藥性檢測培養基:蔗糖10 g,NaCl 0.12 g,K2HPO4·3H2O 0.5 g,CaCO31 g,MgSO4·7H2O 0.2 g,酵母粉0.5 g,蒸餾水1 L,pH 7.2。
1.2 水稻內生固氮菌分離
采用上述多碳源低氮培養基和無氮培養基對采自湖南郴州桂陽縣的水稻植株樣品進行了內生固氮菌分離,方法參考文獻[12]。
1.3 菌株16S rRNA基因序列測定與初步鑒定
固氮菌分離物的16S rRNA基因擴增方法參考文獻[13],序列測定委托北京博邁德生物技術公司完成,基于16S rRNA基因序列的初步鑒定采用EzTaxon和NCBI數據庫在線比對完成。
1.4 菌株基因檢測與序列測定
方法參考文獻[14],序列測定委托生工生物工程(上海)股份有限公司完成。
1.5 水稻內生固氮菌系統發育分析
在上述16S rRNA基因序列測定和基因檢測的基礎上,采用Mega軟件分析水稻內生固氮菌的系統發育[15]。
1.6 菌株產堿、產孢、高溫生長測定
采用牛肉膏蛋白胨培養基測定菌株產堿和高溫生長能力。方法如下:首先在LB培養基平板上培養活化備測菌株,然后將備測菌株接種在盛有5 mL牛肉膏蛋白胨培養基的試管中,每種培養基3次重復(設置不接種空白對照),然后分別放置在28和48℃恒溫培養箱中靜置培養。48 h后觀察記錄菌株生長情況,同時用精確試紙測定培養液pH。
采用液體和固體2種產孢培養基測定菌株產生芽孢的能力。液體培養測定方法:用LB平板培養基培養活化備測菌株,然后將備測菌株接種在盛有5 mL產孢液體培養基的試管中,3次重復(設置不接種空白對照),28℃恒溫搖床振蕩培養。6 d后鏡檢觀察菌體形態和芽孢形成情況,記錄視野中芽孢比例。固體培養測定方法:首先用LB平板培養基培養活化備測菌株,然后接種在50 mL LB液體培養基中28℃恒溫搖床振蕩培養24 h制成種子液。將配制好的產孢固體培養基放入布袋,濕熱滅菌后趁熱加入預先干熱滅菌的500 mL燒杯中,裝量300 mL,雙層紗布封口,冷至室溫后接種50 mL上述種子液,置于30℃恒溫培養箱中靜置培養。72 h后檢測芽孢形成:稱取固體培養物50 g放入勻漿機中,加水250 mL,勻漿2 min,吸取100 μL菌液,涂片,染色,鏡檢觀察菌體形態和芽孢形成情況,記錄視野中芽孢比例。
1.7 菌株產蛋白酶、纖維素酶測定
定性測定了菌株產生蛋白酶和纖維素酶的能力。測定菌株產生蛋白酶的方法:用LB平板培養基培養活化備測菌株,然后將備測菌株接種在脫脂牛奶培養基平板上,28℃培養3 d后,觀察、記錄菌落周圍透明圈大小,判斷菌株產蛋白酶能力。測定菌株產生纖維素酶的方法:用LB平板培養基培養活化備測菌株,然后將備測菌株接種在CMC培養基平板上,28℃培養3 d后,在長出菌落的培養基上覆蓋濃度4 mg·mL-1的剛果紅溶液,1 h后傾去,加入濃度l mol·L-1的NaCl溶液,1 h后傾去,加入5%的醋酸。此時,產生纖維素酶的菌落周圍出現透明圈。觀察、記錄菌落周圍透明圈大小,判斷菌株產生纖維素酶能力。
1.8 菌株拮抗病原真菌
采用兩點對峙法測定了分離菌株對立枯絲核菌ACCC36246、禾谷鐮孢ACCC36249、擬枝孢鐮孢ACCC37402這3株病原真菌的拮抗特性,方法參考文獻[16]。抑制率(%)=(對照半徑r0-對峙培養病原真菌菌落半徑r1)/對照半徑r0×100。
1.9 菌株對抗生素、殺菌劑耐性
用平板培養法測定了分離菌株對抗生素、殺菌劑的耐性。測試的抗生素和殺菌劑有氨芐青霉素、噻孢霉素、氯霉素、硫酸卡那霉素、硫酸新霉素、青霉素G鈉鹽、硫酸鏈霉素、鹽酸四環素,戊唑醇、敵克松、甲霜靈、咯菌腈、惡霜靈、福美雙等。測試方法為:將抗生素和殺菌劑配成母液,加入到滅菌后正處于冷卻階段(50℃左右)的耐藥性檢測培養基中,使抗生素終濃度為0.25 g·L-1(殺菌劑終濃度1.0 g·L-1),充分混勻,倒于滅菌平皿中制成檢測平板。用LB平板培養基培養活化備測菌株,然后接種在50 mL LB液體培養基中28℃恒溫搖床振蕩培養24 h制成種子液。用無菌水調節種子液濃度為OD600=1.0,接種20 μL至耐藥性檢測平板,28℃培養4 d,記錄菌株生長情況。
1.10 菌株對碳源發酵利用測定
采用BIOLOG試劑盒(美國Biolog公司,儀器型號:GENⅢ)測定了分離菌株對碳源的發酵利用,測定碳源共計78種,方法參照BIOLOG實驗手冊。
1.11 菌株對水稻苗期生長及植株Cd吸收的影響
