田冰玉,宋虎平
西安市第四醫院眼科(西安 710004)
田冰玉,宋虎平△
西安市第四醫院眼科(西安 710004)
目的 : 探討早期糖尿病視網膜病變(DR)狀態下,缺氧誘導因子1(HIF-1)對血管內皮細胞表面細胞間粘附分子-1(ICAM-1)表達的影響。方法 :收集早期DR患者及年齡匹配的健康人外周血血清,用于體外培養恒河猴視網膜血管內皮細胞系細胞(RF/6A)。分為糖尿病血清培養組(B組)、糖尿病+HIF-1反義寡核苷酸組(ASODN)(C組)、糖尿病+HIF-1正義寡核苷酸組(SODN)(D組)健康人血清培養細胞為正常對照組(A組)。使用免疫組織化學和免疫酶聯吸附法(ELISA)檢測HIF-1和ICAM-1的表達水平。結果: 在蛋白總量一致的情況下,A組細胞上清中sICAM-1的濃度為(13.89±1.35)ng/ml,而B組的濃度為(25.26±1.97)ng/ml ,HIF-1ASODN 轉染可以明顯降低細胞ICAM-1的表達水平,其濃度為(16.59±1.11)ng/ml,HIF-1SODN 轉染則不能影響細胞ICAM-1的表達。各組細胞之間ICAM-1表達水平比較有統計學差異(F=81.89,P=0.00),各組之間兩兩比較,B組和D組之間比較無統計學差異(P=0.98),其余各組之間兩兩比較有統計學差異(P均<0.05)。 結論 :在體外培養條件下, HIF-1對糖尿病血清培養條件下的RF/6A細胞表達ICAM-1具有調節作用。
最新數據顯示:目前我國20歲以上的糖尿病患者約9240萬(人口的9.7%),而14820萬成年人(15.5%)為糖尿病前期患者。我國已成為全球糖尿病患病人數最多的國家[1]。糖尿病視網膜病變(Diabetic retinopathy, DR)是糖尿病的重要并發癥,是成年人重要的致盲眼病。研究證明,髓樣細胞與視網膜血管內皮細胞的黏附是DR早期關鍵事件[2-3],這個過程和血管內皮細胞表面細胞間粘附分子-1(Intercellular adhesion molecule 1,ICAM-1)的表達有關。細胞間粘附分子-1是促炎細胞因子,可介導白細胞的粘附和聚集,在免疫、炎癥等的形成過程中起重要作用[4]。缺氧誘導因子1是一種缺氧反應基因的中介因子,可傳導缺氧信號,激化一些與缺氧有關的基因,使細胞適應低氧環境,同時也可引起多種病理變化[5]。缺氧誘導因子1(Hypoxia-indacible factor-1 alpha,HIF-1)能調節DR病變狀態下髓樣細胞與血管內皮細胞粘附[6],說明HIF-1有可能成為治療早期DR的重要靶點,但其是否可調節內皮細胞表面粘附分子ICAM-1尚不清楚。本研究通過體外細胞實驗方法,觀察在早期DR條件下,HIF-1對血管內皮細胞表面ICAM-1表達的調節,進一步明確HIF-1在DR治療中的作用機制,現報告如下。
1 材 料 人類血清來自2005年3月至9月在到西安市第四醫院眼科門診就診的10例1期DR患者及年齡和性別匹配的10例健康志愿者。每一位受試者實驗前均簽署知情同意書,并經西安市第四醫院醫學倫理委員會批準。DR分期按照國際臨床分類法。晨起抽取空腹血2ml, 離心5min, 取上清,用于細胞培養。
3 內皮細胞系細胞培養和分組 恒河猴視網膜脈絡膜血管內皮細胞系(RF/6A)購于中國科學院上海細胞生物所。以含有10%胎牛血清的RPMI1640培養液,在37℃的5%CO2孵箱中培養。待細胞生長至約70%融合狀態時,換成無血清的DMEM培養基,24h后A組加入10%健康人血清, B組加入10%DRP患者血清,C組在加入10%DR患者血清之前24h先轉染HIF-1反義寡核苷酸[梭華-SofastTM基因轉染試劑(廈門太陽馬生物工程公司)]D組在加入10%DRP患者血清之前24h先轉染HIF-1正義寡核苷酸,37℃ 的5%CO2孵箱中培養24h后收集細胞進行下一步實驗。每次實驗設3個復孔。共重復3次。
4 HIF-1α免疫組化 細胞爬片并固定,滴加鼠HIF-1α單克隆抗體(Chemicon公司),濃度1∶500,37℃保溫30 min;滴加生物素化羊抗鼠IgG,37℃保溫30 min;滴加ABC復合劑,37℃保溫30 min;顯色,鏡下觀察,水洗中止反應;蘇木素輕度復染;系列酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封固觀察。
5 ELISA 檢測RF/6A細胞培養中上清液中ICAM-1水平 人sICAM-1 ELISA試劑盒(上海森雄科技實業有限公司),按照試劑盒說明,建立標準曲線后,將待測品孔每孔加入按一定比例稀釋的待測樣品100l,置37℃,120 min ;用洗滌液將反應板充分洗滌4~6次,在濾紙上印干;每孔加第一抗體工作液50l后置37℃,60 min后洗板;每孔加酶標抗體上作液100l后置37℃,60 min后洗板;每孔加底物上作液100l,置37℃暗處反應5~10 min;每孔加1滴終止液混勻。在酶標儀(美國BIO-RAD公司)上492 nm處測吸光度(OD值);用Curve Expert1.3繪制標準曲線,根據曲線公式計算出ICAM-1的濃度。
6 統計學方法 采用SPSS 11.0統計學軟件。組間差異用單因素方差分析(ANOVA), 多組之間兩兩比較采用最小顯著性差異法(LSD)。P<0.05為差異有統計學意義。
1 免疫組化染色結果 在正常人血清培養條件下,RF/6A細胞內即有少數陽性染色細胞出現,陽性部位主要在細胞核區,呈棕黃色染色。B組陽性染色細胞增多,陽性染色部位仍然位于胞核區。C組陽性細胞數量較A組減少。D組陽性細胞數量又增加,胞核內呈現深棕色染色(圖1)。

圖1 四組RF/6A細胞HIF-1免疫組化染色
2 ELISA檢測RF/6A細胞培養上清中ICAM-1水平 如圖2 ELISA 的標準曲線顯示。曲線公式為y=-0.17+55.53x+32.02x2,其中y 代表蛋白量,x代表OD值。
可是,在蛋白總量一致的情況下,A組細胞上清中sICAM-1濃度為(13.89±1.35 )ng/ml,而B組濃度為(25.26±1.97 )ng/ml ,HIF-1ASODN 轉染可以明顯降低細胞ICAM-1的表達水平,其濃度為(16.59±1.11 )ng/ml,HIF-1SODN 轉染則不能影響細胞ICAM-1的表達。各組細胞之間ICAM-1表達水平比較有統計學差異(F=81.89,P=0.00),各組之間兩兩比較,B組和D組(25.28±1.02 )ng/ml之間無統計學差異(P=0.98),其余各組之間兩兩比較差異有統計學意義(P均<0.05)。