試驗于2015年4月15日至7月7日在溫室完成。供試菌株為上述19株水稻內生固氮菌,試驗土壤取自湖南省郴州桂陽縣,含Cd約6 mg·kg-1。水稻品種為湖南省郴州桂陽縣當地品種明珠絲苗2號。育秧盤為4×8孔,面積0.125 m2,購自中國農業科學院蔬菜花卉研究所。步驟:將土壤風干,磨碎,過2 mm篩,按照1﹕10加入生物有機肥(市售),同時按照每平方米育秧盤加入185 g水稻育秧調理劑(調理劑組成:磷酸一銨65 g,過磷酸鈣100 g,硫酸銨422 g,硫酸鉀40 g,硫酸鋅7 g,填料366 g),混勻裝盤,每盤裝土3.3 kg。挑選飽滿種子,浸種5 d,每穴播種20粒種子。出苗后,在2葉期接種固氮菌,每穴接種OD600=1.0的固氮菌培養液1 mL,設置不接菌處理為陰性對照,每個處理8次重復。日常管理按常規進行。2個月后收獲,測定稻苗根長、株高、鮮重等生長性狀,同時將樣品送普尼測試中心測定Cd含量。采用SAS軟件進行統計分析。
2.1 水稻內生固氮菌分離、檢測及基于16S rRNA基因序列的初步鑒定
采用多碳源低氮培養基和無氮培養基從8個水稻植株樣品的根、莖、葉共分離到內生固氮菌19株,全部菌株檢測到了固氮基因,經過16S rRNA基因序列分析比對確定了菌株的分類地位。新分離菌株的編號、來源及最大相似性模式種如表1所示。

表1 新分離水稻內生固氮菌及其最大相似性模式種
2.2 新分離水稻內生固氮菌的系統發育分析
16S rRNA基因序列比對結果顯示,從湖南水稻植株分離到的19株內生固氮菌與已知模式種的最大相似性均在99%以上(sd194為98.83%),說明新分離內生固氮菌的科學分類地位比較明確。按照16S rRNA基因序列相似性,19株水稻內生固氮菌在系統發育地位上屬于4屬13種,分別為。它們的系統發育關系如圖1所示。

圖1 新分離19株水稻內生固氮菌系統發育樹(與參比模式種比較)
2.3 菌株產堿、產孢、高溫生長性能
分離到的19株水稻內生固氮菌在細菌常規培養基牛肉膏蛋白胨上生長良好,細胞密度均在OD 1.0以上,多數菌株具有產堿能力,培養液最終pH在7.0—9.0。高溫生長試驗結果顯示sd010、sd032、sd037、sd039、sd232、sd372 6株菌能夠在48℃生長,細胞密度達到OD 1.0以上,而且這些菌株的產堿能力相對強于其他菌株。產孢試驗結果顯示,菌株在產孢液體培養基上產孢較少,多數菌株的芽孢形成率不足10%;而在產孢固體培養基是生長良好,菌數密度達到2.0×109cfu/g以上,多數菌株的芽孢形成率達到了60%—90%(表2)。
2.4 菌株產蛋白酶、纖維素酶性能及其對病原真菌的拮抗
蛋白酶和纖維素酶測定結果顯示,菌株sd032、sd037、sd039、sd250、sd372、sd373具有較好的產酶能力,其他菌株產酶能力較弱,或者不產生。同時發現,菌株產生蛋白酶和纖維素酶二者之間存在一致性(表2)。抗病原真菌試驗顯示,菌株sd037、sd039同時對3株靶標病原真菌具有拮抗作用,抑菌率為42%—55%,sd010對ACCC37402、sd373對ACCC36249分別具有拮抗性,其他菌株不具有拮抗病原真菌的能力。菌株拮抗病原真菌的能力和菌株產蛋白酶、纖維素酶的能力二者之間存在明顯的一致性(表2)。

表2 新分離菌株的生物特性測定
a描述菌株液體培養生長情況?!埃北硎揪簼舛龋糘D 0.3,“+”表示菌液濃度OD 0.3—0.6,“++”表示菌液濃度OD 0.6—1.2,“+++”表示菌液濃度>OD 1.2aBacterial growth in liquid medium, “-” meant bacterial liquid<OD 0.3, “+” meant bacterial liquid between OD 0.3 and 0.6, “++” meant bacterial liquid between OD 0.6 and 1.2, “+++” meant bacterial liquid >OD 1.2;b描述菌株固體培養生長情況?!埃北硎炯毦鷿舛?.0×109—3.0×109cfu/g,“+++”表示細菌濃度>3.0×109cfu/gbBacterial growth in solid medium, “++” meant bacterial density between 2.0×109and 3.0×109cfu/g, “+++” meant bacterial density >3.0×109cfu/g;c透明圈法定性描述菌株產酶情況。“-”表示透明圈帶寬<1 mm,“+”表示透明圈帶寬 1—3 mm,“++”表示透明圈帶寬 3—6 mm,“+++”表示透明圈帶寬>6 mmcQualitative description of protease and cellulose, “-” meant transparent ring bandwidth <1 mm, “+” meant transparent ring bandwidth between 1 and 3 mm, “++” meant transparent ring bandwidth between 3 and 6 mm, “+++” meant transparent ring bandwidth >6 mm
2.5 菌株對抗生素、殺菌劑的耐性
檢測了18株新分離菌株對8種抗生素和6種殺菌劑的耐藥性,結果顯示多數菌株對氨芐青霉素、噻孢霉素、青霉素G鈉鹽、鹽酸四環素、甲霜靈、咯菌腈、惡霜靈具有不同程度的耐性,對氯霉素、硫酸卡那霉素、硫酸新霉素、敵克松、福美雙則相對比較敏感。從單個菌株的耐藥性來看,sd032、sd039、sd086、sd372、sd373的耐藥性相對較強,這也正是那些產堿、產酶、產孢、高溫生長能力較強的菌株(表3)。

表3 新分離菌株對抗生素、殺菌劑的耐性
“-”表示未形成菌落No colony formation;“+”表示初步形成菌落Initial formation of colony;“++”表示形成典型菌落Typical formation of colony;“+++”表示形成旺盛生長菌落Formation of actively growing colony;“n”表示未測定No test
2.6 菌株對碳源的發酵利用
選取了4菌株sd037、sd106、sd194、sd372 為代表,測定了新分離水稻內生固氮菌對78種碳源的發酵利用。整體來看菌株對碳源的利用種類不多。乳酸鈉、蔗糖、葡萄糖、甘油、蘋果酸、丙氨酸、葡萄糖醛酰胺是菌株利用較多的碳源,其他碳源則較少被利用(表4)。

表4 新分離菌株對碳源的發酵利用
“-”表示不利用No utilization;“+”表示利用Utilization;“±”表示少量利用Slightly utilization
2.7 菌株對水稻苗期生長及植株Cd含量的影響
從根長來看,菌株sd385顯著促進根生長,而菌株sd039、sd237、sd372則表現出對根生長的抑制作用。從株高來看,接種分離菌株后稻苗普遍低于對照,5個處理達到統計顯著水平。從植株鮮重來看,接種分離菌株后稻苗生物量普遍高于對照處理,5個處理sd086、sd232、sd308、sd385、sd400均顯著高于對照,說明接種水稻內生固氮菌可以顯著提高稻苗生物量(表5)。菌株sd385使稻苗根系顯著伸長,生物量顯著增加,株高增加,值得進一步研究。
有6個菌株促進水稻苗期Cd吸收,與對照相比植株Cd含量增加6.41%—38.45%。其他13個菌株抑制水稻苗期Cd吸收,與對照相比植株Cd含量減少2.06%—34.46%(表5)。

表5 接種水稻內生固氮菌對水稻苗期生長及植株Cd吸收的影響
“*”表示統計學差異達到0.05顯著水平Significant differences at 5% level
學術上較嚴格的植物內生菌(endophytic bactcria)概念是指從經過表面消毒的植物組織器官或植物體內分離提取出來的對植物本身有益無害的細菌[17]?,F在這個概念有了一些擴大,通常認為植物內生菌泛指生活史或某個生命階段生活在健康植物體內,不引起宿主植物外在病癥的細菌、真菌或放線菌[18],但不包括在植物體內定殖,引起寄生植物病害的致病菌,也不包括菌根真菌[19]。
水稻內生固氮菌是指從水稻體內分離、并且檢測到固氮基因()或者檢測到固氮酶活性的細菌。從文獻資料來看,目前關于水稻內生菌的研究報道較多[1,20-23],水稻內生菌固氮菌的研究報道相對少一些。關于內生固氮菌的研究大多集中在高效菌株分離鑒定與促生特性研究[8,24-26],分離到的菌株有等。關于水稻內生固氮菌系統發育的研究報道是分離鑒定了25株水稻內生固氮菌,這些菌株的系統發育地位分別屬于芽孢桿菌()、伯克霍爾德氏菌()、腸桿菌()、黃桿菌()、草螺菌()、克雷伯氏菌()、類芽孢桿菌()、泛菌()、根瘤菌(),共計9屬16種[15]。本文分離鑒定了19株水稻內生固氮菌,在系統發育地位上分別屬于芽孢桿菌()短桿菌()()類芽孢桿菌(),其中短桿菌()和()是未曾報道過的水稻內生固氮菌屬種,同時豐富了內生固氮菌的芽孢桿菌新類群。
菌株的生物學特性,特別是與環境適應性和微生物肥料生產應用相關的特性,是菌株在自然界生存、在農業生產中發揮作用的基礎。本文檢測了分離菌株的產堿、產孢、高溫生長、產蛋白酶、產纖維素酶等特性。菌株的產堿能力與菌株對土壤重金屬Cd的鈍化有關,原理是菌株產堿引起土壤pH升高,減少了Cd在土壤溶液中的溶解性,從而減少植株對Cd的吸收,本試驗結果支持這一觀點。對19個菌株產堿能力測定的結果顯示,其中4個菌株sd010、sd039、sd232、sd373的發酵液終pH為8.5—9.0,它們對應的稻苗Cd含量增減百分比分別為-8.59%、-14.03%、-22.37%、-15.11%,全部是減少稻苗Cd含量。菌株sd106、sd194、sd237發酵液終pH 7.0,沒有顯示出產堿性能,對應的稻苗Cd含量增減百分比為分別為-34.46%、-29.99%、-31.44%??紤]到土壤環境和實驗室純培養環境的巨大差異,筆者認為這個試驗結果還是顯示了菌株的產堿能力與減少稻苗Cd含量存在相關性,是一個值得深入研究的現象。