圖2 ICAM-1的ELISA檢查標準曲線
本研究顯示,當用來自DR患者的血清培養后,血管內皮細胞ICAM-1水平顯著高于正常人血清培養下的水平。HIF-1蛋白表達被抑制后, ICAM-1表達水平相應下降,證明HIF-1對于ICAM-1的表達具有調節作用。 RF/6A細胞是研究視網膜血管內皮細胞病變的常用細胞系,文獻證明其具有人類視網膜血管內皮細胞的特征[8]。ICAM-1是CD18位于血管內皮細胞表面的配體,是白細胞與血管內皮細胞黏附的重要分子,是血管內皮細胞的激活的標志[9]。在糖尿病血清培養條件下細胞表達ICAM-1增多的原因和糖尿病代謝紊亂有關,循環血中的炎癥介質也是誘導ICAM-1 表達的重要因素。炎癥和血管內皮細胞功能障礙之間可能是雙向的關系,炎癥會加重血管內皮細胞功能障礙,而血管內皮細胞功能障礙之后ICAM-1表達可能會更高[10]。
HIF-1α是機體適應氧損傷的重要轉錄調節因子,缺氧是HIF-1α表達的經典刺激因素。但非缺氧因素也能刺激HIF-1α的表達,其中細胞因子是最重要的非缺氧調節因素[11]。 糖尿病血清培養后RF/6A細胞表達HIF-1α蛋白,可能和血清中這些細胞因子有關。本實驗結果顯示,在糖尿病狀態下,HIF-1α能調節血管內皮細胞表面ICAM-1的表達水平。已有研究顯示HIF-1α的表達與 VEGF呈正相關[12],VEGF表達降低時,ICAM水平隨之降低。本實驗在使用反義寡核苷酸技術抑制了細胞HIF-1α表達后,糖尿病血清刺激誘導血管內皮細胞表面ICAM-1表達被抑制,HIF-1α可能通過直接和間接兩種途徑調節ICAM-1的表達。
本研究通過細胞實驗證實,在糖尿病血清培養條件下,HIF-1α具有調控ICAM-1表達的作用,它有可能成為治療早期DR的一個新的靶點。
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(收稿:2016-12-05)
The mediation of HIF-1to the expression of ICAM-1 by RF/6A in diabetic condition
Tian Bingyu,Song Huping.
Department of Ophthalmology,Xi’an No.4 Hospital(Xi’an 710004)
Objective: To investigate the mediation of HIF-1to the expression of ICAM-1 by retinal vascular endothelial cell under early stage of diabetic retinopathy condition. Methods:The rhesus choroid-retina vascular endothelial cell line RF/6A were cultured in RPMI 1640 medium-10% human serum, which was collected from the subjects of early stage of diabetic retinopathy and age-matched healthy control. The cells were cultured in 4 groups as control group(group A),diabetic group (group B), HIF-1anti-sense oligonucleotides (ASODN) group (group C) and HIF-1sense oligonucleotides (SODN) group (group D). ICAM-1 levels in RF/6A supernatants were determined with ELISA kit. Results: Contrast to group A, the level of ICAM-1 significantly increased in group B (25.26±1.97) ng/ml vs (13.89±1.35 )ng/ml(P=0.00). But after HIF-1bioactivity was blocked (group C), the effect on the level of ICAM-1 by diabetic serum(group B) was suppressed significantly (25.26±1.97) ng/ml in group B(16.59±1.11) ng/ml in group C vs (25.26±1.97)ng/ml in group B(P=0.00). Conclusion: In vitro, HIF-1could regulate the expression of ICAM-1 by RF/6A. HIF-1may served as a therapeutic target for the treatment and/or prevention of early diabetic retinopathy.
Diabetic retinopathy/physiopathology Inflammation Hypoxia-inducible factor-1 alpha/analysis Intercellular adhesion molecule-1/analysis Endothelium,Vascular
*陜西省自然科學基金資助項目(2011JM4048)西安市科技發展計劃項目[SF1315(2)]
糖尿病視網膜病變/病理生理學 炎癥 缺氧誘導因子1,亞單位/分析 細胞間粘附分子/分析 內皮,血管
R363.2
A
10.3969/j.issn.1000-7377.2017.07.009
△通訊作者