芽孢(spore)是指某些細菌在一定的環境條件下,在菌體內部形成一個圓形或卵圓形小體,是細菌的休眠方式,稱為內芽孢(endospore),簡稱芽孢。菌株的產孢能力強,對不良環境的耐受能力也強。菌株的高溫生長能力反映了菌株對較高溫度的適應性,這一性狀對于微生物肥料的生產應用很重要,比如菌劑的工廠化生產和堆肥發酵等就涉及到50℃甚至更高的溫度。菌株產蛋白酶和纖維素酶的能力反映了菌株對蛋白質和纖維素類物質的分解代謝能力,也是菌株生存競爭能力的重要指標。試驗中也發現一個有趣的現象,菌株sd032、sd037、sd039、sd372、sd373產生蛋白酶和纖維素酶的能力較強,在48℃的生長能力也較強,在產孢液體培養基上生長好,在固體產孢培養基上產孢率高,產堿能力也相對較強,似乎顯示出一種強者恒強的特性。
病害是水稻生產中的一大問題,多年來主要依靠抗病育種和農藥防治。生物防治開辟了一條預防水稻病害的新途徑。因此,水稻病害的生物防治一直是水稻內生菌研究的熱點之一[27-30]。仔細分析就會發現,水稻內生菌研究報道中的細菌有很多就是固氮菌,只是研究者沒有研究菌株的生物固氮特性,或者說沒有從水稻內生固氮菌的角度進行研究和分析討論,比如在Mano發表的一篇水稻內生細菌綜述中所列舉的很多細菌屬種就是作者分離、鑒定過的固氮菌[1,13,15,31]。事實上,生物固氮特性只是固氮菌的基本特性,很多固氮菌都有提高植物抗病、抗逆等多種特性[12,16,31],這使得內生固氮菌研究更有意義。本文以3株病原真菌立枯絲核菌ACCC36246、禾谷鐮孢ACCC36249、擬枝孢鐮孢ACCC37402作為靶標,測試分離到的19株水稻內生固氮菌的拮抗性能,結果3株內生固氮菌對立枯絲核菌具有抗性,3株內生固氮菌對禾谷鐮孢菌具有抗性,3株內生固氮菌對擬枝孢鐮孢菌具有抗性。說明在自然生長的水稻體內有大約1/6的內生固氮菌對真菌病害具有天然的抗性。同時,這個結果也提示研究者,這些抗病菌株具有很大的潛能,如果把這些功能菌株做成菌劑接種水稻秧苗,可能對預防水稻病害起到很好的作用。
抗生素和殺菌劑有共同點,也有不同點。共同點在于它們都是用于殺滅病原微生物,不同點在于抗生素主要用于人、畜等動物,殺菌劑主要用于農業種植、養殖如農田、養殖場。研究菌株對抗生素和殺菌劑耐性的意義也是不同的。菌株對抗生素的耐性越強,菌株就越是難以被控制,傳播耐藥性的機率就越大,環境風險也就越大。所以,筆者在篩選功能菌株時希望菌株的耐藥性小,最好是抗生素敏感菌株,這樣在使用時環境風險小,便于控制菌株傳播。而對于殺菌劑的耐性則希望篩選到耐藥性較強的菌株。原因是水稻種植過程中病害嚴重,特別是在中國北方寒地水稻早春育秧過程中苗床發病率很高,水稻生產離不開殺菌劑。目前能做的就是將化學殺菌劑與生物防治(抗病功能菌劑)措施配合使用,逐漸減少化學殺菌劑的用量。要做到與化學殺菌劑配合使用,就需要功能菌株具有較強的殺菌劑耐性。本文檢測了18株新分離菌株對8種抗生素和6種殺菌劑的耐藥性,發現了一些對抗生素敏感,對殺菌劑耐性強的菌株,這對于基礎數據積累和應用技術開發都有積極意義。
細菌對不同碳源的發酵利用能力是菌株的基本特性,具有種屬特點,因此BIOLOG測定常用于菌株鑒定。本文進行分離菌株的BIOLOG測定,不僅是積累基礎數據,更多地希望了解菌株對多種碳源的發酵利用能力。因為這些數據作為基礎研究,有助于了解水稻內生固氮菌的碳源利用特點和菌株鑒定等;作為應用研究,有助于篩選功能菌株,以及設計工廠化菌劑生產配方等。本文測定了菌株對多種碳源的發酵利用,結果顯示4個代表菌株對78種碳源的利用種類較少,這也許正是水稻內生固氮菌的特異之處,需要將來擴大菌株數量繼續研究。
將進入土壤的重金屬元素剝離土壤非常困難,科學工作者發明了物理、化學、生物、工程等多種方法來阻控土壤Cd污染[32]。比較徹底的修復方法是植物修復法[33],通過種植Cd高積累植物把土壤中的Cd剝離出來[34-35]。另一種研究較多的方法是原位修復法[36],通過大量施用生物炭等有機物料[37],或者海泡石、黏土等礦物類物料[38],改變土壤理化性狀,阻止Cd進入稻米。
采用植物內生菌修復重金屬污染土壤是近年來的一個新的研究熱點[39],植物-微生物聯合修復技術展示出良好的應用前景[40-41]。耐Cd微球菌sp. TISTR2221顯著促進玉米對Cd的吸收積累,使試驗土壤中Cd含量大大降低[42]。田間試驗表明,接種羅爾斯頓菌sp. TISTR 2219和節桿菌sp. TISTR 2220的丁香()移栽2個月后體內Cd積累量與不接種對照相比增加了20%—40%[43]。國內學者的大量研究工作也驗證了微生物在植物-微生物聯合修復土壤Cd污染中的巨大作用[44-47]。本試驗結果也顯示出接種水稻內生固氮菌可以顯著影響水稻苗期Cd吸收,19株內生固氮菌中有1/3菌株促進水稻苗期Cd吸收,2/3菌株抑制水稻苗期Cd吸收。
從湖南郴州桂陽農田水稻上分離到19株內生固氮菌,菌株的系統發育地位屬于4屬13種。部分菌株產蛋白酶、纖維素酶能力強,48℃生長良好,產孢率高(60%—90%),產堿(pH 8.5—9.0),對立枯絲核菌、禾谷鐮孢、擬枝孢鐮孢具有拮抗性,對抗生素相敏感,對殺菌劑耐性強,具有良好應用前景。試驗的19株內生固氮菌中有13個菌株抑制水稻苗期Cd吸收,與對照相比植株Cd含量減少2.06%—34.46%,提示采用微生物方法阻控稻田Cd污染是一個非常值得研究、探討的途徑。
[1] Mano H, Morisaki H. Endophytic bacteria in the rice plant., 2008, 23(2): 109-117.
[2] 李龔程, 張仕穎, 肖煒, 龍智勇, 張乃明. 水稻中內生菌研究進展. 中國農學通報, 2015, 31(12): 157-162.
Li G C, Zhang S Y, Xiao W, Long Z Y, Zhang N M. Research progress on endophytes in rice., 2015, 31(12): 157-162. (in Chinese)
[3] Wang M E, Chen W P, Peng C. Risk assessment of Cd polluted paddy soils in the industrial and township areas in Hunan, Southern China., 2016, 144: 346-351.
[4] Liu Y B, Xia T F, Baveye P C, Zhu J M, Ning Z P, Li H J. Potential health risk in areas with high naturally-occurring cadmium background in southwestern China., 2015, 112: 122-131.
[5] 尹藝, 趙穎, 馬蓮菊, 卜寧. 堿蓬內生真菌對鎘脅迫水稻幼苗生長及生理生化指標的影響. 貴州農業科學, 2014, 42(3): 23-26.
Yi Y, Zhao Y, Ma L J, Bu N. Effects of endophyte isolated fromon growth and physiclogical and biological indexes of rice seedlings., 2014, 42(3): 23-26. (in Chinese)
[6] Barraquio W l, Revilla L, Ladha J k. Isolation of endophytic diazotrophic bacteria from wetland rice., 1997, 194: 15-24.
[7] Zhang G X, Peng G X, Wang E T, Yan H, Yuan Q H, Zhang W, Lou X, Wu H, Tan Z Y. Diverse endophytic nitrogen-fixing bacteria isolated from wild riceand description ofgen. nov. sp. nov., 2008, 189: 431-439.
[8] Chaudhary H J, Peng G X, Hu M, He Y M, Yang L J, Luo Y, Tan Z Y. Genetic diversity of endophytic diazotrophs of the wild rice,and identification of the new diazotroph,sp. nov., 2012, 63: 813-821.
[9] Govindarajan M, Balandreau J, Kwon S W, Weon H Y, Lakshminarasimhan C. Effects of the inoculation ofand related endophytic diazotrophic bacteria on grain yield of rice., 2008, 55(1): 21-37.
[10] 李倍金, 羅明, 周俊, 孔德江, 張鐵明. 幾種禾草內生固氮菌的分離及固氮活性測定. 草業學報, 2008, 17(5): 37-42.
Li B J, Luo M, Zhou J, Kong D J, Zhang T M. Isolation of endophytic diazotrophic bacteria from several gramineae grasses and determination of their nitrogenase activity., 2008, 17(5): 37-42. (in Chinese)
[11] 孫建光, 張燕春, 徐晶, 胡海燕. 高效固氮芽孢桿菌選育及其生物學特性研究. 中國農業科學, 2009, 42(6): 2043-2051.
Sun J G, zhang Y C, Xu J, Hu H Y. Isolation and biological characteristic investigation on efficient nitrogen-fixing bacilli.,2009, 42(6): 2043-2051. (in Chinese)
[12] 秦寶軍, 羅瓊, 高淼, 胡海燕, 徐晶, 周義清, 孫建光. 小麥內生固氮菌及其ACC脫氨酶測定. 中國農業科學, 2012, 45(6): 1066-1073.
Qin B J, Luo Q, Gao M, Hu H Y, Xu J, Zhou Y Q, Sun J G. Isolation of wheat endophytic diazotrophs and determination of 1-aminocyclopropane-1-carboxylate deaminase., 2012, 45(6): 1066-1073. (in Chinese)
[13] 孫建光, 徐晶, 胡海燕, 張燕春, 劉君, 王文博, 孫燕華. 中國十三省市土壤中非共生固氮微生物菌種資源研究. 植物營養與肥料學報, 2009, 15(6): 1450-1465.
Sun J G, Xu J, Hu H Y, Zhang Y C, Liu J, Wang W B, Sun Y H. Collection and investigation on asymbiotic nitrogen-fixing microbial resources from 13 provinces over China., 2009, 15(6): 1450-1465. (in Chinese)
[14] Gao M, Zhou J J, Wang E T, Chen Q, Xu J, Sun J G. Multiphasic characterization of a plant growth promoting bacterial strain,sp. 7016 and its effect on tomato growth in the field.,2015, 14(9): 1855-1863.
[15] 孫建光, 羅瓊, 高淼, 胡海燕, 徐晶, 周義清. 小麥、水稻、玉米、白菜、芹菜內生固氮菌及其系統發育研究. 中國農業科學, 2012, 45(7): 1303-1317.
Sun J G, Luo Q, Gao M, Hu H Y, Xu J, Zhou y Q. Isolation and phylogeny of nitrogen-fixing endophytic bacteria in wheat, rice, maize, Chinese cabbage and celery., 2012, 45(7): 1303-1317. (in Chinese)
[16] 陳倩, 高淼, 胡海燕, 徐晶, 周義清, 孫建光. 一株拮抗病原真菌的固氮菌sp. GD812. 中國農業科學, 2011, 44(16): 3343-3350.
Chen Q, Gao M, Hu H Y, Xu J, Zhou Y Q, Sun J G. A nitrogen-fixing bacteriumsp. GD812 antagonistic against plant pathogenic fungi., 2011, 44(16): 3343-3350. (in Chinese)
[17] Saharan B S, Nehra V. Plant growth promoting rhizobacteria: a critical review., 2011, 2011: LSMR-21.
[18] Stone J K, Bacon C W, White J F. An overview of endophytic microbes: endophytism defined., 2000, 3: 29-33.
[19] Kloeppe J W, Rodriguez-Kabana R, Zehnder G W, Murphy J F, Sikora E, Fernández C. Plant rootbacterial interactions in biological control of soilborne diseases and potential extension to systemic and foliar diseases., 1999, 28(1): 21-26.
[20] Chaudhry V, Baindara P, Pal V K, Chawla N, Patil P B, Korpole S.sp. nov., a facultative methylotrophic bacterium isolated from rice seed., 2016, 39: 25-32.
[21] Lin L, Wei C, Chen M, Wang H, Li Y, Li Y, YANG L, AN Q. Complete genome sequence of endophytic nitrogen-fixingstrain DX120E., 2015, 10: 22.
[22] Chung E J, Hossain1 M T, Khan1 AQ, Kim K H, Jeon C O, Chung Y R.sp. nov., an endophytic bacterium isolated from the roots of rice with antimicrobial, plant growth promoting, and systemic resistance inducing activities in rice.,2015, 31(2): 152-164.
[23] Zhang X X, Gao J S, Cao Y H, Sheirdil R A, Wang X C, Zhang L.sp. nov., potential plantgrowth- promoting endophytic bacteria isolated from rice roots., 2015, 65: 2931-2936.
[24] 王秀呈, 曹艷花, 唐雪, 馬曉彤, 高菊生, 張曉霞. 水稻內生固氮菌DX35的篩選及其促生特性. 微生物學報, 2014, 54(3): 292-298.
Wang X C, Cao Y H, Tang X, Ma X T, Gao J S, Zahng X X. Rice endogenous nitrogen fixing and growth promoting bacteriumDX35.,2014, 54(3): 292-298. (in Chinese)
[25] Ji S H, Gururani M A, Chuna S C. Isolation and characterization of plant growth promoting endophyticdiazotrophic bacteria from Korean rice cultivars., 2014, 169: 83-98.
[26] Jha B, Thakur M C, Gontia I, Albrecht V, Stoffels M, Schmid M, Hartmann A. Isolation, partial identification and application of diazotrophic rhizobacteria from traditional Indian rice cultivars., 2009, 45: 62-72.
[27] Gimenez C, Cabrera R, Reina M, González-Coloma A. Fungal endophytes and their role in plant protection., 2007, 11(8): 707-720.
[28] Su Z Z, Mao L J, Li N, Feng X X, Yuan Z L, Wang L W, Lin F C, Zhang C L. Evidence for biotrophic lifestyle and biocontrol potential of dark septate endophyteto rice blast disease., 2013, 8(4): e61332.
[29] 楊海蓮, 孫曉璐, 宋未. 植物根際促生細菌和內生細菌的誘導抗病性的研究進展. 植物病理學報, 2000, 30(2): 106-110.
Yang H L, Sun X L, SONG W. Current development on induced resistance by plant growth promoting and endophytic bacteria., 2000, 30(2): 106-110. (in Chinese)
[30] 陳夕軍, 胡長松, 童蘊慧, 紀兆林, 徐敬友. 水稻內生枯草芽孢桿菌對稻瘟病菌和稻惡苗病菌的抑制作用. 中國生物防治, 2008, 24(4): 339-344.
Chen X J, Hu C S, Tong Y H, Ji Z L, Xu J Y. Inhibition of rice endophyticonand, 2008, 24(4): 339-344. (in Chinese)
[31] 孫建光, 胡海燕, 劉君, 陳倩, 高淼, 徐晶, 周義清. 農田環境中固氮菌的促生潛能與分布特點研究. 中國農業科學, 2012, 45(8): 1532-1544.
Sun J G, Hu H Y, Liu J, Chen Q, Gao M, Xu J, Zhou Y Q. Growth promotion potential and distribution features of nitrogen- fixing bacteria in field environments., 2012, 45(8): 1532-1544. (in Chinese)
[32] Wang w Z, Xu W H, Zhou K, Xiong Z T. Research progressing of present contamination of Cd in soil and restoration method.,2015, 20(5): 430-444.
[33] 蘇慧, 魏樹和, 周啟星. 鎘污染土壤的植物修復研究進展與展望. 世界科技研究與發展, 2013, 35(3): 315-319.
Sun H, Wei S H, Zhou Q X. Advances in phytoremediation of cadmium contaminated soil.,2013, 35(3): 315-319. (in Chinese)
[34] 李廷強, 董增施, 姜宏, 李冰, 楊肖娥. 東南景天對鎘-苯并[a]芘復合污染土壤的修復效果. 浙江大學學報 (農業與生命科學版) , 2011, 37(4): 465-472.
Li T Q, Dong Z S, Jiang H, Li B, Yang X E. Remediation efficiency of Ca-B[a] P combined polluted soil by., 2011, 37(4): 465-472. (in Chinese)
[35] 唐皓, 李廷軒, 張錫洲, 余海英, 陳光登. 水稻鎘高積累材料不同生育期鎘積累變化特征研究. 農業環境科學學報, 2015, 34(3): 471-477.
Tang H, Li T X, Zhang X Z, Yu H Y, Chen G D. Cadmium accumulation in high cadmium-accumulating rice cultivars at different growth stages., 2015, 34(3): 471-477.(in Chinese)
[36] 韓君, 梁學峰, 徐應明, 徐愿堅, 雷勇, 蔣榮輝. 黏土礦物原位修復鎘污染稻田及其對土壤氮磷和酶活性的影響. 環境科學學報, 2014, 34(11): 2853-2860.
Han J, Liang X F, Xu Y M, Xu Y J, Lei Y, Jiang R H. In-situ remediation of Cd-polluted paddy soil by clay minerals and their effects on nitrogen, phosphorus and enzymatic activities.,2014, 34(11): 2853-2860. (in Chinese)
[37] Bian R J, Chen D, Liu X Y, Cui L Q, Li L Q, Pan G X, Xie D, Zheng J W, Zhang X H, Zheng J F, Chang A. Biochar soil amendment as a solution to prevent Cd-tainted rice from China: Results from a cross-site field experiment., 2013, 58: 378-383.
[38] 孫約兵, 徐應明, 史新, 王林, 梁學峰. 海泡石對鎘污染紅壤的鈍化修復效應研究. 環境科學學報, 2012, 32(6): 1465-1472.
Sun Y B, Xu Y M, Shi X, Wang L, Liang X F. The effects of sepiolite on immobilization remediation of Cd contaminated red soil., 2012, 32(6): 1465-1472.(in Chinese)
[39] Rajkumar M, Ae N, Freitas H. Endophytic bacteria and their potential to enhance heavy metal phytoextraction., 2009, 77: 153-160.
[40] Ullah A, Sun H, Munis M, Fahad S, Yang X Y. Phytoremediation of heavy metals assisted by plant growth promoting (PGP) bacteria: A review., 2015, 117: 28-40.
[41] Aryal M, Liakopoulou-Kyriakides M. Bioremoval of heavy metals by bacterial biomass.,2015, 187: 4173.
[42] Sangthong C, Setkit K, Prapagdee B. Improvement of cadmium phytoremediation after soil inoculation with a cadmium- resistantsp., 2016, 23(1): 756-764.
[43] Prapagdee B, Khonsue N. Bacterial-assisted cadmium phytoremediation byL. in polluted agricultural soil: a field trial experiment., 2015, 12: 3843-3852.
[44] 劉莉華, 劉淑杰, 陳福明, 楊小龍, 楊春平, 趙晶晶, 吳秉奇. 兩株鎘抗性奇異變形桿菌對龍葵修復鎘污染土壤的強化作用. 環境工程學報, 2013, 7(10): 4109-4115.
Liu L H, Liu S J, Chen F M, Yang X L, Yang C P, Zhao J J, Wu B Q. Efects of two cadmium-resistant strains ofon enhanced remediation efficiency ofL. in serious cadmium polluted soil., 2013, 7(10): 4109-4115. (in Chinese)
[45] 江春玉, 盛下放, 何琳燕, 馬海艷, 孫樂妮, 張艷峰. 一株鉛鎘抗性菌株WS34的生物學特性及其對植物修復鉛鎘污染土壤的強化作用. 環境科學學報, 2008, 28(10): 1961-1968.
Jiang C Y, Sheng X F, He L Y, Ma H Y, Sun L N, Zhang Y F. Isolation and characteristics of heavy metal-resistant strain WS34 and its effects on the phytoremediation of soils contaminated with lead and cadmium., 2008, 28(10): 1961-1968. (in Chinese)
[46] 胡振琪, 楊秀紅, 高愛林, 危向峰. 鎘污染土壤的菌根修復研究. 中國礦業大學學報, 2007, 36(2): 237-240.
Hu Z Q, Yang X H, Gao A L, Wei X F. Remediation of mycorrhezae on Cd contaminated soil., 2007, 36(2): 237-240. (in Chinese)
[47] 馬文亭, 滕應, 凌婉婷, 李振高, 吳龍華, 駱永明. 里氏木霉FS10-C對伴礦景天吸取修復鎘污染土壤的強化作用. 土壤, 2012, 44(6): 991-995.
Ma W T, Teng Y, Ling W T, Li Z G, Wu L H, Luo Y M. Enhancing remediation ofin cadmium contaminated soils byFS10-C., 2012, 44(6): 991-995. (in Chinese)
(責任編輯 岳梅)
Isolation and Biological Properties of Endophytic Diazotrophs from Rice and Their influences on Rice seedling Cd Accumulation
YUAN Mei1, TAN Shi-juan2, SUN Jian-guang1
(1Institute of Agricultural Resources and Regional Planning, Chinese Academy of Agricultural Sciences/Key Laboratory of Microbial Resources, Ministry of Agriculture, Beijing 100081;2Guiyang Agricultural Bureau, Chenzhou 424400, Hunan)
【Objective】The objective of this study is to isolate, identify and analyze phylogenetics of endophytic diazotrophs from rice planted in Hunan province, test the biological characteristics of the isolates, and to explore the influences of diazotroph inoculation on rice seedlings Cd accumulation. 【Method】Surface sterilization and low nitrogen medium were used to isolate endophytic diazotrophs.detection was conducted based on PCR amplification to confirm the isolates as nitrogen-fixing bacteria. 16S rRNA was amplified with PCR, blasted in EzTaxon after sequencing, and analyzed with Clustalx-MEGA to make phylogenetic tree. Greenhouse trials were conducted to investigate the influence of diazotroph inoculation on rice seedling Cd accumulation. 【Result】Nineteen endophytic diazotrophs were isolated from root, stem and leaf of 8 rice samples. These 19 strains phylogenetically belong to4genus 13 species of,,,,,,,,,.,,,. Biological tests showed that about 1/3 of the 19 strains produce protease and cellulose, grow well at 48℃, form spores well with percentage 60%-90%, produce alkali with final pH 8.5-9.0. About 1/6 of the 19 strains are antagonistic against plant pathogenicACCC36246,ACCC36249 andACCC37402 with rate of 42%-55%. About 2/3 of the 19 strains showed sensitive to antibiotics and resistant to fungicide. Four representative strains of the 19 could utilize 7 of the 78 carbon sources, sodium lactate, sucrose, dextrose, glycerol, malic acid, alanine and glucuronic acid amide. Greenhouse trials showed that 6 of the 19 strains promoted rice seedling Cd absorption with increase of 6.41%-38.45%, and other 13 strains decreased rice seedling Cd absorption with 2.06%-34.46% compared with control.【Conclusion】Nineteen endophytic diazotrophs were isolated from rice planted in Hunan. These 19 strains phylogenetically belong to 4 genus 13 species of,,and. Partial strains produce protease and cellulose, grow well at 48℃, form spores well, antagonistic against plant pathogenic,andhave good prospects of application. Inoculation of diazotroph can significantly affect rice seedling Cd absorption. The results suggest that application of microbial method to control paddy Cd is a very worthwhile pathway.
rice; endophytic diazotrophs; biological property; Cd
2016-04-13;接受日期:2016-04-25
國家公益性行業(農業)科研專項(201203045)
袁梅,E-mail:yuanmei1010@163.com。通信作者孫建光,Tel:010-82108701;E-mail:jgsun@caas.ac.cn